Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.
1. Стерилизация
- Продезинфицируйте щипцы перед сбором головок, взяв чистые щипцы и проведя стерилизацию сухим жаром в духовке при 200 °C в течение 1 ч. Автоклавируйте всю стеклянную посуду при 121 °C в течение 15 мин перед использованием.
- Выполняйте все описанные работы в кабинете по микробиологии 2 класса. Приготовьте все реагенты в соответствии с инструкциями производителя.
2. Сбор образцов
- На скотобойне ягнята Суэйлдейла были забиты путем оглушения с помощью электричества или пистолета с невыпадающим затвором и обескровлены. Собирают бараньи головы не более чем через 4 ч после убоя.
3. Подготовка кочанов
- Продезинфицируйте лобную часть ягненка, вылив примерно 100 мл раствора диоксида хлора с концентрацией 200 ppm на область пробы. Побрейте лобную часть головы с помощью электрических машинок для стрижки и промойте область 200 мл раствора диоксида хлора с концентрацией 200 ppm.
- Протрите участок этанолом и синим валиком и покройте образец кремом для удаления волос в течение 35 мин. Аккуратно соскребите крем для удаления волос с помощью скребка и оцените образец участка. Если осталось значительное количество волос, повторите процесс эпиляции.
- Используйте еще 200 мл раствора диоксида хлора для промывки участка, а затем промойте этанолом и протрите синим рулоном.
- С помощью стерильного биопсийного перфоратора диаметром 8 мм вырезают образцы кожи диаметром 8 мм из подготовленной области. Удалите образцы с помощью стерильных щипцов и скальпеля с 15 лезвиями, следя за тем, чтобы весь кожный жир был удален.
- Поместите образцы в стерильную банку объемом 0,5 л, наполненную стерильным фосфатно-солевым буфером (PBS), а затем переложите их в стерильные пробирки объемом 50 мл с 50 мл раствора диоксида хлора 200 ppm, дважды переверните и оставьте для стерилизации на 30 минут.
- Извлеките образцы из раствора диоксида хлора и промойте их, поместив в пробирку объемом 50 мл, заполненную 40 мл стерильного PBS. После промывки поместите каждый отдельный образец кожи в отдельную лунку 24-луночного планшета.
- Добавьте 350 мкл предварительно нагретой среды, сохраняя образец на границе раздела воздух-жидкость. Состав сред следующий: среда МК (Medium 199 с солями Хэнкса, L-глутаматом и 1,75 мг/мл бикарбоната натрия) и Ham's F12 в соотношении 1:1, с добавлением фетальной бычьей сыворотки (FBS, 10% v/v), эпидермального фактора роста (EGF, 10 нг/мл), инсулина (5 мкг/мл), пенициллин-стрептомицина (100 ЕД/мл), и амфотерицин В (2,5 мкг/мл).
- Запечатайте 24-луночные планшеты газопроницаемым уплотнением и инкубируйте при температуре 37 °C в влажном тканевом инкубаторе с 5% содержаниемCO2 в течение 24 часов.
4. Хранение образцов кожи
- После инкубации удалите питательную среду и промойте образцы в 500 мкл стерильного фосфатно-солевого буфера (PBS). Добавьте в каждый образец среду, не содержащую антибиотиков, и инкубируйте при температуре 37 °C в увлажненном тканевом инкубаторе с 5% содержаниемCO2 в течение 24 часов для удаления остаточных антибиотиков в образце.
- Если через 24 ч в среде, не содержащей антибиотиков, развивается мутность или грибковая инфекция, образец следует выбросить.
5. Приготовление инокулюма
- Приготовьте пробирку объемом 50 мл с 10 мл стерильного триптического соевого бульона. Возьмите свежую агаровую пластину S. aureus и с помощью тампона переведите несколько колоний в бульон. Инкубировать в течение 18 ч при 37 °C при 150 об/мин.
- Центрифугируйте при 4000 x g в течение 3 мин. Удалите надосадочную жидкость и повторно суспендируйте клеточную гранулу в 10 мл стерильного PBS. Повторите дважды, чтобы обеспечить достаточное промывание ячеек.
- Отрегулируйте инокулюм до 0,6 OD600 в стерильном PBS. Подтвердите загрузку инокулята, проведя ручной подсчет жизнеспособных пластин.
6. Заражение образцов кожи
- Приготовьте свежий 24-луночный планшет с 400 мкл предварительно подогретой среды без антибиотиков и добавьте 24-луночные вкладыши с помощью стерильных щипцов.
- Удалите среду из образцов кожи, промойте 500 мкл стерильного PBS и удалите смывку. С помощью стерильных щипцов аккуратно удерживайте образец на дне лунки.
- С помощью пункционной биопсии диаметром 4 мм сделайте центральный раневой лоскут, прокалывающий его на грубую глубину 1-2 мм. Затем с помощью скальпеля с 15 лезвиями и стерильных зубчатых щипцов для удаления верхнего слоя раневого лоскута. Вариабельность размеров раны может влиять на исход инфекции и конечные колониеобразующие единицы (КОЕ).
- После того, как все образцы будут ранены, перенесите их в 24-луночные вкладыши с помощью стерильных щипцов. Пипеткой внесите 15 μл бактериального инокулюма в раневое ложе. Затем инкубируйте в течение 24 ч при 37 °C в увлажненном тканевом инкубаторе с 5% содержаниемCO2.
- Если необходимы более длительные периоды инкубации, удаляйте среду и заменяйте ее свежей средой каждые 24 ч и инкубируйте в тех же условиях.