Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Выделение микроглии из демиелинизирующих поражений мозга мыши с помощью магнитно-активированной сортировки клеток

962 просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Чжан, Х. и др. Выделение первичной микроглии мыши путем сортировки магнитно-активируемых клеток в животных моделях демиелинизации. J. vis. Exp. (2022).

Это видео демонстрирует протокол извлечения микроглиальных клеток из демиелинизирующих поражений в мозге мышей с использованием магнитной сортировки клеток. Протокол включает в себя препарирование поврежденной ткани мозга, содержащей клетки микроглии, обработку ткани специфическими ферментами для получения суспензии одиночных клеток и использование магнитных шариков, специфичных для рецепторов микроглии, для выделения клеток микроглии.

Протокол

Все процедуры, связанные с образцами животных, были рассмотрены и одобрены соответствующим комитетом по этической экспертизе животных.

1. Материалы

  1. Перед началом протокола приготовьте следующие растворы:
    1. Приготовьте загрузочный буфер, добавив фетальную бычью сыворотку (FBS, 2%) в фосфатно-солевой буфер (PBS).
    2. Добавьте нейтральный красный (NR) краситель (последний 1%) в PBS.
  2. Приготовьте следующие растворы с помощью имеющегося в продаже набора для диссоциации мозга у взрослых (см. Таблицу материалов).
    1. Для приготовления ферментной смеси 1 пипетку пипетку 1,9 мл буфера Z и 50 мкл фермента P в центрифужную пробирку объемом 15 мл.
    2. Для приготовления ферментной смеси 2 пипеткой наберите 20 мкл буфера Y и 10 мкл фермента A в микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 мл.
    3. Приготовьте раствор для удаления мусора.

2. Перфузия и диссекция мышей

  1. Внутрибрюшинно (в/в) ввести мышке 500 мкл 1% NR красителя в PBS за 2-3 ч до анестезии.
    заметка: Внутрибрюшинное введение NR в демиелинизирующих мышиных моделях помогает различить поражения (Рисунок 1).
  2. Обезболите мышь пентобарбиталом (50 мг/кг, внутримышечно) и убедитесь, что мышь успешно обезболивается, исследуя болевые реакции.
  3. Вскройте грудную полость мыши и обнажите сердце.
  4. Аккуратно отрежьте небольшой уголок правого предсердия и внутрисердечно перфузируйте мышь 20-30 мл холодного PBS из левого желудочка.
  5. Обезглавьте мышь под наркозом.
  6. Откройте череп мыши и осторожно освободите мозг от черепа.
  7. Перенесите мозг в форму для среза мозга мыши и разрежьте мозг на ломтики по 0,1 см.
  8. Удалите срезы мозга и поместите их в холодную PBS в чашке Петри (60/15 мм). С помощью микрохирургических щипцов микрорассекают поражения, помеченные NR красителем, вокруг мозолистого тела под стереомикроскопом.
    заметка: Убедитесь, что рассеченная ткань является как можно более полной, чтобы облегчить последующий перенос; Общий прогресс вскрытия должен быть завершен за 2 часа.
  9. Перенесите рассеченную ткань в центрифужные пробирки объемом 15 мл, содержащие соответствующее количество буфера для холодной загрузки.
    заметка: Соберите ткань мозолистого тела 2-3 мышей в одну пробирку в качестве одного образца.

3. Диссоциация тканей

  1. Центрифугируйте рассеченную ткань при давлении 300 ×g в течение 30 с (после достижения этой скорости), чтобы собрать образец на дне пробирки.
  2. Разогрейте смесь ферментов от 1 и 2 до 37 °C в инкубаторе.
  3. Добавьте 1 950 мкл предварительно подогретой смеси ферментов 1 к одному образцу и переварите в инкубаторе при температуре 37 °C в течение 5 минут.
  4. Добавьте 30 μл предварительно подогретой смеси ферментов 2 и аккуратно перемешайте.
  5. Варить в инкубаторе при температуре 37 °C в течение 15 минут и аккуратно перемешивать каждые 5 минут.
  6. Добавьте в пробирку 4 мл холодного PBS после переваривания и осторожно встряхните.
  7. Поместите фильтры 70 μм на центрифужные пробирки объемом 50 мл и предварительно смочите фильтры 500 μЛ холодной PBS. Отфильтруйте диссоциированную ткань, пропустив переваренные образцы тканей через фильтры, и перенесите отфильтрованную суспензию из центрифужной пробирки объемом 50 мл в центрифужную пробирку объемом 15 мл.
    заметка: Пропустите этот шаг, если количество ткани слишком мало.
  8. Отфильтрованные образцы тканей центрифугируют при давлении 300 ×g в течение 10 мин при 4 °C и медленно и полностью отсасывают надосадочную жидкость><. заметка: Все этапы следует выполнять на льду, за исключением ферментативного пищеварения.

