Методическая статья

Дифференцировка эмбриоидных клеток организма в нейральные предшественники с помощью ретиноевой кислоты

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Yang, J., et al. Анализ индуцированной ретиноевой кислотой нейронной дифференцировки эмбриональных стволовых клеток мыши в двумерных и трехмерных эмбриоидных телах. J. Vis. Exp. (2017).

Видео демонстрирует метод индуцирования дифференцировки стволовых клеток в нейральные предшественники с использованием ретиноевой кислоты и метода культивирования висячих капель.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Культура эмбриональных фибробластов мышей (MEF)

  1. Приготовьте среду MEF, модифицированную среду Dulbecco Eagle's (DMEM, high-glucose), с добавлением 15% фетальной бычьей сыворотки (FBS).
  2. Покройте 100 мм чашки для клеточных культур 0,5% раствором желатина в течение 30 мин при комнатной температуре (ОТ).
  3. Подсчитайте MEF с помощью цитометра. Удалите желатиновый раствор и немедленно залейте предварительно подогретую до 37 °С среду MEF. Быстро разморозьте флаконы с обработанными митомицином С MEF на водяной бане 37 °C в течение 2 мин, затем засейте 2,8 x 106 MEF на 100 мм посуду, покрытую желатином. Соответствующим образом отрегулируйте количество ячеек, если используете посуду других размеров. Инкубируйте MEF в течение ночи при 37 °C, 5%CO2.
  4. Смените носитель на следующий день. Культивируйте в течение 2-3 дней до слияния слоя MEF.

2. Эмбриональные стволовые клетки мыши или культура ESC

  1. Приготовьте среду ESC, модифицированную среду Дульбекко (IMDM) от Iscove, дополненную 15% FBS и 103 Ед/мл ингибиторного фактора лейкемии (LIF), 0,1 мМ заменимых аминокислот, 55 мМ 2-меркаптоэтанола, пенициллин (100 Ед/мл), стрептомицин (100 мкг/мл), гентамицин (200 мкг/мл) и 0,2% микоплазменный антибиотик.
  2. Удалите среду MEF из блюда, приготовленного на шаге 1, и замените ее предварительно подогретой средой ESC с температурой 37 °C.
  3. Разморозьте флакон ESC и затравочные ячейки поверх слоя MEF. Инкубировать при 37 °C, 5%CO2, пока ESC не достигнут слияния.
  4. Приготовьте новые чашки для клеточных культур, содержащие сливающийся монослой MEFs. Чтобы пройти ЭСК, промойте один раз PBS и отсоедините 0,25% трипсина/ЭДТА на 2-5 минут при 37 °C, 5% CO2. Остановите трипсинизацию, добавив свежий IMDM с 15% FBS в отделяющиеся клетки, перенесите клеточную суспензию в пробирку объемом 15 мл и центрифугируйте при 160 x g в течение 5 минут при RT.
  5. Удалите надосадочную жидкость, ресуспендируйте ЭСК свежим IMDM и пропустите одну пятую клеток в каждую новую чашку, покрытую MEF; инкубируйте до тех пор, пока клетки не достигнут слияния (обычно 4-5 дней).

3. Изъятие MEF и культуральных ESC на пластинах, покрытых желатином

  1. Как только ЭКС достигнут слияния, отделите их и МЭФ с 0,25% трипсина/ЭДТА, как показано на шаге 2.4, повторно суспендируйте клетки в свежем IMDM, перенесите в неадгезивную бактериологическую чашку Петри и инкубируйте в течение 40 минут при 37 °C, 5%CO2.
  2. Осторожно перенесите ЭСК и среду, содержащую MEFs, на новую пластину, покрытую желатином, с помощью пипетки объемом 5 мл, избегая повторного пипетирования. Клетки, оставшиеся в чашках Петри, являются MEF, так как ESC не адгезируются.
  3. Прохождение ЭСК каждые 3-4 дня. Менее частое пассирование может снизить плюрипотентность ЭСК. Не превышайте 60% конфлюенции, так как это может способствовать дифференцировке.
  4. Повторите шаги 3.2-3.3 три раза или более, по мере необходимости, до тех пор, пока MEF больше не станут обнаруживаться микроскопом для клеточных культур с использованием объектива 20X, чтобы убедиться в отсутствии MEF.
  5. Проверьте плюрипотентность ЭСК путем проверки культуры ЭСК, чтобы увидеть, образуют ли клетки плотные колонии с типичной полигональной морфологией ЭСК (рис. 1A). Проверьте стволовость клеток с помощью количественной полимеразной цепной реакции с обратной транскриптазой (qRT-PCR), иммуноблоттинга или иммунофлуоресценции основных факторов транскрипции плюрипотентности (рис. 2).

