Method Article

Выделение нескольких типов клеток из мозга мыши путем механической гомогенизации

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Molina Estevez, F. J., et al. Одновременная проточная цитометрическая характеристика нескольких типов клеток, полученных из головного/спинного мозга мышей с помощью различных методов гомогенизации. J. Vis. Exp. (2019).

Это видео демонстрирует выделение нескольких типов клеток из ткани мозга мыши. Сначала ткань механически срезается с помощью измельчителя тканей в солевом растворе для поддержания осмотического баланса. Затем тканевый гомогенат подвергают центрифугированию с градиентом плотности для удаления клеточного мусора. Затем клетки ресуспендируются в растворе для дальнейшего анализа.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Дисклеймер: Все процедуры, связанные со сбором образцов, были выполнены в соответствии с рекомендациями института IRB.

1. Механическая гомогенизация головного и спинного мозга

ПРИМЕЧАНИЕ: Объемы, описанные в этом разделе, достаточны для гомогенизации половины головного или спинного мозга.

  1. Предварительно охладите стеклянный раствор тканевого измельчителя Dounce (Table of Materials) на льду.
  2. Добавьте в раствор 3 мл предварительно охлажденного 1x сбалансированного раствора соли Хэнка (HBSS).
  3. Перенесите ткань (головной или спинной мозг) из лунки 6-луночной пластины в стеклянную ступку, убедившись, что она погружена в 1x HBSS и находится на дне раствора.
  4. Аккуратно разбейте ткань 10 ударами пестика А, а затем 10 ударами пестика В. Переложите гомогенизированную смесь в новую коническую пробирку объемом 15 мл.
  5. Наполните пробирку до конечного объема 10 мл с помощью предварительно охлажденного 1x HBSS и центрифугируйте в течение 10 минут при 320 x g при 4 °C.
  6. Отсадите надосадочную жидкость и добавьте ледяной 1x HBSS в каждую пробирку до конечного объема 7 мл и осторожно ресуспендируйте гранулу путем вортексирования.

2. Удаление мусора

ПРИМЕЧАНИЕ: Удаление мусора, состоящего в основном из непереваренной ткани и миелиновых оболочек, является критически важным этапом для эффективного окрашивания гомогената ткани для последующих проточных цитометрических анализов.

  1. Отфильтруйте каждый образец через клеточное сетчатое фильтр размером 70 мкм, чтобы удалить любые непереваренные кусочки ткани. Этот этап особенно важен при работе с тканями спинного мозга, так как эти образцы с большей вероятностью содержат непереваренные фрагменты нервов или мозговые оболочки, которые могут повлиять на последующие этапы.
  2. Убедитесь, что конечный объем составляет 7 мл в каждой пробирке с образцом. Если нет, залейте ледяной 1x HBSS до 7 мл.
  3. Добавьте 3 мл предварительно охлажденного изотонического раствора Перколля (IPS) в каждый образец, чтобы получить окончательный объем 10 мл раствора, содержащего среду с градиентом плотности при конечной концентрации 30%. Аккуратно перемешайте образцы, чтобы убедиться, что они однородно перемешаны.
  4. Центрифугируйте образцы в течение 15 мин при 700 x g при 18 °C, установив ускорение центрифуги на 7 и тормоз на 0,
    заметка: Центрифугирование должно занять примерно 30 минут.
  5. Аккуратно извлеките образцы из центрифуги.
    заметка: На поверхности раствора должен быть виден белесый диск, состоящий из мусора и миелина. На дне пробирки должна быть видна гранула (содержащая интересующие клетки).
  6. Тщательно отсасывайте весь белесый диск мусора, а затем остальную надосадочную жидкость, следя за тем, чтобы не выбить гранулу. Оставьте около 100 μл раствора поверх гранулы ячейки, чтобы избежать риска ее случайного смещения.
  7. Добавьте 1 мл раствора блокирующего раствора проточной цитометрии (FACS) (BL), повторно суспендируйте гранулу путем пипетирования вверх и вниз с помощью наконечника пипетки объемом 1000 мкл и перенесите образцы в пробирки объемом 1,5 мл.
  8. Центрифуга в течение 5 мин при 450 x g при комнатной температуре (RT).
  9. Осторожно отсасывайте надосадочную жидкость и повторно суспендируйте гранулу в соответствующем буфере, совместимом с последующими анализами

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
10X HBSS (без кальция, хлорида магния и сульфата магния)Gibco14185-052
Сетчатый фильтр 70 ммКорнинг431751
Конические пробирки (15 мл)СеллТрит229411
Конические пробирки (50 мл)СеллТрит229422
Набор шлифовальных машин Dounce Tissue (включает в себя ступку, а также пестики A и B)Сигма-ОлдричД9063-1СЕТ
ПерколлGE Healthcare10266569Продается как нестерильный реагент
Перколлсигма65455529стерильный реагент (для использования в приложениях, требующих стерильности)
Перколл ПЛЮСсигмаГЭ17-5445-01реагент с очень низким содержанием эндотоксина

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Mouse Brain TissueMechanical HomogenizationTissue GrinderDensity Gradient CentrifugationCell IsolationFlow CytometryHBSS BufferDebris RemovalCell SuspensionFACS BL Solution

Related Articles