Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Генерация предшественников корковых интернейронов из эмбриональных стволовых клеток мыши

646 просмотров

⸱

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Tischfield, D. J., et al Дифференцировка эмбриональных стволовых клеток мыши в предшественники кортикальных интернейронов. J. Vis. Exp. (2017)

В этом видео представлен метод генерации предшественников корковых интернейронов из эмбриональных стволовых клеток мыши. Протокол включает в себя культивирование стволовых клеток в средах, содержащих специфические низкомолекулярные ингибиторы, которые способствуют пролиферации стволовых клеток и их агрегации в эмбриоидные тельца (БЭ). Впоследствии БЭ диссоциируют ферментами и наносят на лунки культуральных планшетов, покрытые белками адгезии, чтобы способствовать их дифференцировке в предшественники корковых интернейронов.

Протокол

1. Подготовка среды

ПРИМЕЧАНИЕ: Нагрейте все среды до 37 ° C перед использованием в клеточной культуре.

  1. Среда для эмбриональных фибробластов мыши (MEF) (для приготовления 500 мл)
    1. Добавьте 50 мл фетальной бычьей сыворотки (FBS) к 449 мл модифицированной орлиной среды Dulbecco (DMEM) и профильтруйте через 500 мл фильтрующей установки 0,22 мкм.
    2. Добавьте 1 мл противомикробного средства (50 мг/мл) после фильтрации. Хранить среду при температуре 4 °C до 1 месяца или при температуре ≤ -20 °C.
  2. Среда N2 (для приготовления 500 мл)
    1. Добавьте 5 мл L-аланин-L-глутамина (100x) и 500 мкл 2-меркаптоэтанола (55 мМ) в 489,5 мл DMEM: Питательная смесь F-12 (DMEM/F-12) и отфильтруйте через фильтрующую установку для пор объемом 500 мл 0,22 мкм.
    2. Добавьте 1 мл противомикробного средства (50 мг/мл) и 5 мл N2 добавки-B после фильтрации. Храните носитель при температуре 4 °C в темноте до 1 месяца.
  3. Бессывороточная питательная среда (KSR) (для приготовления 500 мл)
    1. Добавьте 75 мл добавки среды, не содержащей сыворотки, 5 мл L-глутамина (100x), 5 мл заменимых аминокислот MEM (MEM-NEAA) (100x) и 500 мкл 2-меркаптоэтанола (55 мМ) до 413,5 мл DMEM, не содержащего глютамин, и отфильтруйте через 500 мл фильтра пор 0,22 мкм.
    2. Добавьте 1 мл противомикробного средства (50 мг/мл) после фильтрации. Храните носитель при температуре 4 °C до 1 месяца.
  4. Среда для эмбриональных стволовых клеток мыши (для приготовления 500 мл)
    1. Добавьте 75 мл FBS для стволовых клеток, 5 мл MEM-NEAA (100x), 5 мл L-глутамина (100x) и 500 мкл 2-меркаптоэтанола (55 мM) до 413,5 мл DMEM, не содержащего глутамин, и профильтруйте через 500 мл фильтрующего устройства с порами 0,22 мкм.
    2. Добавьте 1 мл противомикробного средства (50 мг/мл) после фильтрации. Храните носитель при температуре 4 °C в темноте до 1 месяца или в течение ≤ -20 °C.

2. Культивирование mESCs

  1. Пластинируйте митотически неактивные клетки-питатели MEF в средах MEF на планшеты, обработанные тканевой культурой, со скоростью 3-4 x 104 клеток/см2. Дайте им не менее 12 часов, чтобы они осядли в инкубаторе для клеточных культур при температуре 37 °C при относительной влажности ≥ 95% и 5%CO2, прежде чем осаждать mESCs. Если вы не используете его сразу, заменяйте фильтрующий материал каждые 3 дня. Утилизируйте MEF, если они не были использованы, в течение 7 дней после нанесения.
  2. Добавляйте mESCs (диапазон плотности от 1-4 x 10 до4 клеток/см2) к пластинам MEF в средах mESC, содержащих фактор ингибирования лейкемии мышей (mLIF) (1000 Ед/мл). Инкубируйте клетки при температуре 37 °C при относительной влажности ≥ 95% и 5%CO2.
  3. Проведите mESCs с использованием трипсин-ЭДТА (0,05% трипсина) (1:5-1:10) после того, как блюдо становится ~ 70-80% сливающимся или если колонии начинают соприкасаться. Обычно это происходит каждые 2 дня, но может занять до 4 или 5 дней, в зависимости от исходной плотности покрытия.
  4. Поддерживайте mESCs на слое фидера MEF в среде mESC для сохранения плюрипотентности.
  5. Прежде чем начать дифференцировку, пропустите клетки по крайней мере один раз на пластины, покрытые желатином, без MEF, чтобы разбавить MEF.​
    1. Приготовьте покрытые желатином пластины, добавив 0,1% желатина в фосфатно-солевой буфер (PBS) с Ca2+/Mg2+ в чашку, обработанную культурой тканей, и оставьте при температуре 37 °C не менее чем на 1 ч. Планшет 1,5-2 x 10 6 клеток/10 см планшет (2,7-3,6 x 104 клеток/см2) и дайте клеткам разрастись в течение 2 дней до начала дифференцировки.

