Методическая статья

Очищение капилляров от свиного мозга

714 просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Nielsen, S. S. E., et al. Улучшенный метод создания модели гематоэнцефалического барьера in vitro на основе эндотелиальных клеток мозга свиньи. J. vis. Exp. (2017).

Это видео демонстрирует выделение капилляров из свежих свиных мозгов. Процесс включает в себя удаление мозговых оболочек, выделение серого вещества из ткани мозга, гомогенизацию и фильтрацию серого вещества для выделения капилляров и, наконец, использование ферментативного пищеварения для дальнейшей очистки капилляров.

Протокол

Все процедуры, связанные со сбором образцов, были выполнены в соответствии с рекомендациями института IRB.

1. Очищение капилляров мозга свиньи

  1. Соберите 8-10 мозгов 5-6-месячных домашних свиней (например, с ближайшей скотобойни) и перевезите их на льду в лабораторию. Мы рекомендуем начинать следующую процедуру очистки в течение 2-3 часов после уничтожения животного.
  2. Поместите мозги на стерильную скамейку и аккуратно промойте их 1 л PBS в стакане, помещенном на лед.
  3. Осторожно удаляйте мозговые оболочки из одного мозга за раз с помощью щипцов с тонким наконечником и переносите мозги без мозговых оболочек в другой стакан объемом 1 л с PBS, помещенный на лед. Увеличение затраченного времени может усложнить удаление. Примерное время, используемое для каждого мозга, должно составлять 10-15 минут.
  4. С помощью скальпеля соскребите серое вещество с одного мозга за раз и перенесите изолированный материал в чашки Петри (8,8 см2), содержащие 20 мл питательной смеси DMEM F-12 (DMEM/F-12), помещенные на лед. Изолируйте как можно больше серого вещества, не удаляя белое вещество. Для первоначальной фрагментации пропустите материал серого вещества через шприц объемом 50 мл без иглы. Продолжайте работу над всеми мозгами и соберите собранный материал серого вещества. Увеличение затраченного времени может усложнить удаление. Примерное время, используемое для каждого мозга, должно составлять 10-15 минут.
  5. Перенесите выделенный материал серого вещества в трубку измельчителя ручного гомогенизатора тканей в соотношении 50/50 с помощью среды DMEM/F-12. Гомогенизируйте материал, сделав 8 движений вверх и вниз свободным пестом, а затем 8 движений вверх и вниз тугим пестом. Продолжайте до тех пор, пока весь изолированный материал не будет гомогенизирован, затем перелейте гомогенат во флакон объемом 500 мл и разбавьте с помощью DMEM/F-12 до общего объема примерно 450 мл.
  6. Отфильтруйте гомогенат с помощью флакона объемом 500 мл с синей крышкой и фильтрующим сеткой 140 мкм, и изолируйте капилляры, пропустив ткань через фильтр. Используйте один фильтр на 50 мл гомогената и после этого промойте каждый фильтр DMEM/F-12.
  7. Поместите капилляросодержащие фильтры в чашки Петри с раствором для разложения трипсина/ЭДТА (2,5 % трипсина, 0,1 нМ ЭДТА в PBS), коллагеназы CLS2 (2000 Ед/мл) и ДНКазы 1 (3400 Ед/мл) в DMEM/F-12. Используйте 1 чашку Петри (8,8 см2, 20 мл раствора) на 3 фильтрующие сетки.
  8. Поместите чашки Петри при температуре 37 °C на 1 час на орбитальный шейкер со скоростью 180 об/мин или осторожно помешивайте их каждые 10 минут. Через 1 ч смыть капилляры с фильтров с суспензией из чашки Петри с помощью пипетки объемом 1 мл.
  9. Разделите суспензию из 3 чашек на 2 пробирки по 50 мл и остановите переваривание, добавив по 10 мл DMEM/F-12 в каждую 50-мл пробирки.
  10. Центрифугируйте клеточные суспензии при 250 x g, 4 °C в течение 5 мин. Отсадите надосадочную жидкость и повторно суспендируйте каждую гранулу в 10 мл DMEM/F-12. Добавьте еще 20 мл DMEM/F12 в каждую пробирку. Повторите этот шаг центрифуги дважды.
  11. Дайте пробиркам остыть на льду в течение 5 минут и переложите растворы в 2 новые пробирки объемом 50 мл.
  12. Центрифугируйте клеточные суспензии при температуре 250 x g, 4 °C в течение 5 минут и повторно суспендируйте каждую гранулу в 8-10 мл (примерно 1 мл/мозг) замораживающего раствора, состоящего из 10% ДМСО в FBS.
  13. Перенесите клеточную суспензию в криовиальные камеры, используя 1 мл на каждую криовиальную камеру. В среднем, результатом очистки является 1 флакон на каждый используемый мозг, что в среднем обеспечивает эндотелиальные клетки для 12-16 вставок. Поместите флаконы в морозильную камеру при температуре -80 °C не менее чем на 4 часа или на ночь. После этого храните криовалиал в криотанке с жидким азотом.
    осторожность: Жидкий азот имеет экстремально низкие температуры. Пожалуйста, наденьте соответствующую защиту.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
ДМЭМ/Ф-12 Лонза БЭ12-719Ф
Фетальная бычья сыворотка (FBS) Gibco Invitrogen Тел.: 10-270-106
Трипсин/ЭДТАGibco Invitrogen15090-046
ДмсоСигма-Олдрич34896 (Английский
ПБССигма-ОлдричД8537
ДНКаза 1Сигма-ОлдричД4513
Коллагеназа CLS2Сигма-ОлдричС6885
ddH2OСделано с помощью Elga System
Центрифужные пробирки 15 млСеллстар188271
Центрифужные пробирки 50 млСеллстар227261
Чашки ПетриТермо Сайентиал150350 (Английский
КриопробиркиТермо Сайентиал377224
Флакон 500 млТермо Сайентиал159910/159920
СкальпелиСванн-МортенREF0211Тип 24
Гомогенизатор тканейсигмаД9188
Фильтры 140 мкмМеркNY4H04700
Изогнутые щипцы с тонким наконечником КЛС Мартин 12-409-12-07
Щипцы с широким концомВВР82027-390
Держатель фильтраMERCK MiliporeСвиннекс-47
Шприц 50 млБраун4617509Ф
) )

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи