Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Иммунолокализация белков и пектинов арабиногалактана в тканях растений

997 просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Costa, M., et al. Флуоресцентная иммунолокализация белков арабиногалактана и пектинов в клеточной стенке растительных тканей. J. Vis. Exp. (2021).

Это видео демонстрирует технику иммуноокрашивания для локализации белков арабиногалактана (AGP) и пектинов в тканях растений. Неподвижные и залитые смолой срезы растительных тканей окрашивают AGP- и пектин-специфическими первичными и флуоресцентными вторичными антителами и целлюлоз-связывающим флуоресцентным красителем для выявления их тканеспецифической колокализации в клеточной стенке.

Протокол

1. Иммунолокализация

ПРИМЕЧАНИЕ: Процедура флуоресцентной иммунолокализации основана на последовательном использовании двух антител. Первичное антитело вырабатывается против определенного антигена-мишени. Вторичное антитело поднимается специфически против первичного антитела и для флуоресцентных методов конъюгируется с флуорофором (FITC [флуоресцеин изотиоцианат] в этом конкретном протоколе). Первичное антитело будет использоваться для обнаружения целевого антигена в образце, а вторичное антитело будет использоваться для обозначения места, где первичное антитело соединилось с образцом после смывания избытка первичного антитела. Контроль является важной частью этого анализа и всегда должен проводиться для обеспечения точности наблюдений. Одна лунка на предметном стекле должна быть зарезервирована для использования в качестве отрицательного контроля, где лечение первичными антителами будет пропущено, и поэтому в конце эксперимента не должно наблюдаться никакого сигнала. Положительный контроль должен быть включен в эксперимент путем обработки пациента антителом, маркировка которого уже известна и определена. Положительный контроль используется для подтверждения эффективности мечения вторичных антител и условий реакции, в то время как отрицательный контроль проверяет специфичность вторичных антител.

  1. Подготовьте инкубационную камеру, положив несколько влажных бумажных полотенец на дно коробки с наконечниками для пипеток и обернув ее оловянной фольгой (рис. 1B-1E). Поместите предметные стекла в инкубационную камеру.
  2. Пипеткой капля 50 мкл на лунку 8 мм блокирующего раствора (5% обезжиренного сухого молока (w/v) в 1 М фосфатно-солевого буфера [PBS]) и инкубируйте в течение 10 мин. Удалите блокирующий раствор и дважды промойте все лунки PBS в течение 10 мин.
  3. Приготовьте первичные растворы антител (см. таблицу 1), антитела 1:5 (v/v) в блокирующем растворе; оцените около 40 μL на 8 мм лунку.
    заметка: Концентрация антитела должна быть скорректирована в соответствии с протоколом производителя.
  4. Выполните окончательную промывку водой двойной дистилляции (ddH2O) в течение 5 минут, никогда не допускайте полного высыхания лунок.
  5. Пипеткой введите первичный раствор антитела в реакционные лунки. Раствор для блокировки пипеток в контрольных лунках.
  6. Закройте инкубационную камеру и дайте постоять 2 ч при комнатной температуре, а затем в течение ночи при 4 °C. Приготовьте вторичный раствор антитела, 1% в блокирующем растворе (v/v) около 40 мкл на лунку. Держите его накрытым оловянной фольгой.
  7. Дважды промойте все лунки PBS в течение 10 минут, а затем еще 10 минут ddH2O. Убедитесь, что на лунках не видно следов блокирующего раствора или отложений.
  8. Пипеткой подайте вторичный раствор антитела во все лунки. Отныне защищайте горки от света.
  9. Выдерживать 3–4 ч в темноте при комнатной температуре.
  10. Промойте все лунки дважды в течение 10 минут PBS, а затем еще раз промыть 10 минут ddH2O.
  11. Нанесите каплю калькофтора (1:10 000 (w/v) флуоресцентный ярче 28 в PBS) на каждую лунку. Не промывая, нанесите каплю монтажного средства (см. Таблицу материалов) на каждую лунку и установите покровное стекло (рисунок 2H).
  12. Наблюдайте с помощью флуоресцентного микроскопа, оснащенного объективами 10x/0,45, 20x/0,75, 40x/0,95 и 100x/1,40, используйте УФ-фильтры (для калькофторного окрашивания) и FITC фильтры для обнаружения клеточной стенки и иммунолокализации соответственно (рис. 2I). Используйте следующие длины волн: возбуждение/излучение (нм) 358/461 для УФ-излучения и 485/530 для FITC.
  13. Для лучшей визуализации результатов перекрывайте оба изображения с помощью ImageJ или аналогичного.