3. Дифференциация mESCs в MGE-подобные теленцефальные предшественники

  1. День дифференцировки (DD) 0 = "флоат-клетки"
    1. После того, как mESCs вырастут на пластинах, покрытых желатином, в течение 2 дней, аспирируйте среду и промойте клетки один раз PBS без Ca2+/Mg2+. Добавьте достаточное количество трипсина-ЭДТА (0,05% трипсина), чтобы покрыть поверхность планшета (обычно 4 мл трипсина-ЭДТА на одну чашку для культуры тканей длиной 10 см), и поместите клетки обратно в инкубатор при температуре 37 °C с относительной влажностью ≥95% и 5%СО2 на 4 минуты.
    2. Через 4 минуты угасите трипсин-ЭДТА, используя в 2 раза больший объем с помощью среды mESC. Переложите ячейки в центрифужную трубку соответствующего размера и центрифугируйте ячейки при давлении 200 x g в течение 5 минут. Через 5 минут извлеките трубку и аспирируйте среду, не повреждая гранулы. Ресуспендируйте гранулу в 1 мл среды KSR:N2 (1:1), содержащей ингибитор BMP LDN-193189 (250 нМ) и ингибитор Wnt XAV-939 (10 мкМ).
    3. Измерьте концентрацию клеток с помощью гемоцитометра или автоматического счетчика клеток. Начните выращивание клеток в качестве эмбриоидных телец (БЭ), добавив 75 000 клеток/мл в среде KSR:N2 (1:1), содержащей LDN-193189 (250 нМ) и XAV-939 (10 мкМ) в неадгезивных чашках для культивирования тканей. Инкубируйте клетки при температуре 37 °C при относительной влажности ≥ 95% и 5%CO2.
  2. На DD1 подготовьте к «посадке» клеток, покрыв обработанные культурой тканей чашки поли-L-лизином (10 мкг/мл в PBS с Ca2+/Mg2+) в течение ночи (О/Н) при 37 °C при относительной влажности ≥ 95% или в течение не менее 1 ч.
  3. На DD2 аспирируйте поли-L-лизин и покройте пластины ламинином (10 мкг/мл в PBS с Ca2+/Mg2+) O/N при 37 °C при относительной влажности ≥ 95%.
    заметка: Хотя O/N является оптимальным, всего 2 часа может быть достаточно. Если планшеты не будут использованы на следующий день, аспирируйте ламинин, замените на PBS без Ca2+/Mg2+ и храните при температуре 4 °C до 2 недель.
  4. DD3 («клетки суши»)
    1. Перед началом диссоциации БЭ аспирируйте ламинин и дайте пластинам полностью высохнуть в капюшоне для культуры тканей. Не используйте пластины, которые выглядят блестящими или заметно влажными. Переложите БЭ со средой в пробирку объемом 15 мл и центрифугируйте в течение 3-4 минут при 15 х г или до тех пор, пока БЭ не гранулируются.
  5. Отсадите среду и добавьте 3 мл раствора для отсоединения клеток, содержащего ДНКазу (2 Ед/мл), и инкубируйте при температуре 37 °C с относительной влажностью ≥ 95% и 5%CO2 в течение 15 мин. Осторожно переворачивайте пробирку каждые 3 минуты, чтобы способствовать диссоциации БЭ.
  6. Как только БЭ перестанут быть видимыми или пройдет 15 минут, добавьте 6 мл KSR:N2 (1:1), содержащего ДНКазу (1 ЕД/мл), и центрифугируйте в течение 5 минут при 200 x g.
  7. Пластинируйте клетки в KSR:N2 (1:1), содержащие LDN-193189 (250 нМ), XAV-939 (10 мкМ) и ингибитор ROCK Y-27632 (10 мкМ) при 4,5-5 x 10 4 кл/см2.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Эмбриональные фибробласты мыши (CF-1 MEF IRR 7M)MTI-GlobalstemGSC-6101G1 флакон 7М MEF достаточно для четырех 10-см пластин TC.
ФБСАтланта БиолаксS11150H
ПримоцинИнвивогенАнт-пм-2Также известен как противомикробное средство. Не фильтруйте с помощью основного фильтрующего материала - добавляйте после фильтрации.
N2 Добавка-BТехнологии стволовых клеток7156Не фильтруйте с помощью основного материала - добавляйте после фильтрации
Глутамакс (100x)ТермоФишер35050061Также известен как L-аланин-L-глютамин.
Замена сыворотки KnockOut (KSR)ТермоФишер10828028Также известна как безсывороточная средняя добавка.
L-глютамин (100x)ТермоФишер25030081
MEM-NEAA (100-кратный)ТермоФишер11140050
2-МеркаптоэтанолТермоФишер21985023
Нокаут DMEMТермоФишер10829018
Гиклон FBSВВР82013-578Также известен как FBS класса стволовых клеток.
Чашка для обработанной культурой тканей (10 см)BD Falcon353003
Неадгезивная стерильная чашка Петри (10см)ВВР25384-342 (Английский)
Фактор ингибирования лейкемии (mLIF)ХемиконESG1107Не замораживать, хранить при температуре 4'C.
DMEM/F12ТермоФишер11330032
0,1% раствор желатинаАТКСАТКС ПКС-999-027
ЛамининсигмаЛ2020
Поли-L-лизинсигмаП6282
Трипсин-ЭДТА (0,05%)ТермоФишер25300054
АккутазаТермоФишерA1110501Также известен как реагент диссоциации клеток, не содержащий трипсин.
RQ1 РНКаза-свободная ДНКазаКомпания PromegaМ610А
ЛДН-193189Стемгент04-1974Ресуспендия в ДМСО и хранение при -80'C в одноразовых аликвотах
ХАВ939Стемгент04-1946Ресуспендия в ДМСО и хранение при -80'C в одноразовых аликвотах
Ингибитор ROCK (Y-27632)Токрис1254Ресуспендия в ДМСО и хранение при -80'C в одноразовых аликвотах
г.

Теги

Формирование эмбриональных телецнизкомолекулярные ингибиторыферментативная диссоциацияпосев клетокпокрытие адгезивными белкаминейральная дифференцировкабезсывороточная средапротокол центрифугирования