Все процедуры, связанные со сбором образцов, были выполнены в соответствии с рекомендациями института IRB.
1. Покрытие плит
- Покройте 96-луночный микропланшет поли-L-лизином (1 мг/мл, разведенный в 0,1 М боратном буфере [pH: 8,5]; 100 μл/лунку) и инкубируйте в течение ночи при 37 °C.
заметка: Замазывайте только те лунки, которые необходимо использовать. В проводимых здесь экспериментах используются средние 60 скважин. Боратный буфер получают путем смешивания 50 мМ борной кислоты и 12 мМ бората в стерилизованной воде.
- Дважды промойте тарелку стерилизованной водой (250 μл/лунка).
- Один раз промыть пластину свежей питательной средой без добавок (250 μл/лунка).
- Просушите тарелку на чистой скамейке в течение 20 минут.
- Оберните тарелку алюминиевой фольгой и держите при температуре 4 °C до использования (срок действия 1 месяц).
2. Посев клеток
- Добавьте 50 μл/лунку питательной среды в покрытую покрытием пластину и выдержите ее в инкубаторе с температурой 37 °C, 5%CO2 от 30 мин до 1 ч. Заполните периферийные лунки стерилизованной водой (200 мкл/лунка). <бр/>
заметка: Питательную среду готовят путем добавления 50-кратного В-27, 400-кратного глутамакса и 100 Ед/мл пенициллина/стрептомицина в нейробазальную среду (подробнее см. в Таблице материалов).
- Извлеките нейрон криовиальным из резервуара с жидким азотом. Здесь использовались диметилсульфоксид-криоконсервированные (ДМСО-криоконсервированные) нейроны.
- Погрузите криовиал в термоблок при температуре 37 °C на срок до 3 минут и частично разморозьте содержимое. Не прогревайте криовиал слишком долго. Переложите содержимое в пробирку объемом 50 мл, как только она оттает.
- Медленно перенесите криовиальное содержимое нейрона в стерильную пробирку объемом 50 мл (50 мкл/с) по каплям (50 мкл/с) с помощью пипетки объемом 1 мл с широкопористым наконечником.
- Промойте пустой криовиал 1 мл питательной среды (комнатной температуры; RT). Перенесите этот 1 мл питательной среды из криовиальной капли (50 мкл/с) в 50 мл пробирки, содержащей клеточную суспензию.
- Добавьте 9 мл питательной среды (ОТ) в 50 мл пробирки по каплям (0,5 мл/с) и доведите объем до 11 мл. Не повторяйте пипетирование, а медленно перемешивайте клеточную суспензию.
- Посчитайте количество клеток (используйте счетчик клеток или гемоцитометр).
- Перенесите всю клеточную суспензию в резервуар и дозируйте клеточную суспензию на 96-луночный планшет с помощью многоканальной пипетки с широкими порами (1,0 x 10,4 ячейки/лунка). Чтобы уменьшить испарение питательной среды, заполните периферийные лунки стерилизованной водой (шаг 2.1). <бр/>
заметка: Данное исследование подтверждает, что испарение питательной среды невелико для 3-недельной культуры без обмена среды. Норма восстановления среды составляет 3,6% (n = 120 скважин). Таким образом, изменение осмоляльности не будет резким в течение 3-недельного инкубационного периода.
- Инкубируйте нейроны в течение 1-2 часов в инкубаторе с температурой 37 °C и 5%CO2.
- Замените питательную среду 100 μл предварительно подогретой питательной среды (37 °C) на лунку и поместите ее обратно в инкубатор с температурой 37 °C и 5%CO2 (во время культивирования не требуется менять среду).