1. Общие соображения
- Список необходимых реагентов см. в Таблице материалов/оборудования. Выполняйте все этапы в строгих асептических условиях.
- Используйте термоинактивированную фетальную бычью сыворотку (hiFBS) для всех препаратов среды, которые включают FBS. Для нагревания необходимо нагреть 50 мл аликвоты FBS при температуре 56 °C в течение 30 минут, переворачивая каждые 10 минут (см. также Таблицу 1).
заметка: Когда FBS используется без тепловой инактивации, эпителиальноподобный фенотип прогрессирует быстрее во всех культурах клеток SH-SY5Y.
- Перед использованием дайте среде нагреться и сбалансироваться в инкубаторе, чтобы установить надлежащий баланс pH перед каждым шагом. Например, для полного равновесия 50 мл среды требуется примерно один час (pH 7, 37 °C, 5% CO2).
заметка: В этом протоколе используется двухступенчатая процедура расщепления, которая требует трипсинизации и повторной пластинации частично дифференцированных клеток SH-SY5Y. Это стрессовый процесс для этих исключительно хрупких клеток. Поэтому важно инкубировать клетки в трипсине в течение минимального количества времени. Это обеспечит преимущественный подъем нейронов, оставляя эпителиальные клетки все еще прикрепленными к чашке.
- Медленно выполняйте тритурацию дифференцированных клеток с помощью пластиковой пипетки объемом 10 мл, кончиком которой следует прижать дно конической трубки, содержащей клетки. Выполняйте растирание с медленной скоростью, вверх и вниз не более пяти раз.
2. Размораживание и культивирование недифференцированных клеток нейробластомы SH-SY5Y
- Подготовьте основные питательные среды.
- Быстро разморозьте замороженные клетки на водяной бане при температуре 37 °C (примерно 2 минуты).
- Ресуспендируйте клетки в 9 мл основной питательной среды в конической пробирке объемом 15 мл, а затем центрифугируйте в течение 2 мин при 1000 x g.
- Аспирируйте надосадочную жидкость, стараясь не повредить гранулированные клетки, и мягко ресуспендируйте клетки в 10 мл основной питательной среды.
- Пластинчатые ячейки на колбу Т-25 или 60 мм2 тарелки.
- На следующий день замените носители для удаления омертвевших клеток.
3. День 0: Покрытие клеток для дифференцировки
- График дифференцировки показан на рисунке 1.
- Промойте недифференцированные клетки 1x PBS, аспирируйте, а затем трипсинизируйте с помощью 1-2 мл подогретого 1x 0,05% Trypsin-EDTA.
- Когда клетки окажутся в трипсине, инкубируйте в инкубаторе в течение примерно 3 минут.
- Утолите трипсин, добавив 10 мл основной питательной среды, промойте стенки колбы или посуды и слегка разрастите 1-3 раза. Переложите содержимое в коническую пробирку объемом 15 мл.
- Центрифугируйте в течение 2 минут при давлении 1 000 x g и отсасывайте среду, стараясь не повредить гранулу.
- Суспендируйте гранулы в 5 мл основной питательной среды и растирайте 1-3 раза.
- Подсчитайте клетки с помощью гемоцитометра, затем разбавьте с помощью основной питательной среды до 50 000 клеток/мл.
- Тарелка 2 мл клеток на 35 мм2 чашки, всего 100 000 клеток на чашку и поместите обратно в инкубатор.
4. День 1: Смена медиа (Дифференциация медиа #1)
- Аликвоту 50 мл дифференцировочной среды #1 (см. Таблицу 2) и инкубировать на водяной бане при температуре 37 °C.
- Когда среда нагрета, дайте ей сбалансироваться в инкубаторе (37 °C, 5%CO2) в течение как минимум одного часа, чтобы установить надлежащий баланс pH перед использованием.
- Добавляйте ретиноевую кислоту (RA) (см. Таблицу 1) в подогретую и сбалансированную среду непосредственно перед добавлением среды в посуду.
заметка: Ретиноевая кислота светочувствительна и должна храниться в темных бутылках при температуре 4 °C
- Аккуратно отсасывайте старый средний материал и выбросьте.
- Добавьте 2 мл дифференцировочной среды #1 с RA на чашку 35мм2 и верните в инкубатор.
5. День 3: Смена медиа (Дифференциация медиа #1)
- Повторите раздел 4 (шаги 1-5)
6. День 5: Смена медиа (Дифференциация медиа #1)
- Повторите раздел 4 (шаги 1-5)
7. День 7: Разделенные ячейки 1:1
- Добавляйте РА в подогретый и сбалансированный фильтрующий материал #1 непосредственно перед добавлением фильтрующего материала в блюда.
- Аккуратно отсасывайте старый средний материал и выбросьте.
