Методическая статья

Генерация предшественников корковых интернейронов из эмбриональных стволовых клеток мыши

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Tischfield, D. J., et al Дифференцировка эмбриональных стволовых клеток мыши в предшественники кортикальных интернейронов. J. Vis. Exp. (2017)

В этом видео представлен метод генерации предшественников корковых интернейронов из эмбриональных стволовых клеток мыши. Протокол включает в себя культивирование стволовых клеток в средах, содержащих специфические низкомолекулярные ингибиторы, которые способствуют пролиферации стволовых клеток и их агрегации в эмбриоидные тельца (БЭ). Впоследствии БЭ диссоциируют ферментами и наносят на лунки культуральных планшетов, покрытые белками адгезии, чтобы способствовать их дифференцировке в предшественники корковых интернейронов.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Подготовка среды

ПРИМЕЧАНИЕ: Нагрейте все среды до 37 ° C перед использованием в клеточной культуре.

  1. Среда для эмбриональных фибробластов мыши (MEF) (для приготовления 500 мл)
    1. Добавьте 50 мл фетальной бычьей сыворотки (FBS) к 449 мл модифицированной орлиной среды Dulbecco (DMEM) и профильтруйте через 500 мл фильтрующей установки 0,22 мкм.
    2. Добавьте 1 мл противомикробного средства (50 мг/мл) после фильтрации. Хранить среду при температуре 4 °C до 1 месяца или при температуре ≤ -20 °C.
  2. Среда N2 (для приготовления 500 мл)
    1. Добавьте 5 мл L-аланин-L-глутамина (100x) и 500 мкл 2-меркаптоэтанола (55 мМ) в 489,5 мл DMEM: Питательная смесь F-12 (DMEM/F-12) и отфильтруйте через фильтрующую установку для пор объемом 500 мл 0,22 мкм.
    2. Добавьте 1 мл противомикробного средства (50 мг/мл) и 5 мл N2 добавки-B после фильтрации. Храните носитель при температуре 4 °C в темноте до 1 месяца.
  3. Бессывороточная питательная среда (KSR) (для приготовления 500 мл)
    1. Добавьте 75 мл добавки среды, не содержащей сыворотки, 5 мл L-глутамина (100x), 5 мл заменимых аминокислот MEM (MEM-NEAA) (100x) и 500 мкл 2-меркаптоэтанола (55 мМ) до 413,5 мл DMEM, не содержащего глютамин, и отфильтруйте через 500 мл фильтра пор 0,22 мкм.
    2. Добавьте 1 мл противомикробного средства (50 мг/мл) после фильтрации. Храните носитель при температуре 4 °C до 1 месяца.
  4. Среда для эмбриональных стволовых клеток мыши (для приготовления 500 мл)
    1. Добавьте 75 мл FBS для стволовых клеток, 5 мл MEM-NEAA (100x), 5 мл L-глутамина (100x) и 500 мкл 2-меркаптоэтанола (55 мM) до 413,5 мл DMEM, не содержащего глутамин, и профильтруйте через 500 мл фильтрующего устройства с порами 0,22 мкм.
    2. Добавьте 1 мл противомикробного средства (50 мг/мл) после фильтрации. Храните носитель при температуре 4 °C в темноте до 1 месяца или в течение ≤ -20 °C.

2. Культивирование mESCs

  1. Пластинируйте митотически неактивные клетки-питатели MEF в средах MEF на планшеты, обработанные тканевой культурой, со скоростью 3-4 x 104 клеток/см2. Дайте им не менее 12 часов, чтобы они осядли в инкубаторе для клеточных культур при температуре 37 °C при относительной влажности ≥ 95% и 5%CO2, прежде чем осаждать mESCs. Если вы не используете его сразу, заменяйте фильтрующий материал каждые 3 дня. Утилизируйте MEF, если они не были использованы, в течение 7 дней после нанесения.
  2. Добавляйте mESCs (диапазон плотности от 1-4 x 10 до4 клеток/см2) к пластинам MEF в средах mESC, содержащих фактор ингибирования лейкемии мышей (mLIF) (1000 Ед/мл). Инкубируйте клетки при температуре 37 °C при относительной влажности ≥ 95% и 5%CO2.
  3. Проведите mESCs с использованием трипсин-ЭДТА (0,05% трипсина) (1:5-1:10) после того, как блюдо становится ~ 70-80% сливающимся или если колонии начинают соприкасаться. Обычно это происходит каждые 2 дня, но может занять до 4 или 5 дней, в зависимости от исходной плотности покрытия.
  4. Поддерживайте mESCs на слое фидера MEF в среде mESC для сохранения плюрипотентности.
  5. Прежде чем начать дифференцировку, пропустите клетки по крайней мере один раз на пластины, покрытые желатином, без MEF, чтобы разбавить MEF.
    1. Приготовьте покрытые желатином пластины, добавив 0,1% желатина в фосфатно-солевой буфер (PBS) с Ca2+/Mg2+ в чашку, обработанную культурой тканей, и оставьте при температуре 37 °C не менее чем на 1 ч. Планшет 1,5-2 x 10 6 клеток/10 см планшет (2,7-3,6 x 104 клеток/см2) и дайте клеткам разрастись в течение 2 дней до начала дифференцировки.