4. Удаление мусора

  1. Осторожно суспендируйте клеточную гранулу с помощью 1 550 μл холодного PBS.
  2. Добавьте 450 мкл холодного раствора для удаления мусора и хорошо перемешайте.
  3. Медленно и осторожно нанесите на вышеуказанную смесь 2 x 1 мл холодного PBS с помощью пипетки объемом 1 000 μл.
    заметка: Наклоните пробирку центрифуги на 45° и медленно добавьте PBS вдоль стенки трубки с помощью пипетки.
  4. Медленно и осторожно перенесите пробирку в центрифугу и вращайте при 4 °C и 3 000 × г в течение 10 минут.
  5. После центрифугирования ищите три слоя. Полностью отасуньте два верхних слоя с помощью пипетки объемом 1 000 мкл (Рисунок 2).
  6. Наполните пробирку объемом до 5 мл буфером для холодной загрузки и аккуратно переверните пробирку три раза.
  7. Центрифугируйте при 4 °C и 1 000 × г в течение 10 мин. Полностью отасуньте надосадочную жидкость и избегайте разрушения клеточной гранулы.

5. Магнитное разделение клеток микроглии

  1. Повторно суспендируйте клеточную гранулу с 90 μл загрузочного буфера и добавьте 10 μL гранул CD11b (Microglia).
  2. Хорошо перемешайте и выдерживайте в течение 15 минут при температуре 4 °C.
  3. Добавьте 1 мл загрузочного буфера и аккуратно пипетируйте жидкость вверх и вниз с помощью пипетки объемом 1 000 мкл, чтобы промыть клетки после инкубации. Центрифугируйте клетки при температуре 4 °C и 300 × г в течение 10 минут и полностью аспирируйте надосадочную жидкость, чтобы удалить несвязанные шарики.
  4. Ресуспендируйте элементы в 500 мкл загрузочного буфера.
  5. Поместите колонку МС с ее разделителем для положительного отбора в магнитном поле.
  6. Промойте колонку 500 μл загрузочного буфера для защиты ячеек и обеспечения эффективности магнитной сортировки, следуя протоколу производителя.
  7. Нанесите клеточную суспензию на столбец MS и отбросьте проточный поток, содержащий непомеченные клетки.
  8. Добавьте 500 μL загрузочного буфера в колонку три раза, чтобы смыть ячейки, которые прилипают к стенке колонны, и отбросить проточный поток.
    заметка: Добавляйте новый буфер загрузки для промывки только в том случае, если резервуар колонны пуст.
  9. После промывки колонки снимите колонку с сепаратора и поместите ее на центрифужную пробирку объемом 15 мл.
  10. Добавьте 1 мл загрузочного буфера в колонку и нажмите на поршень на дно, чтобы промыть ячейки с магнитной маркировкой. Повторите этот шаг три раза, чтобы полностью собрать магнитно помеченные клетки.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1
Рисунок 1: Изображения очаговых демиелинизирующих поражений, помеченных нейтральным красным красителем.

figure-results-2
Рисунок 2: Изображения трех слоев, образованных центрифугированием. Два верхних слоя (слой 1 + слой 2) должны быть удалены в процессе удаления мусор...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Микроцентрифужные пробирки объемом 1,5 млБИОФИЛCFT001015
Центрифужные пробирки 15 млБИОФИЛCFT011150
Центрифужные пробирки 50 млБИОФИЛCFT011500
Фильтр 70 μмМилтеньи БиотекТел.: 130-095-823
Набор для диссоциации мозга у взрослых, мышь и крысаМилтеньи БиотекТел.: 130-107-677
Мыши C57BL/6JSJA Labs
CD11b (микроглия) Бусины человека и мышиМилтеньи БиотекТел.: 130-093-634
Фетальная бычья сывороткаБОСТЕРPYG0001
MACS MultiStandМилтеньи БиотекТел.: 130-042-303
Сепаратор MiniMACSМилтеньи БиотекТел.: 130-042-102
Столбцы MSМилтеньи БиотекТел.: 130-042-201
Нейтральный красныйСигма-Олдрич1013690025
ПБСБОСТЕРPYG0021
ПентобарбиталСигма-Олдрич-010
СтереомикроскопМшОтМЗ62

Теги

Выделение микроглиимагнитные бусины CD11bткань головного мозга мышипереваривание тканицентрифугирование в градиенте плотностифильтрация клеточной суспензииразделение на магнитной колонкепервичная микроглия