Методическая статья

Дифференцировка сконструированных плюрипотентных стволовых клеток человека в функциональные мотонейроны

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Garone, M. G., et al. Преобразование индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека (iPSCs) в функциональные спинальные и черепные мотонейроны с использованием векторов PiggyBac. J. Vis. Exp. (2019).

Это видео демонстрирует процесс дифференциации человеческих iPSC в моторные нейроны. Обоснование заключается в использовании иПСК, которые были генетически модифицированы для экспрессии специфических транскрипционных факторов. При культивировании в среде, содержащей доксициклин, этот антибиотик запускает экспрессию транскрипционных факторов, тем самым способствуя дифференцировке iPSC в предшественники моторных нейронов. В конечном счете, предшественники культивируются в нейронной среде для получения зрелых и функциональных моторных нейронов.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Поддержание ИПСК человека

  1. Подготовка пластин с матричным покрытием
    1. Разморозьте один флакон матрицы объемом 5 мл (см. Таблицу материалов) при 4 °C в течение ночи. Исходные матричные запасы имеют разную концентрацию запасов, а аликвоты изготавливаются в соответствии с коэффициентом разбавления, указанным в техническом описании, и специфичными для каждой отдельной партии. Крайне важно держать флакон и пробирки ледяными, чтобы предотвратить преждевременное гелеобразование матрицы. Дозируйте матрицу в аликвоты в предварительно охлажденных криопробирках на льду. Заморозьте неиспользованные аликвоты при температуре -20 °C.
    2. Положите одну аликвоту на лед примерно на 2 часа, чтобы она оттаяла.
    3. Разбавьте аликвоту матрицы 20 мл холодного DMEM/F12 в конической пробирке объемом 50 мл.
    4. Хорошо перемешайте и разложите 1 мл разбавленной матрицы по чашкам диаметром 35 мм (эквивалентное количество на площадь поверхности других посуд).
    5. Посуду с разбавленной матрицей хранить в течение 1 часа при комнатной температуре, чтобы обеспечить покрытие.
      заметка: Посуда, запечатанная парапленкой, может храниться при температуре 4 °C до 2 недель.
  2. Приготовление исходного раствора (20 мл) и 1х рабочих аликвот реагента для щадящей диссоциации клеток (см. Таблицу материалов).
    1. Растворите порошок до 10 мг/мл в PBS (Ca2+/Mg2+ free)
    2. Фильтр стерилизуется через фильтрующую мембрану толщиной 0,22 мкм.
    3. Приготовьте 20 аликвот (по 1 мл каждая) и храните их при температуре -20 °C.
    4. Перед применением разведите одну аликвоту в PBS (Ca2+/Mg2+ free) до 1 мг/мл (1x рабочая аликвота).
      ПРИМЕЧАНИЕ: 1x рабочие аликвоты можно хранить при температуре 4 °C в течение 2 недель.
  3. Пассирование ИПСК человека.
    1. Перед началом: При хранении при температуре 4 °C предварительно нагрейте пластины с матричным покрытием в инкубаторе при температуре 37 °C в течение 20-30 мин. Предварительно нагрейте при комнатной температуре необходимое количество среды iPSC для человека (см. Таблицу материалов). Предварительно прогрейте DMEM/F12.
    2. Аспиратная питательная среда.
    3. Промойте иПСК с PBS (Ca2+/Mg2+ free).
    4. Добавьте 1x щадящий раствор для диссоциации (0,5 мл для чашки 35 мм). Инкубировать при 37 °C до тех пор, пока края колоний не начнут отделяться от пластины, обычно 3-5 минут.
    5. Отсасывайте щадящий раствор диссоциации, стараясь не отсоединить колонии иПСК.
    6. Промойте клетки с помощью DMEM/F12 (2 мл для чашки 35 мм) и аспирируйте, стараясь не отсоединить клетки. Повторите этот шаг еще раз.
    7. Добавьте человеческую среду iPSC (1 мл для чашки 35 мм).
    8. Аккуратно отделите колонии с помощью клеточного лифтера и перенесите их в трубку объемом 15 мл.
    9. Аккуратно разбейте комки клеток, пипетируя пипеткой вверх и вниз пипеткой P1000 3-4 раза.
    10. Отсасывайте надосадочную жидкость из пластины (пластин, покрытых матричным покрытием).
    11. Засейте клетки в соответствующий культуральный объем среды iPSC человека. Коэффициент разделения может варьироваться от строки к строке и составляет примерно 1:4-1:8. Меняйте среду ежедневно.

