Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Контролируемая инфузия Aβ-пептид-специфических антител и Aβ-олигомеров в гиппокамп крысы

827 просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Sajadi, A., et al. Нейродегенерация в животной модели хронической инфузии бета-амилоидного олигомера противодействует лечению антителами с помощью осмотических насосов. J. Vis. Exp. (2016).

Это видео демонстрирует технику непрерывной инфузии антител, специфичных для бета-амилоида (Aβ) в гиппокамп крысы. В исследовании используется имплантация двусторонней канюльной системы для контролируемой инфузии Aβ-пептид-специфических антител в сочетании с инфузией растворимых Aβ-олигомеров (Aβo) в гиппокамп крысы для изучения взаимодействия между олигомерами и антителами.

Протокол

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Подготовка катетера перед стереотаксической хирургией

  1. Вырежьте катетеры PE50 (длиной 6 см), которые будут использоваться для подключения канюли к осмотическим насосам (см. рисунок 1). Заполните катетеры PE50 искусственной спинномозговой жидкостью (aCSF) и загерметизируйте оба конца катетеров. Держите катетер при температуре 4 °C до использования.

2. Имплантация канюли методом стереотаксии

  1. Проводите операцию в стерильных условиях. Стерилизуйте все хирургические инструменты и материалы путем автоклавирования. Тщательно очистите стереотаксический аппарат и рабочую зону и продезинфицируйте 70% раствором этанола. Наденьте хирургическую маску, чепчик для волос и стерильные перчатки.
  2. Обезболивайте крыс путем внутрибрюшинного введения (в/в) раствора кетамина и ксилазина (100 мг/кг и 10 мг/кг соответственно). Подтвердите анестезию, проверив движение после легкого ущипывания пальцев ног.
  3. Введите нестероидный противовоспалительный препарат (мелоксикам; 1 мг/кг) подкожно (подкожно) животному, находящемуся под наркозом, не менее чем за 30 минут до операции.
  4. Побрейте голову животного с помощью машинок для стрижки и трижды продезинфицируйте кожу раствором хлоргексидина глюконата 2% и изопропилового спирта 2%. Нанесите ветеринарную офтальмологическую мазь на глаза, чтобы предотвратить сухость во время пребывания под анестезией.
  5. Поместите животное на стереотаксическую рамку с ушными планками. Закрепите одну канюлю на кронштейне держателя стереотаксической рамы. Введите (под/к) местный анестетик (бупивакаин (1,5 мг/кг) и лидокаин (1,5 мг/кг) в верхнюю часть головы. Анестезия поддерживается в течение всей процедуры путем установки носового конуса, доставляющего 3% изофлуран. Все операционное поле должно быть задрапировано, но здесь это сделано не для того, чтобы лучше продемонстрировать технику.
  6. Сделайте скальпелем надрез в 3 см на макушке головы. Установите 4 зажима вокруг разреза, чтобы череп оставался чистым. С помощью ножниц с круглым концом сделайте карман (2 х 2 см2) под кожей между лопатками животного.
  7. Соскребите надкостницу черепа лезвием. Приложите марлевую салфетку к черепу, если он кровоточит.
  8. Убедитесь, что череп плоский и хорошо выровнен на стереотаксической раме. Чтобы убедиться, что череп плоский, проверьте координаты высоты в брегме и лямбде. Возьмем координаты брегмы, которые будут использоваться в качестве точки отсчета.
  9. Начиная с брегмы, рассчитайте координаты двух направляющих канюль, которые будут имплантированы двусторонне в гиппокамп (переднезадняя: - 0,42 см; медиолатеральная: ± 0,30 см; дорсовентральная: - 0,28 см по атласу мозга крысы Паксиноса и Уотсона). Обозначьте положение канюли маркером.
  10. Просверлите отверстие (0,5 мм) в черепе в точке имплантации обеих канюль. Просверлите два других отверстия примерно на 5 мм выше и ниже этих точек, чтобы вставить винты, которые будут затвердевать канюлю при наложении стоматологического цемента.
  11. Отрежьте скальпелем один конец катетера, ранее заполненного ХКСФ, и вставьте его в угловой рукав канюли. Зафиксируйте первую канюлю стоматологическим цементом. Избегайте наложения стоматологического цемента вокруг места на второй канюле.
  12. Дайте стоматологическому цементу высохнуть в течение 2 - 3 минут, затем снимите держатель с первой канюли, и зафиксируйте в нем вторую канюлю. Повторите шаги 2.11 и 2.12. Наденьте фиктивную канюлю на обе направляющие канюли. Убедитесь, что манекен и направляющая канюля имеют одинаковую длину, чтобы предотвратить инфильтрацию тканей и блокировку канюли.
  13. Свободный конец обоих катетеров вставьте в карман, предварительно сделанный между лопатками животного. Снимите зажимы и прострочите кожу шовной нитью 4-0,<бр/> заметка: Верхняя направляющая канюля должна быть доступна для предстоящих инфузий Aβo.
  14. Извлеките животное из стереотаксической рамки и посадите его обратно в клетку. Во время послеоперационного восстановления поместите клетку на одеяло с подогревом воды, пока животное не проснется. Клетка должна быть частично на подушке, чтобы крыса могла спастись от жары в случае необходимости. Постоянно наблюдайте за животным до тех пор, пока оно не придет в сознание, достаточное для поддержания лежачего положения на грудине.
  15. Верните крыс в помещение для животных для восстановления после операции в течение 10 дней под тщательным наблюдением.
    заметка: Не стоит возвращать животное, перенесшее операцию, в компанию других животных до полного выздоровления. Мелоксикам (1 мг/кг) назначают один раз в сутки в течение двух дней после операции для снятия боли.