4. Формирование EB

  1. Приготовьте стоковый раствор all-trans-RA при 10 мМ в ДМСО и распределите его по светозащищенным микропробиркам объемом 1,5 мл. Раствор стабилен при температуре -80 °C в течение двух недель. Бейте его от света.
  2. Трипсинизируйте ЭСК как показано на шаге 2.4; повторно вставьте свежий IMDM без LIF в качестве суспензии одиночных клеток.
  3. Подсчитайте клетки с помощью гемоцитометра и приготовьте суспензию 5 x 105 клеток/мл в IMDM с 0,5 мкМ РА.
  4. Тарелкой 100 капель по 20 мкл на 100 мм чашку Петри с 8-канальной пипеткой и наконечниками по 200 мкл переверните посуду и заполните перевернутую крышку PBS, чтобы предотвратить высыхание висячих капель. Защищайте RA-содержащие питательные среды от света.
  5. Посев БЭ в висячих каплях при 37 °С, 5%СО2, в течение 4 суток.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Рисунок 1: Появление ростков из Syx+/+ и Syx-/- EBS в 3D-культуре. (А) ЭСК Syx+/+ и Syx-/- росли в кластерных колониях до индукции нейронной дифференцировки. (B и C) изображения БЭ формируются в висячих каплях с 0,5 мкМ РА, а затем вставляются в 3D коллагеновую матрицу без РА. Снимки были получены на 6-й день с помощью указанных объективов (масштабные линей...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
материалы
МЭФEMD MilliporeПМЭФ-КФСлой питателя ESC
Электроэрозионная культураEMD MilliporeКМТИ-2
Чашка для клеточных культур (60 мм)Эппендорф30701119Культура клеток
Чашка для клеточных культур (100 мм)сокол353003Культура клеток
Чашка Петри (100 мм)Корнинг351029Висячие капли
Темная центрифужная пробирка 1,5 млНаучные продукты Celltreat229437Стоковое решение RA
Покровное стекло микроскопаФишербрандТел.: 12-545-80Круглая, диаметр 12 мм
Предметные стекла для микроскопа Superfrost-plusФишербрандТелефонный номер 12-550-15
Реагентов
DMEMЛонза12-709ФКультура MEF
ИМДМGibco12440-046Культура ESC
Фетальная бычья сыворотка (FBS)EMD MilliporeЕС-009-БКультура ESC
желатинСигма-ОлдричГ2625Покрытие посуды
ЛИФСистемы НИОКР8878-ЛФ-025Для поддержания плюрипотентности ЭСК
Растворы заменимых аминокислот MEMGibco11140050Культура клеток
2-МеркаптоэтанолGibco21985023Культура клеток
Пенициллин-стрептомицинGibco15140122Культура клеток
ГентамицинGibco15750060Культура клеток
МикоЗап Плюс-PRЛонзаВЗА-2022Культура клеток
0,25% Трипсин-ЭДТАGibcoNo 25200-072Культура клеток
ДмсоСигма-ОлдричД2650
Полностью транс-ретиноевая кислотаСигма-ОлдричР2625-50МГИндукция нейронной дифференцировки
ПБСGibco10010049
Инструменты
Широкоугольный микроскопКомпания NikonЗатмение TS100Визуализация клеточных культур

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

PBSIMDM

Похожие статьи