3. Дифференциация mESCs в MGE-подобные теленцефальные предшественники

  1. День дифференцировки (DD) 0 = "флоат-клетки"
    1. После того, как mESCs вырастут на пластинах, покрытых желатином, в течение 2 дней, аспирируйте среду и промойте клетки один раз PBS без Ca2+/Mg2+. Добавьте достаточное количество трипсина-ЭДТА (0,05% трипсина), чтобы покрыть поверхность планшета (обычно 4 мл трипсина-ЭДТА на одну чашку для культуры тканей длиной 10 см), и поместите клетки обратно в инкубатор при температуре 37 °C с относительной влажностью ≥95% и 5%СО2 на 4 минуты.
    2. Через 4 минуты угасите трипсин-ЭДТА, используя в 2 раза больший объем с помощью среды mESC. Переложите ячейки в центрифужную трубку соответствующего размера и центрифугируйте ячейки при давлении 200 x g в течение 5 минут. Через 5 минут извлеките трубку и аспирируйте среду, не повреждая гранулы. Ресуспендируйте гранулу в 1 мл среды KSR:N2 (1:1), содержащей ингибитор BMP LDN-193189 (250 нМ) и ингибитор Wnt XAV-939 (10 мкМ).
    3. Измерьте концентрацию клеток с помощью гемоцитометра или автоматического счетчика клеток. Начните выращивание клеток в качестве эмбриоидных телец (БЭ), добавив 75 000 клеток/мл в среде KSR:N2 (1:1), содержащей LDN-193189 (250 нМ) и XAV-939 (10 мкМ) в неадгезивных чашках для культивирования тканей. Инкубируйте клетки при температуре 37 °C при относительной влажности ≥ 95% и 5%CO2.
  2. На DD1 подготовьте к «посадке» клеток, покрыв обработанные культурой тканей чашки поли-L-лизином (10 мкг/мл в PBS с Ca2+/Mg2+) в течение ночи (О/Н) при 37 °C при относительной влажности ≥ 95% или в течение не менее 1 ч.
  3. На DD2 аспирируйте поли-L-лизин и покройте пластины ламинином (10 мкг/мл в PBS с Ca2+/Mg2+) O/N при 37 °C при относительной влажности ≥ 95%.
    заметка: Хотя O/N является оптимальным, всего 2 часа может быть достаточно. Если планшеты не будут использованы на следующий день, аспирируйте ламинин, замените на PBS без Ca2+/Mg2+ и храните при температуре 4 °C до 2 недель.
  4. DD3 («клетки суши»)
    1. Перед началом диссоциации БЭ аспирируйте ламинин и дайте пластинам полностью высохнуть в капюшоне для культуры тканей. Не используйте пластины, которые выглядят блестящими или заметно влажными. Переложите БЭ со средой в пробирку объемом 15 мл и центрифугируйте в течение 3-4 минут при 15 х г или до тех пор, пока БЭ не гранулируются.
  5. Отсадите среду и добавьте 3 мл раствора для отсоединения клеток, содержащего ДНКазу (2 Ед/мл), и инкубируйте при температуре 37 °C с относительной влажностью ≥ 95% и 5%CO2 в течение 15 мин. Осторожно переворачивайте пробирку каждые 3 минуты, чтобы способствовать диссоциации БЭ.
  6. Как только БЭ перестанут быть видимыми или пройдет 15 минут, добавьте 6 мл KSR:N2 (1:1), содержащего ДНКазу (1 ЕД/мл), и центрифугируйте в течение 5 минут при 200 x g.
  7. Пластинируйте клетки в KSR:N2 (1:1), содержащие LDN-193189 (250 нМ), XAV-939 (10 мкМ) и ингибитор ROCK Y-27632 (10 мкМ) при 4,5-5 x 10 4 кл/см2.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Эмбриональные фибробласты мыши (CF-1 MEF IRR 7M)MTI-GlobalstemGSC-6101G1 флакон 7М MEF достаточно для четырех 10-см пластин TC.
ФБСАтланта БиолаксS11150H
ПримоцинИнвивогенАнт-пм-2Также известен как противомикробное средство. Не фильтруйте с помощью основного фильтрующего материала - добавляйте после фильтрации.
N2 Добавка-BТехнологии стволовых клеток7156Не фильтруйте с помощью основного материала - добавляйте после фильтрации
Глутамакс (100x)ТермоФишер35050061Также известен как L-аланин-L-глютамин.
Замена сыворотки KnockOut (KSR)ТермоФишер10828028Также известна как безсывороточная средняя добавка.
L-глютамин (100x)ТермоФишер25030081
MEM-NEAA (100-кратный)ТермоФишер11140050
2-МеркаптоэтанолТермоФишер21985023
Нокаут DMEMТермоФишер10829018
Гиклон FBSВВР82013-578Также известен как FBS класса стволовых клеток.
Чашка для обработанной культурой тканей (10 см)BD Falcon353003
Неадгезивная стерильная чашка Петри (10см)ВВР25384-342 (Английский)
Фактор ингибирования лейкемии (mLIF)ХемиконESG1107Не замораживать, хранить при температуре 4'C.
DMEM/F12ТермоФишер11330032
0,1% раствор желатинаАТКСАТКС ПКС-999-027
ЛамининсигмаЛ2020
Поли-L-лизинсигмаП6282
Трипсин-ЭДТА (0,05%)ТермоФишер25300054
АккутазаТермоФишерA1110501Также известен как реагент диссоциации клеток, не содержащий трипсин.
RQ1 РНКаза-свободная ДНКазаКомпания PromegaМ610А
ЛДН-193189Стемгент04-1974Ресуспендия в ДМСО и хранение при -80'C в одноразовых аликвотах
ХАВ939Стемгент04-1946Ресуспендия в ДМСО и хранение при -80'C в одноразовых аликвотах
Ингибитор ROCK (Y-27632)Токрис1254Ресуспендия в ДМСО и хранение при -80'C в одноразовых аликвотах
г.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Embryoid Body FormationSmall Molecule InhibitorsEnzymatic DissociationCell PlatingAdhesion Protein CoatingNeural DifferentiationSerum Free MediaCentrifugation Protocol

Похожие статьи