2. Генерация индуцируемых линий iPSC NIL и NIP

  1. Клеточная трансфекция
    1. Промойте клетки PBS (Ca2+/Mg2+ free).
    2. Добавьте реагент для диссоциации клеток (см. Таблицу материалов) (0,35 мл для чашки диаметром 35 мм) и инкубируйте при 37 °C до тех пор, пока отдельные клетки не будут разделены (5-10 мин).
    3. Аккуратно завершите разделение клеток, пипетируя пипеткой вверх и вниз пипеткой P1000 3-4 раза.
    4. Соберите в пробирку объемом 15 мл и добавьте PBS (Ca2+/Mg2+ free) в 10 мл. Посчитайте клетки.
    5. Пеллеты 106 элементов и ресуспендировать в 100 мкл буфера R (входит в комплект электропорации ячеек; см. Таблицу материалов).
    6. Добавьте плазмидную ДНК для трансфекции: 4,5 мкг транспонируемого вектора (epB-Bsd-TT-NIL или epB-Bsd-TT-NIP12) и 0,5 мкг плазмиды транспозазы piggyBac.
    7. Трансфектируйте с помощью системы электропорации ячеек (см. Таблицу материалов) в соответствии с инструкциями производителя и как описано ранее со следующими параметрами: напряжение 1 200 В, ширина 30 мс, 1 импульс. Засейте клетки в среду iPSC человека с добавлением 10 μM Y-27632 (ингибитор ROCK, см. Таблицу материалов) в чашке с матричным покрытием толщиной 6 мм.
  2. Подбор с антибиотиками
    1. Через два дня после трансфекции добавьте 5 мкг/мл бластицидина в питательную среду.
    2. Большинство нетрансфицированных клеток погибают в течение 48 ч после выбора бластицидина. Держите клетки в бластицидине не менее 7-10 дней для контротбора клеток, которые не интегрировали трансгены в геном.
    3. Поддерживайте стабильно трансфицированные клетки в виде смешанной популяции, состоящей из клеток с разным числом трансгенов и разными сайтами интеграции, или изолируйте отдельные клоны.
    4. Приготовьте дополнительную чашку для проверки эффективной экспрессии трансгенов при индукции доксициклина в концентрации 1 мкг/мл методом ОТ-ПЦР с трансген-специфичными праймерами для Ngn2 (Forward: TATGCACCTCACCTCCCCATAG; Реверс: GAAGGGAGGAGGGCTCGACT).
    5. На этом этапе замораживают запасы новых линий NIL- и NIP-iPSC в замораживающей среде для iPSC человека (см. Таблицу материалов).

