Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Методика культивирования нейронов гиппокампа мыши

3.9K просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Янг, Р., и др. Использование первичных культурных нейронов гиппокампа для изучения сборки начальных сегментов аксонов. J. Vis. Exp. (2021)

В видео демонстрируется метод культивирования нейронов из мышиного гиппокампа. Первоначально гиппокампы подвергаются ферментативному перевариванию для расщепления матрикса внеклеточной ткани. Впоследствии переваренная ткань подвергается механическому разрушению для выделения отдельных нейронов. Наконец, эти нейроны культивируются на глиальных фидерных клетках.

Протокол

Все процедуры, связанные со сбором образцов, были выполнены в соответствии с рекомендациями института IRB.

1. Приготовление блюд для кормления клеток глии (за 2 недели до дня культуры)

  1. Препарируйте кору головного мозга мыши в постнатальном возрасте 1 дня и снимите мозговые оболочки.
  2. Разрежьте ткань коры как можно мельче чистыми ножницами в чистой чашке Петри на чистой скамейке.
  3. Перенесите измельченную ткань в 12 мл HBSS и добавьте 1,5 мл 2,5% трипсина и 1% (масс./об.) ДНКазы. Выдерживать на водяной бане 37 °C в течение 15 минут, качать каждые 5 минут. Хорошо переваренная ткань становится липкой и образует большое скопление. Растирайте 10-15 раз с помощью пипетки объемом 10 мл, чтобы разрушить ткань и улучшить пищеварение.
  4. Растирайте хорошо переваренную ткань 10-15 раз с помощью пипетки объемом 5 мл до тех пор, пока большинство кусков не исчезнет, а среда не помутнеет. Пропустите через клеточное ситечко, чтобы удалить оставшиеся кусочки, и добавьте 15 мл глиевой среды (минимальная эфирная среда (MEM) с добавлением глюкозы (0,6% масс./об.), 10% (об/об.) лошадиной сыворотки и пенициллин-стрептомицина (1x) для остановки пищеварения.
  5. Центрифугируйте клетки при давлении 120 x g в течение 5 минут и аспирируйте надосадочную жидкость. Суспендировать клеточную гранулу свежей глиевой средой и семенами в чашках для клеточных культур (около 105 клеток/см2 ).
  6. Замените среду свежей глией на следующий день, чтобы удалить неприкрепленные клетки.
  7. Подкармливайте блюда из глии раз в 3-4 дня свежей глией средней. Хлопните по колбе 5-10 раз рукой, чтобы выбить слабо прикрепленные ячейки, прежде чем менять среду.
  8. После 10 дней культивирования глиальные клетки должны быть почти сливающимися. Отделите клетки глии с 0,25% трипсин-ЭДТА и засейте около 105 клеток в новую 60-миллиметровую чашку для культивирования клеток. Оставшиеся элементы могут быть заморожены для дальнейшего использования.
  9. За 3 дня до дня посева смените среду для глии на среду для культуры нейронов (Нейробазальная-А среда с 1x GlutaMAX-I и 1x добавкой B27)

2. Культура нейронов гиппокампа

ПРИМЕЧАНИЕ: Все шаги выполняются при комнатной температуре.

  1. Препарируйте 6-8 гиппокампов от постнатальных 1-дневных щенков мышей ANK3-E22/23f/f средой HBSS в чашке Петри при комнатной температуре. Разрежьте гиппокамп ножницами для пресечения на более мелкие кусочки. Переложите гиппокамп из чашки Петри в пробирку объемом 15 мл.
  2. Промойте гиппокамп 2x с 5 мл HBSS в тюбике. Оставьте гиппокамп в 4,5 мл 1x HBSS после умывания.
  3. Добавьте 0,5 мл 2,5% трипсина в 4,5 мл HBSS и инкубируйте на водяной бане при температуре 37 °C в течение 15 минут. Переворачивайте трубку каждые 5 минут. Хорошо переваренный гиппокамп должен стать липким и образовать скопление. При необходимости продлите варение еще на 5 минут.
  4. Промойте гиппокамп HBSS 3 раза по 5 минут каждый. Не используйте пылесос для извлечения HBSS. Он очень легко снимает гиппокамп.
  5. Добавьте 2 мл HBSS после промывания и проведите пипеткой гиппокамп вверх и вниз с помощью пипетки Пастера 15 раз.
  6. Растирать ткань отполированной огнем пастеровской пипеткой (диаметр открытого отверстия сужается вдвое) 10 раз. Не превышайте 10 раз, даже если еще остались куски. Чрезмерное сдвигание убивает нейроны.
  7. Оставьте трубку на 5 минут, пока все куски не опустятся на дно. Осторожно с помощью наконечника пипетки объемом 1 мл перенесите надосадочную жидкость, содержащую диссоциированные нейроны, в тарелки (чашка10 5 клеток/60 мм). Добавьте его непосредственно в предварительно инкубированную среду для сервировки и осторожно встряхните тарелку.
  8. Повторяйте шаги 2.6-2.7 с оставшимися чанками до тех пор, пока большая часть чанков не исчезнет.
  9. Через 2-4 часа после посева проверьте облицовку посуды световым микроскопом. Большинство нейронов должны быть прикреплены к покровному листу. Прикрепленные ячейки круглые и яркие. С помощью щипцов с тонким наконечником переверните покровные листы на чашки питателя клеток глии с предварительно подготовленной питательной средой нейронов стороной восковых точек вниз.
  10. Нейроны могут расти в кормушках для клеток глии до 1 месяца. Подкармливайте нейроны каждые 7 дней 1 мл свежей питательной среды для нейронов.
  11. Необязательный шаг: через 1 неделю после посева добавьте цитозин арабинозид (1-β-D-арабинофуранозилцитозин) до конечной концентрации 5 мкМ для ограничения глиальной пролиферации.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
10xHBSSThermo Fisher Scientific14065-056
18 мм покровное стекло (1.5D)Научный центр Фишера12-545-84-1Д
2,5% Трипсин без фенола красногоThermo Fisher Scientific14065-056
Мыши ANK3-E22/23f/fДЖАКСБиржевой No: 029797
Поли-L-лизина гидрохлоридСигма-Олдрич26124-78-7 (Английский)
Добавка B27 без сывороткиThermo Fisher ScientificA3582801
DMEMThermo Fisher Scientific11995073
Добавка GlutaMAX-IThermo Fisher ScientificA1286001
Липофектамин 2000Thermo Fisher Scientific11668030
MEM с солями Эрла и L-глютаминомThermo Fisher Scientific11095-080
Нейробазальная средаThermo Fisher ScientificNo 21103-049
D-глюкозаСигма-ОлдричГ7021
Пенициллин-стрептомицинThermo Fisher Scientific15140122

Теги

Культура нейроновферментативное расщеплениемеханическая диссоциацияглиальные фидерные клеткипокрытие поли-L-лизиномобработка трипсиномклеточная суспензияглиальные клетки корыпервичная культура нейронов