Таблица 1: Список полезных моноклональных антител. В приведенной выше таблице представлен пример доступных антител с информацией об их мишенях и о том, где их можно приобрести.

имясходствоДоступно по адресу
ЛМ2Белок арабиногалактанPlant probes (Лидс, Великобритания)
ЛМ5Пектины
ЛМ6Арабинанский
ЛМ7Гомогалактуронан
ЛМ8Xylogalacturonan
ЛМ13(1-5)-а-Л-АРАБИНАН
ЛМ14Белок арабиногалактан
ЛМ16Обработанный арабинан - RG-I
ЛМ18Гомогалактуронан
ЛМ19Гомогалактуронан
ЛМ20Гомогалактуронан
ЛМ26ВЕТВИСТЫЙ-ГАЛАКТАН
ЛМ30Белок арабиногалактан
ДЖИМ5Гомагалактуронан с низким содержанием метилэтерифицированногоCCRC (Грузия, США)
ДЖИМ7Высокометилэтерифицированный гомагалактуронан
ДЖИМ4Белок арабиногалактан
ДЖИМ8Белок арабиногалактан
ДЖИМ13Белок арабиногалактан
ДЖИМ15Белок арабиногалактан
ДЖИМ16Белок арабиногалактан
ДЖИМ20Экстензин
МАК207Белок арабиногалактан

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1
Рисунок 1. (А) Схематическое изображение последовательности обрезки блоков для подготовки образца (желтый блок) для среза с помощью ультрамикротома. Во-первых, удаляется желатиновая капсула (1). Затем их сначала обрезают под углом от 40° до 45° к сторонам капсулы по касательной к образцу (2), второй разрез делают под углом 90° от первого (3), за которым следует третий (4) и четвертый по тому же прави...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
8 лунок Стекло реакционные стеклаМаринфельдMARI1216750Можно использовать и другие бренды
Антитела Anti-Rat IgG (молекула wole)-FITC вырабатываются в организме GOATСигма-ОлдричФ6258
покровные колпачки, 24 мм x 50 ммМаринфельдMARI0100222Покровная крышка должна закрывать все лунки. Можно использовать и другие бренды
ддН2Од/од/о
Абсолют этанолад/од/о
Люминесцентный осветлитель 28Сигма-ОлдричФ-6259
Обезжиренное сухое молокоКомпания Nestléд/оДостаточно любого обезжиренного сухого молока
печьд/од/оТиповая лабораторная печь
Моноклональное антитело, созданное крысамиЗонды для растенийд/оНесколько антител, которые распознают компоненты клеточной стенки, доступны как в Исследовательском центре сложных углеводов (CCRC, Университет Джорджии США), так и в Plant Probes (Paul Knox Cell Wall Lab, в Университете Лидса, Великобритания). Краткий список некоторых часто используемых MABS и мест их приобретения представлен в Дополнительной таблице 1
вертикальный эпифлуоресцентный микроскоп с УФ- и FITC флуоресцентными фильтрамиLeica MycrosistemsDMLb
вакуумная камерад/од/о
Вакуумный насосд/од/о
Вектащитvecta LabsТ-1000Можно использовать и другие средства защиты от выцветания. Пожалуйста, проверьте совместимость с FITC и осветлителем Fluorescente 28. (Примечание: в качестве некоммерческой альтернативы (см. Jonhson et al 198218) Среда, препятствующая выцветанию, может быть получена путем смешивания 25 мг/мл 1,4-диазобицикло-(2,2,2)октана (DABCO) в 9:1 (v/v) глицерина до 1xPBS. Отрегулируйте pH до 8,6 с помощью разбавленного HCl.)

Теги

Calcofluor WhiteImageJ