- Добавьте 200 мкл подогретого 0,05% трипсина ЭДТА 1x Трипсина ЭДТА на чашку 35мм2 и прогревайте в инкубаторе примерно 2-3 минуты или до тех пор, пока клетки не будут заметно подняты с тарелки, как это видно под микроскопом.
- Утолите трипсин, добавив 2 мл дифференцировочной среды #1 с RA на чашку 35мм2 и используйте эту среду для смывания оставшихся нейрональных клеток с тарелки. Затем переложите содержимое в коническую пробирку объемом 50 мл.
заметка: Не трипсинизируйте слишком много блюд одновременно на этапах трипсинизации. Это помогает гарантировать, что культуры нейронов не инкубируются в трипсине слишком долго, что может быть цитотоксичным.
- Смешайте содержимое до 10 тарелок в конической пробирке объемом 50 мл и осторожно растирайте вверх и вниз не более пяти раз с помощью пластиковой пипетки объемом 10 мл.
- Аликвот 2 мл клеточной суспензии в свежие 35 мм 2 посуды и вернуть в инкубатор.
8. День 8: Смена медиа (Дифференциация медиа #2)
- Добавляйте РА (см. Таблицу 1) в подогретые и сбалансированные среды непосредственно перед добавлением среды в блюда.
- Аккуратно отсасывайте старый средний материал и выбросьте.
- Медленно добавьте 2 мл дифференцировочной среды #2 (см. Таблицу 2) с RA на чашку 35мм2 и верните в инкубатор. Не позволяйте нейронам подвергаться воздействию воздуха в течение длительного периода времени, так как они могут быстро высохнуть.
9. День 9: Готовим блюда, покрытые внеклеточным матриксом (ECM)
- Разморозьте один флакон раствора ECM на льду и разведите 1:100 в холодном DMEM.
- Выдавите по 2 мл смеси в каждую форму диаметром 35мм2 и убедитесь, что все основание формы покрыто.
- Поместите в инкубатор (37 °C, 5%CO2) на 1 час или на ночь.
- Асасируйте смесь и дайте высохнуть на воздухе в течение примерно 1 часа в вытяжке. Хранить при комнатной температуре до 2 месяцев.
10. День 10: Перенос ячеек на пластины с покрытием ECM 1:1
- Добавляйте РА (см. Таблицу 1) в подогретые и сбалансированные среды непосредственно перед добавлением среды в блюда.
- Аккуратно отсасывайте от среды и выбросьте.
- Добавьте 200 мкл подогретого трипсина в каждую чашку диаметром 35мм2 и дайте инкубироваться при комнатной температуре в течение примерно 1-2 минут или до тех пор, пока нейроны не будут заметно подняты из чашки><, как это видно под микроскопом.
заметка: Выполняйте этот этап трипсинизации при комнатной температуре, чтобы избежать чрезмерной инкубации нейронов трипсином и причинения вреда. На этой стадии нейроны высвобождаются из пластин гораздо быстрее, чем эпителиальноподобные клетки.
- Утолите трипсин, добавив 2 мл дифференцировочной среды #2 на чашку 35мм2, и используйте эту среду для смывания оставшихся нейрональных клеток с пластины. Затем переложите содержимое в коническую пробирку объемом 50 мл.
- Смешайте содержимое до 10 тарелок в конической пробирке объемом 50 мл и осторожно растирайте вверх и вниз не более пяти раз с помощью пластиковой пипетки объемом 10 мл.
- Дозируйте 2 мл клеточной суспензии в 2 чашки с покрытием ECM 35 мм 2 и верните в инкубатор.
11. День 11: Смена медиа (Дифференциация медиа #3)
- Добавляйте РА (см. Таблицу 1) в подогретые и сбалансированные среды непосредственно перед добавлением среды в блюда.
- Аккуратно отсасывайте старый средний материал и выбросьте.
- Медленно добавьте 2 мл дифференцировочной среды #3 (см. Таблицу 2) с RA на чашку 35мм2 и верните в инкубатор. Не допускайте воздействия воздуха на нейроны в течение длительного периода времени.
12. День 14: Смена медиа (Дифференциация медиа #3)
- Повторите раздел 11 (шаги 1-3)
13. День 17: Последнее изменение медиа (Дифференциация медиа #3)
- Повторите раздел 11 (шаги 1-3)
14. День 18: Культуры нейронов готовы к использованию
- Меняйте среду на свежую среду для дифференцировки #3 с РА каждые 3 дня для поддержания здоровья нейронов.
заметка: Клетки должны быть дифференцированы в нейроны и проявлять нейронный фенотип. Культуры обычно стабильны в течение 14 дней после терминальной дифференцировки. Однако продолжительность жизнеспособности нейронов зависит от числа проходов недифференцированных клеток в начале дифференцировки. Более высокое число пассажей дает дифференцированные нейроны с более коротким сроком службы.
