Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Создание и поддержание астросфер с использованием плюрипотентных стволовых клеток человека

696 просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Cvetkovic, C., et al. Моделирование синаптических микросхем с помощью 3D кокультур астроцитов и нейронов из плюрипотентных стволовых клеток человека. J. Vis. Exp. (2018).

Видео демонстрирует метод создания астросфер из предшественников из человеческих плюрипотентных стволовых клеток. Он включает в себя рост и пролиферацию стволовых клеток с питательными средами, содержащими факторы роста и ингибиторы киназы. Затем эти клетки агрегируются и дифференцируются в астроциты, образуя астросферы.

Протокол

1. Клеточная культура и подготовка реагентов

  1. Подготовьте покрытые покрытием планшеты для культивирования клеток.
    1. Разбавьте раствор покрытия внеклеточного матрикса (ECM) средой DMEM/F12 для получения исходного раствора 1 мг/мл. Разбавленный исходный раствор ЭХМ разложить на 30 конических пробирок по 3 мл каждая и немедленно хранить при температуре -20 °С. Для получения рабочего раствора ресуспендируйте 3 мл заготовки ECM в 33 мл предварительно охлажденной среды DMEM/F12, доведя общий объем до 36 мл при концентрации 80 мкг/мл.
    2. Нанесите мазок 1 мл на лунку 6-луночного планшета для культивирования клеток рабочим раствором ВКМ. Добавьте еще 1 мл DMEM/F12 в лунку (при необходимости), чтобы убедиться, что поверхность лунки полностью покрыта. Перед использованием 6-луночные планшеты для клеточных культур с покрытием постоять при комнатной температуре не менее 1 часа.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Пластины с покрытием можно хранить в инкубаторе или при температуре 4 °C до 2 недель.
  2. Приготовьте составы сред, факторы роста и малые молекулы.
    1. Чтобы приготовить 500 мл среды для плюрипотентных стволовых клеток человека (hPSC), добавьте 20x и 500x добавок в соответствии с инструкциями производителя.
    2. Чтобы приготовить 500 мл нейронной среды (NM), добавьте гепарин до конечной концентрации 2 мг/мл, 1x раствор антибиотика/антимикотика, 1x добавку B27 или 1x N2 добавку в 500 мл флакона DMEM/F12 с добавкой L-глютамина, как описано выше.
    3. Чтобы приготовить 10 мМ (1000x) стокового раствора ингибитора рокиназы Y27632 (Y), добавьте 10 мг порошка в 3 мл фосфатно-солевого буфера (PBS). Отфильтровать, стерилизовать, аликотировать и хранить при температуре -20 °C. Использовать при рабочей концентрации 10 мкМ в среде.
    4. Чтобы приготовить 20 мМ (10 000x) стокового раствора SB431542, добавьте 10 мг порошка в 1,3 мл диметилсульфоксида (ДМСО). Чтобы приготовить 2 мМ (1000x) стокового раствора DMH1, добавьте 10 мг порошка в 13,1 мл ДМСО. Отфильтровать, стерилизовать, аликотировать и хранить каждый раствор при температуре -20 °C. Использовать каждый раствор при рабочей концентрации 2 мкМ в среде (NM + SB431542 + DMH1).
      заметка: Этот протокол рекомендует рабочие концентрации 2 мкМ как SB431542, так и ДМГ1, основываясь на наших наблюдениях и сообщениях других специалистов, утверждающих, что эта концентрация эффективно способствует нервной индукции от ПСК. Также сообщалось о более высоких концентрациях30. Кроме того, при использовании альтернативных сред также было показано, что малые молекулы не являются необходимыми для высокой нейронной конверсии. Таким образом, рабочие концентрации будут варьироваться в зависимости от альтернативных сред для клеточных культур, и оптимальные концентрации должны быть проверены отдельными исследователями.
    5. Для приготовления индивидуальных 100 мкг/мл (10 000x) стоковых растворов эпидермального фактора роста (EGF) и фактора роста фибробластов-2 (FGF2) добавьте по 1 мг каждого из них в 10 мл PBS + 0,1% BSA. Аликвоты EGF и FGF2 храните в щелочных растворах объемом 50 мкл и храните при температуре -80 °C. Используйте каждый из них в рабочей концентрации 10 нг/мл в среде; Например, добавьте 5 мкл EGF и 5 мкл FGF2 к 50 мл NM (NM + EGF + FGF2).
    6. Для приготовления стокового раствора доксициклина гидрохлорида (Dox) сначала растворить порошок в ДМСО до 100 мг/мл и хранить при температуре -20 °С. Затем разведите его до получения исходного раствора 2 мг/мл (1000x) в PBS и храните при -20 °C. Используйте при рабочей концентрации 2 мкг/мл в среде; Например, добавьте 50 мкл Dox к 50 мл NM (NM + Dox).
      заметка: Не замораживайте растворы повторно после размораживания.

2. Генерация нейронных подтипов из индуцированных плюрипотентных клеток человека (hPSCs)

ПРИМЕЧАНИЕ: Все клеточные культуры следует хранить в инкубаторе с 5% CO2 при 37 °C. Эти культуры поддерживаются на комнатном уровне кислорода, хотя могут использоваться и более низкие уровни.