3. Установка осмотического насоса

  1. За сутки до установки наполните осмотические насосы антителом 6E10 (1 мг/мл; 100 μл) и контролируйте антитела IgG1 (1 мг/мл; 100 μл) в соответствии с инструкциями производителя в стерильных условиях. Для активации насосов держите в стерильной дистиллированной воде при температуре 37 °C в течение ночи.
  2. Обезболить крыс изофлураном 3% с установкой осмотических насосов (0,5 мкл/ч в течение 7 дней). Побриться между лопатками и продезинфицировать кожу раствором хлоргексидина глюконата 2% и изопропилового спирта 2%. Сделайте разрез скальпелем на расстоянии 2 см между лопатками, чтобы найти катетеры PE50, подключенные к направляющей канюле.
  3. Разрежьте скальпелем конец катетеров PE50, содержащих стоматологический цемент. Подсоедините осмотические насосы к катетерам PE50 и добавьте немного стоматологического цемента на стык насоса и катетера, чтобы закрепить соединение.
  4. Плотно
  5. прошейте кожу шовной нитью 4-0. Посадите животное обратно в клетку на грелку для воды. Наблюдайте, как животное быстро просыпается от изофлурановой анестезии (около 5 мин).
    заметка: Операция занимает примерно от 5 до 10 минут.