3. Дифференцировка моторных нейронов

  1. Диссоциируйте клетки с помощью реагента для диссоциации клеток, как описано (шаги 2.1.1.-2.1.3.). Соберите диссоциированные клетки в пробирку объемом 15 мл и разбавьте 5 объемами DMEM/F12. Гранулируют клетки и ресуспендируют в среду iPSC человека с добавлением 10 μМ ингибитора ROCK. Подсчитайте клетки и семена на чашках с матричным покрытием при плотности 62 500 клеток/см2.
  2. На следующий день замените среду на DMEM/F12, дополненную 1x стабильным аналогом L-глютамина, 1x добавкой для клеточных культур с заменимыми аминокислотами (NEAA) и 0,5x пенициллином/стрептомицином, содержащим 1 мкг/мл доксициклина. Это считается днем 0 дифференциации. В 1 день освежите среду и доксициклином.
  3. На 2-й день смените среду на нейробазальную/B27 (нейробазальную среду с добавлением 1x B27, 1x стабильный аналог L-глютамина, 1x NEAA и 0,5x пенициллин/стрептомицин), содержащую 5 мкМ DAPT, 4 мкМ SU5402 и 1 мкг/мл доксициклина (см. Таблицу материалов). Обновляйте среду и доксициклин каждый день до 5 дня.
  4. День 5: Диссоциация клеток реагентом для диссоциации клеток (см. Таблицу материалов).
    1. Промойте клетки PBS (Ca2+/Mg2+ free).
    2. Добавьте реагент для диссоциации клеток (0,35 мл для чашки диаметром 35 мм) и инкубируйте при 37 °C до тех пор, пока весь монослой клеток не отделится от чашки><. Обратите внимание, что отдельные клетки не будут отделяться во время инкубации.
    3. Добавьте 1 мл DMEM/F12 и соберите клетки в пробирку объемом 15 мл.
    4. Аккуратно завершите разделение клеток, пипетируя пипеткой вверх и вниз пипеткой P1000 10-15 раз.
    5. Добавьте 4 мл DMEM/F12 и посчитайте клетки.
    6. На этом этапе прогениторы моторных нейронов замораживают в среде для замораживания клеток (см. Таблицу материалов), в соответствии с инструкциями производителя.
    7. Гранулируйте клетки и ресуспендируйте в нейрональной среде (нейробазальная/B27-среда с добавлением 20 нг/мл BDNF, 10 нг/мл GDNF и 200 нг/мл L-аскорбиновой кислоты, см. Таблицу материалов) с добавлением 10 μМ ингибитора ROCK.
    8. Засейте клетки на полиорнитин/ламинин или альтернативно на подложки с матричным покрытием с плотностью 100 000 клеток/см2. Для иммуноокрашивания используйте пластиковые опоры μ-Slide с полимерным покровным стеклом (см. Таблицу материалов).
  5. На 6-й день смените среду на свежую среду Neuronal Medium, лишенную ингибитора ROCK. В последующие дни обновляйте половину средства каждые 3 дня. Питательную среду необходимо менять очень осторожно, чтобы не допустить отслоения от поверхности.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
АккутазаСигма-ОлдричА6964-100МЛРеагент для диссоциации клеток
В27Милтеньи БиотекТел.: 130-093-566Бессывороточная добавка для поддержания нейрональных клеток
БамбанкерНиппон ДженетиксНГЭ-ВВ02Среда для замораживания клеток, используемая здесь для предшественников моторных нейронов
БДНФПрепроТех450-02Нейротрофический фактор мозга
БластицидинСигма-ОлдричNo 203350Нуклеозидный антибиотик, ингибирующий синтез белка у прокариот и эукариот
БСАСигма-ОлдричА2153Бычья сыворотка альбумина. Блокатор для предотвращения неспецифического связывания антител в иммуноокрашивающих анализах
CaCl2Сигма-ОлдричС3881Химикаты для электрофизиологических растворов
Матрица, сертифицированная Corning Matrigel hESCКорнинг354277Химикаты для электрофизиологических растворов
ФИЛЬТРУЮЩИЙ МАТЕРИАЛ CRYOSTEM ACFБиологическая промышленность05-710-1ЕЗамораживающая среда для ИПСК человека
D-глюкозаСигма-ОлдричГ5146Химикаты для электрофизиологических растворов
ДАПТАдипоГенАГ-КР1-0016-М005Ингибитор гамма-секретазы
ДиспайзGibco17105-041Реагент для щадящей диссоциации иПСК человека
DMEM/F12Сигма-ОлдричД6421-500МЛБазальная среда для культивирования клеток
ДоксициклинСигма-ОлдричД9891-1ГИспользуется для индукции экспрессии трансгенов из векторов epB-Bsd-TT-NIL и epB-Bsd-TT-NIP
ДС2УWiCellUWWC1-DS2UКоммерческая линия iPSC для человека
ГДНФПрепроТех450-10Глиальный нейротрофический фактор
Gibco Episomal hiPSC LineThermo Fisher ScientificА18945Коммерческая линия iPSC для человека
ГлутамаксThermo Fisher Scientific35050038Альтернатива L-глютамину с повышенной стабильностью. Улучшает здоровье клеток.
ХепесСигма-ОлдричН4034Химикаты для электрофизиологических растворов
L-аскорбиновая кислотаЛаборатории ЛКТА7210Используется в клеточных культурах в качестве антиоксиданта
ЛамининСигма-Олдрич11243217001Способствует прикреплению и росту нервных клеток in vitro
NEAAThermo Fisher Scientific11140035заменимые аминокислоты. Используется в качестве добавки к клеточной культуральной среде, для увеличения роста и жизнеспособности клеток.
Набор Neon 100 μLThermo Fisher ScientificMPK10096Комплект для электропорации ячеек
Неоновая трансфекционная системаThermo Fisher ScientificMPK5000Система электропорации ячеек
Нейробазальная средаThermo Fisher Scientific21103049Базальная среда предназначена для долгосрочного поддержания и созревания популяций нейрональных клеток без необходимости использования питающего слоя астроцитов
NutriStem-XF/FFБиологическая промышленность05-100-1АПитательная среда для ИПСК человека
ПБССигма-ОлдричД8662-500МЛФосфатный буферный раствор Дульбекко, с кальцием, с магнием
PBS Ca2+/Mg2+ безСигма-ОлдричД8537-500МЛФосфатный буферный раствор Дульбекко, без кальция, без магния
Пенициллин/стрептомицинСигма-ОлдричП4333-100МЛРаствор пенициллина/стрептомицина, используемый для предотвращения контаминации клеточных культур бактериями.
полиорнитинСигма-ОлдричП4957Способствует прикреплению и росту нервных клеток in vitro
СУ5402Сигма-ОлдричSML0443-5МГСелективный ингибитор рецептора фактора роста эндотелия сосудов 2 (VEGFR-2)
Тритон Х-100Сигма-ОлдричТ87874-(1,1,3,3-тетраметилбутил)фенил-полиэтиленгликоль, т-октилфеноксиэтоксиэтанол, полиэтиленгликоль трет-октилфениловый эфир. Используется для пемеабилизации клеток в иммуноокрашивающих анализах
Y-27632 (ингибитор ROCK)Энцо Медико-Биологические НаукиАЛКС-270-333-М005Проникающий в клетки селективный ингибитор Rho-ассоциированной, спиральной спирали, содержащей протеинкиназу (ROCK). Повышает выживаемость iPSC
μ-горка на 8 лунокТам же80826Поддержка высококачественного микроскопического анализа фиксированных клеток

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Human iPSCsMotor Neuron DifferentiationDoxycycline InductionTranscription Factor ExpressionCell DissociationROCK InhibitorNeuronal MediumPiggyBac VectorsProgenitor MaturationFunctional Motor Neurons

Похожие статьи