  1. Создание и поддержание предшественников астроцитов (hAstros) из hPSCs.
    заметка: В этом разделе представлен краткий и упрощенный протокол дифференциации. Подробное описание (с формированием эмбриоидного тельца, выбором розетки и этапами регионального моделирования) см. в ранее описанном протоколе (рисунок 1A, пунктирная зеленая рамка).
    1. Затравочные кластеры hPSCs (рис. 1B) на 6-луночные планшеты с покрытием ECM (см. шаг 1.1) с 2 мл среды hPSC + Y на лунку. Кормите стволовые клетки каждый день до тех пор, пока они не сливаются примерно на 50% и не расщепляются по мере необходимости.
      1. Для расщепления hPSCs добавьте 1 мл пропускающего реагента в лунки и через 1 мин аспирацию. Инкубируйте клетки при комнатной температуре в течение 5 мин, добавьте 1 мл среды hPSC и разбейте агрегаты 1:10 на новые лунки с покрытием ECM в 2 мл среды hPSC + Y на лунку.
    2. Поддерживайте стволовые клетки до тех пор, пока они не станут примерно на 50% сливающимися, затем смените среду на NM + SB431542 + DMH1, чтобы вызвать нейронную дифференцировку (день 0). Когда клетки слияются примерно на 95%, разделите 1:6 на новые лунки с покрытием ECM в той же среде.
    3. На 14-й день диссоциируйте клетки с раствором отслойки и перенесите их в непокрытую колбу с буквой Y, чтобы способствовать образованию агрегатов.
      заметка: Добавление Y используется для содействия выживанию клеток и образованию сфер, но не включается в каждую подкормку.
    4. Для генерации нейронных предшественников и нейронов (hNeurons) используйте эти клетки 14-го дня, как описано ниже. В качестве альтернативы можно использовать эти клетки в более поздние моменты времени из монослойных или сферических культур, прежде чем произойдет созревание нейронов или начнется глиогенез><. заметка: По умолчанию этот протокол производит дорсально-кортикальные астроциты. Тем не менее, подтипы астроцитов могут быть регионально определены путем добавления моделирующих морфогенов, если это необходимо. Ретиноевая кислота (РА) может быть добавлена для каудализации клеток в фенотипы спинного мозга, в то время как звуковой еж (СЧГ), сглаженный агонист (САГ) или пурморфамин будут производить вентральные фенотипы.
    5. Для генерации предшественников астроцитов и астроцитов в спонтанно образующихся 3D-агрегатах (hAstrospheres) переключитесь на NM + EGF + FGF2 и подавайте их еженедельно (или по мере необходимости для обеспечения стабильного pH), как описано ранее.
      1. Аккуратно диссоциируйте агрегаты hAstro с помощью отслаивающего раствора при появлении темных центров и удалите сферы, которые спонтанно прикрепляются. Осторожно ломайте сферы раз в неделю, чтобы поддерживать их здоровье и избегать некротических ядер.
        заметка: Не более 5 минут обработки раствором для отслойки.
      2. После 4-6 месяцев расширения подтвердите идентичность клетки и либо заморозьте в криоконсервирующем носителе (согласно инструкциям производителя), либо в альтернативных условиях хранения для длительного хранения в жидком азоте или немедленно используйте для экспериментов.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1
Рисунок 1: Пошаговое изображение дифференцировки и формирования трехмерных нейронных сфер, полученных из hPSCs. (A) График ключевых шагов в протоколе. (B) Чистые популяции нервных клеток могут быть получены из индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека (hPSCs). Для получения предшественников астроцитов (пунктирный зеленый прямоугольник) см. шаг 2.1. (C) Индуцируемые нейроны (iNeurons; см...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
6-луночная пластинаНаучный центр Фишера08-772-1Б
Конические тубы 15 млOlympus Plastics28-101
АккутазасигмаА6964-100МЛРешение для отслоения
Планшет AggreWellТехнологии стволовых клетокNo 34850 (Английский
Раствор для промывки, препятствующий прилипаниюТехнологии стволовых клеток7010Предотвращение адгезии клеток к микролуночным планшетам
Анти/антиТермофишер15240062
В27Термофишер17504044Приложение к СМИ
Нейронная среда BrainPhysТехнологии стволовых клетокNo 5790Альтернатива нейрофизиологической базальной среде
Криостар CS10Технологии стволовых клеток7930Среда для криоконсервации с 10% ДМСО
DMEM/F12Термофишер10565-042 (Английский)С добавкой GlutaMAX
ДМГ-1Технологии стволовых клеток73634ОПАСНОСТЬ: Токсичен при проглатывании. Рабочая концентрация: 2 мкМ
Доксициклина гидрохлорид (Dox)сигмаД3072-1млОПАСНОСТЬ: Токсичен для беременных женщин. Рабочая концентрация: 2 мкг/мл
Эпидермальный фактор роста (EGF)ПепротехАФ-100-15Рабочая концентрация: 10 нг/мл
Фактор роста фибробластов-2 (FGF)Пепротех100-18ВРабочая концентрация: 10 нг/мл
Гемацитометр или автоматический счетчик ячеекТехнологии LifeAMQAX1000
Мембранная матрица MatrigelКорнинг354230 (АнглийскийРешение для нанесения покрытий ECM. Рабочая концентрация: 80 мкг/мл. Приготовьте на льду и убедитесь, что пипетки, пробирки и фильтрующий материал предварительно охлаждены.
Монтажное решение
N2Термофишер17502048Приложение к СМИ
Фосфатно-солевой буфер (PBS)Технологии стволовых клетокКА008-300
РеЛеСРТехнологии стволовых клетокNo 5872Реагент для отслойки и пропускания
Ингибитор рокиназы Y27632- (Y)Токрис1254Рабочая концентрация: 10 мкМ
SB431542Технологии стволовых клеток72234Рабочая концентрация: 2 мкМ
Колба для культур T25Olympus Plastics25-207Вентилируемые колпачки
Колба для культур T75Olympus Plastics25-209Вентилируемые колпачки
) ) г. гг.

Теги

Формирование астросфернейральная дифференцировкаингибитор Rho-киназыпланшет с покрытием из внеклеточного матриксараствор для отсоединенияагрегация сфероидовпредшественники астроцитовсреда с факторами ростасозревание предшественников