Таблица 1: Стоковые решения и компоненты.
| компонент | подробности | запас | резолюция |
| 10 μM RA | Полностью транс-ретиноевая кислота | 5 mM | Ресуспендировать 50 мг РА в 33,3 мл 95% EtOH. РА чувствителен к теплу, свету и воздуху. Хранить в темной бутылке при температуре 4 °C до 6 недель. Используйте при разведении 1:500 и разбавьте в дифференцировочной среде непосредственно перед использованием |
| (300,44 г/моль) |
| 1х Б-27 | Дополнение к B-27 | В 50 раз | Разморозьте флакон объемом 1-10 мл и остатки аликвоты в одноразовые бутылки по 1 мл и храните при температуре -80°C. Флаконы объемом 10 мл храните при температуре -20°C |
| 20 mM KCl | Хлористый калий | 1 М | Добавьте 250 мл воды к 18,6 г KCl и стерильный фильтр. Хранить при комнатной температуре |
| (74,55 г/моль) |
| 2 mM db-cAMP | дибутирилциклический АМФ | 1 М | Суспендируйте полную бутылку, добавив 2,04 мл воды к 1 г db-cAMP. Чувствителен к свету и влаге. Хранить в аликвотах объемом 100 μл или 200 μл при -20 °C или -80 °C |
| (491,37 г/моль) |
| 50 нг/мл BDNF | Нейротрофический фактор головного мозга (BDNF) | - T | Пробирка центрифуги для получения порошка на дно. Ресуспендируйте флакон 10 мкг в 1 мл Neurobasal + 1x B27 или 5 мкг флакон в 0,5 мл Neurobasal + 1x B27, чтобы получить 10 мкг/мл. Используйте при разведении 1:200. Хранить рабочие аликвоты при температуре -80 °C (например: 250 μл) |
| hiFBS | Термоинактивированная фетальная сыворотка крупного рогатого скота | - T | Аликвот разморозил FBS в конические пробирки по 50 мл. Нагревать до 56 °C на водяной бане в течение 30 минут. Снимите и заморозьте рабочие аликвоты при -20 °C |
Таблица 2: Медиа-рецепты.
| Основные среды для роста |
| компонент | Объем на 500 мл | разбавление |
| ЭМЕМ | 415 мл EMEM | |
| 15% hiFBS | 75 мл hiFBS | |
| 1x Ручка/Стрептококк | 5 мл Pen/Strep | 1:100 |
| 2 мМ глютамина | 5 мл глютамина | 1:100 |
| *Хранить максимум 6 недель | |
| Средства дифференциации #1 |
| компонент | Объем на 50 мл | разбавление |
| ЭМЕМ | 48 мл EMEM | |
| 2,5% hiFBS | 1,3 мл hiFBS | |
| 1x Ручка/Стрептококк | 500 μл Pen/Strep | 1:100 |
| 2 мМ глютамина | 500 мкл глютамина | 1:100 |
| 10 мкМ РА | 100 μл RA (5mM stock) | 1:500 |
| *Хранить максимум 2 недели и добавить RA непосредственно перед использованием |
| *Не сохраняйте лишние носители после добавления RA - RA нестабилен |
| Средства дифференциации #2 |
| компонент | Объем на 50 мл | разбавление |
| ЭМЕМ | 49 мл EMEM | |
| 1% hiFBS | 500 мкл hiFBS | |
| 1x Ручка/Стрептококк | 500 μл Pen/Strep | 1:100 |
| 2 мМ глютамина | 500 мкл глютамина | 1:100 |
| 10 мкМ РА | 100 μл RA (5mM stock) | 1:500 |
| *Хранить максимум 2 недели и добавить RA непосредственно перед использованием |
| *Не сохраняйте лишние носители после добавления RA - RA нестабилен |
| Средства дифференциации #3 |
| компонент | Объем на 50 мл | разбавление |
| Нейробазальный | 47 мл Нейробазал | |
| 1х Б-27 | 1 мл B-27 (50X stock) | 1:50 |
| 20 мМ KCl | 1 мл KCl (1М бульон) | 1:50 |
| 1x Ручка/Стрептококк | 500 μл Pen/Strep | 1:100 |
| 2 мМ ГлутамаксI | 500 мкл GlutamaxI (100x стоковый) | 1:100 |
| 50 нг/мл BDNF | 250 μл BDNF stock (10 μг/мл) | 1:200 |
| 2 мМ дибутирилциклический АМФ (db-cAMP) | 100 мкл db-cAMP (1М склада) | 1:500 |
| 10 мкМ РА | 100 μл RA (5 мМ стоковых) | 1:500 |
| *Хранить максимум 2 недели и добавить RA непосредственно перед использованием |
| *Не сохраняйте лишние носители после добавления RA - RA нестабилен |