4. Инфузии Aβo у бодрствующих и свободно передвигающихся крыс

  1. Приготовьте раствор Aβo (0,2 мкг/мкл). Дайте Aβo динамически и самопроизвольно агрегироваться в течение 1 часа при комнатной температуре перед инфузией.
  2. Установите два шприца по 10 мкл на инфузионный насос. Наполните шприцы 5 μл стерильной дистиллированной воды. Разрежьте скальпелем два катетера PE50 примерно до 60 см в длину. Наполните оба катетера стерильной дистиллированной водой с помощью шприцов объемом 1 мл и игл 21G.
  3. Держите шприцы объемом 1 мл на одном конце катетера, а другой конец подсоедините к шприцам Hamilton. Извлеките шприцы объемом 1 мл и убедитесь, что внутри катетеров нет пузырьков воздуха.
  4. Вставьте внутреннюю канюлю в конец катетеров PE50. С помощью стерильной дистиллированной воды заполните внутреннюю канюлю, подключенную к катетерам PE50, до 1 мкл на шприцах Hamilton. Создайте пузырь воздуха, оттянув поршни назад до 2 μл.
  5. Смешайте раствор Aβo, пипетируя вверх и вниз с помощью наконечника с минимальным прилипанием. Избегайте образования пузырьков во время смешивания. Заполните обе внутренние канюли 1,5 мкл раствора Aβo, оттягивая поршни до 3,5 мкл.
  6. Проведите линии маркером до и после пузырька воздуха в обоих катетерах. Это служит контрольной точкой для продолжающейся инфузии. Для инфузии поднесите клетку к инфузионному насосу и снимите с него крышку.
  7. Уложите крысу в уютное кресло и плотно соскребите руку обнимателя вокруг ее шеи, чтобы обездвижить голову крысы. Извлеките пустышку из двух направляющих канюль. Вставьте предварительно подготовленную внутреннюю канюлю в направляющую канюлю. Убедитесь, что они полностью вставлены и хорошо закреплены на основании направляющей канюли.
  8. Освободите крысу от уюта и посадите обратно в клетку, чтобы ограничить стресс от соперничества. Внимательно следите за тем, чтобы катетеры не скручивались друг с другом и инфузия проводилась правильно.
  9. Включите инфузионный насос. Введите 1 мкл раствора Aβo со скоростью 0,1 мкл/мин (10 мин). Во время инфузии убедитесь, что поршень шприца перемещается от 3,5 мкл до 2,5 мкл и что пузырь воздуха в обоих катетерах PE50 движется непрерывно.
  10. Оставьте внутреннюю канюлю на месте еще на 5 минут после инфузии, чтобы обеспечить эффективную диффузию раствора Aβo. Верните крысу обратно в объятие, чтобы удалить внутреннюю канюлю и закрытую направляющую канюлю, чтобы предотвратить рефлюкс введенного раствора. Используйте фиктивную канюлю, которая останавливается непосредственно перед угловым рычагом канюли. Верните животное в клетку.
  11. Повторяйте инфузию Aβo один раз в день в течение 6 дней подряд. Усыпьте животное путем обезглавливания.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1
Рисунок 1. Фото животного с двусторонней канюлей во время инфузии Aβo. Раствор Aβo (0,2 мкг/мкл; 1 мкл) вводили бодрствующим и свободно передвигающимся крысам (1 раз в сутки в течение 6 дней) с помощью катетеров PE50, соединенных с внутренней канюлей, вставленной в направляющую канюлю. Лечение контрольными (Ctl) антителами IgG1 или 6E10 вводили непосредственно в месте инфузии Aβo с п...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Искусственная спинномозговая жидкость (аКСФ)Гарвардский аппаратТел.: 59-7316
PE50 Тонкостенный катетерПластмассовый одинС232СТ
Кетамина гидрохлорид (100 мг/мл)Биониша1989529
Ксилаксина гидрохлорид (100 мг/мл)Бимеда8XYL004C
Мелоксикам (5 мг/мл)НорбрукNo 215670И01
Раствор хлоргексидина глюконата 2% и изопропилового спирта 2%Carefusion260100К
Лидокаина гидрохлоридАльведа Фарма0122AG01
Бупивакаина гидрохлоридХоспира1559
Офтальмологическая мазьBaussh and Lomb inc.2125706
Стереотаксическая рамаСтоелтинг51600
Держатель стереотаксической канюлиГарвардский аппарат72-4837 (Английский)
сверлоDremel8050-Н/18
Направляющая канюляПластмассовый один326OPG/spc
Инъекционная канюляПластмассовый одинC315I/spc
Муляж канюлиПластмассовый одинC315DC/spc
Шовная нить с покрытием из викрила рапид 4-0ЭтиконВР2297
Стоматологический акриловый цементГарвардский аппарат72-6906 (Английский)
ВинтыКомпания JI MorrisP0090CE125
Антитело к 6E10 (мышиный изотип IgG1)Биолегенда803003
Антитела для контроля изотипа IgG1 у мышейАбкамAB18447
Осмотические насосы Alzet модель 1007DКорпорация Durect290
ИзофлуранБакстерCA2L9100
Бета-амилоид 1-42рПептидА-1163-1
Шприц Hamilton (10 μл)Наука Фишера14815279
Инфузионный шприцевой насос CMA 402Гарвардский аппаратCMA8003110
Шприц 1 млБД309659
Игла 21GТерумоНН-2125Р
уютно устроитьсяЛомир БиомедикалРТС04
г.

Теги