Method Article

Дифференцировка плюрипотентных стволовых клеток человека в нейронах с использованием сконструированных лентивирусов

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Assetta, B., et al., Генерация нейронов человека и олигодендроцитов из плюрипотентных стволовых клеток для моделирования нейрон-олигодендроцитарных взаимодействий. J. Vis. Exp. (2020).

Это видео демонстрирует процесс стимуляции человеческих плюрипотентных стволовых клеток к дифференцировке в нейроны путем их трансфекции с помощью сконструированных лентивирусов, несущих ген нейрогенного фактора транскрипции под контролем тетрациклин-чувствительного элемента, с последующим лечением производным тетрациклина и средой созревания.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Индукция нейронов человека из плюрипотентных стволовых клеток человека

  1. Подготовка к лентивирусу (~5 дней, подробный протокол, как описано ранее)
    1. Поместите ~1 миллион HEK293T клеток в каждую колбу T75, чтобы они сливались на ~40% при выполнении трансфекции. Трансфектируйте их плазмидами, экспрессирующими тетрациклин-индуцируемый Ngn2 и устойчивый к пуромицину ген (PuroR; под тем же контролем промотора TetO), rtTA, а также три хелперные плазмиды pRSV-REV, pMDLg/pRRE и VSV-G (12 г лентивирусной векторной ДНК и 6 мкг каждой из хелперных плазмидных ДНК). Подготовьте не менее трех колб на один препарат лентивируса. Используйте PEI для трансфекции, следуя инструкциям производителя. Смените носитель через 16 часов и выбросьте.
    2. Собирайте высвободившиеся вирусные частицы путем сбора питательных сред каждый день и заменяйте свежими средами на 3 дня. Объедините собранные среды, содержащие вирусные частицы, для очистки. Отфильтруйте вирус через фильтр 0,22 мкм и центрифугируйте при 49 000 x g в течение 90 минут. Ресуспендируйте гранулу в соответствующем объеме PBS-глюкозы (~150 μл).
  2. Индукция нейронов (~5 дней)
    заметка: Этот протокол индукции (рис. 1A; блок-схема) очень эффективен как для iPS, так и для ES-клеток валидированной плюрипотентности (которые могут быть проанализированы с помощью иммуногистохимического окрашивания хорошо охарактеризованных маркеров плюрипотентности; Рисунок 1B).
    1. Используйте коммерчески доступные H1 человеческие ES-клетки на прохождении 52 (см. Таблицу материалов). Культивируйте клетки на 6-луночных планшетах, покрытых внеклеточным матриксным раствором (~0,5 мг матриксного раствора на 6-луночный планшет; см. Таблицу материалов) с использованием среды для поддержания ES-клеток (см. Таблицу материалов) и инкубируйте планшеты при 37 °C с 5%CO2.
    2. На 2-й день отделите клетки ЭС (80% конфлюента) с 1 мл раствора для отделения клеток (см. Таблицу материалов) и инкубируйте при комнатной температуре в течение 10 мин. Переложите клетки в пробирку; промойте лунку 2 мл среды и соедините в той же пробирке. Центрифугируйте при 300 x g в течение 5 минут, повторно суспендируйте гранулу в среде и поместите ячейки на 6-луночные планшеты с матричным покрытием с плотностью посева 1 x 105 клеток на лунку.
    3. В день -1 добавьте лентивирусы, экспрессирующие Ngn2 плюс PuroR и rtTA, вместе с полибреном (8 мкг/мл) к ES-клеткам в свежей среде для поддержания ES-клеток (см. Таблицу материалов). Точное количество вирусов должно определяться фактическими титрами или титрованием. Обычно мы добавляем по 5 мкл каждого вируса на лунку в 6-луночном планшете.
    4. В день 0 добавить Доксициклин (2 мкг/мл для активации экспрессии Ngn2) в среду DMEM-F12 с добавкой N2 без морфогенов.
    5. В 1-й день добавьте пуромицин в свежую среду DMEM-F12 плюс N2 и доксициклин до конечной концентрации 1 мкг/мл среды. Отбирайте трансдуцированные клетки в пуромицине в течение не менее 24 ч. Более высокая концентрация пуромицина (до 5 г/мл) и более длительный период отбора (до 48 ч) могут потребоваться для адекватного удаления недостаточно трансдуцированных клеток, если титр вируса низкий.
    6. На 2-й день дифференцирующие нейроны отделяют раствором для отслойки клеток (см. Таблицу материалов), повторно помещают их на 24-луночные планшеты (от 80 000 до 200 000 клеток/лунку), покрытые матричным раствором (см. Таблицу материалов), и поддерживают их в среде NBA/B27 без доксициклина. Плотность посева имеет решающее значение.
    7. На этом этапе оторванные нейроны могут быть заморожены в специализированной коммерческой среде для замораживания (см. Таблицу материалов) и храниться в жидком азоте до 3 месяцев. Чистые нейроны могут быть покрыты с учетом типичной гибели ~15–20% клеток после оттаивания, культивироваться отдельно или совместно с другими типами клеток мозга.
    8. Культивируйте чистые iN на планшетах, покрытых растворами на основе внеклеточного матрикса в соответствии с инструкциями производителя (см. Таблицу материалов). Характерная пирамидальная морфология должна стать очевидной к 4-му дню (и 6-му дню; Рисунок 1С). Образование синапсов может быть обнаружено уже на 14-16 день и заметно на 24 день при иммуногистохимическом окрашивании стандартными пре- и постсинаптическими маркерами. (Рисунок 1D; помечен пресинаптическим маркером Synapsin 1 и дендритным маркером Map2).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Рисунок 1: Прямая генерация индуцированных человеком нейронов (iN) из hPSCs. (А) Блок-схема генерации iN. (B) Репрезентативные изображения светлого поля и иммунофлуоресцентные изображения исходной культуры плюрипотентных стволовых клеток человека (H1) для подтверждения плюрипотентности. Oct4 показан красным цветом, а Sox2 — зеленым. (C) Репрезента...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
АккутазаТехнологии стволовых клеток7920
Доплата B27ТермоФишер17504044
Средний DMEM/F12Технологии стволовых клетокNo 36254
ДмсоТермоФишерД12345
ДоксициклинМиллипорСигмаД3072
H1 человеческие ES-клеткиWiCellВА01
МатригельКорнинг354234
mTeSR плюсТехнологии стволовых клетокNo 5825
Доплата N2ТермоФишер17502001
Нейробазальная среда АТермоФишер10888-022
Заменимые аминокислотыТермоФишер11140-050
ОПЭВВР71002-812
pMDLg/pRREАддженNo 12251
ПолибренМиллипорСигмаТР-1003-Г
пРСВ-РЭВАддженNo 12253
ПуромицинТермоФишерA1113803
STEMdiff Neural Progenitor для замораживания средТехнологии стволовых клетокNo 5838
Набор для нейронной индукции STEMdiff SMADiТехнологии стволовых клеток8581
Tempo-iOlogo: OPCs, полученные из иПСК человекаТемпо БиоНаукаАртикул102
TetO-Ng2-PuroАддженNo 52047
ВСВ-ГАддженNo 12259

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Human Pluripotent Stem CellsNeuron DifferentiationEngineered LentivirusesTetracycline Responsive ElementNeurogenic Transcription FactorViral TransfectionPuromycin SelectionCell Detachment SolutionECM Coated WellsMaturation Medium

Related Articles