Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Анализ нейронной активности в нейронах первичных спиральных ганглиозов мышей с использованием многоэлектродных матриц

832 просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Hahnewald, S., et al. Культура эксплантации спиральных ганглиозных нейронов и электрофизиология на многоэлектродных массивах. J. Vis. Exp. (2016).

Это видео демонстрирует запись спонтанной и зависящей от стимуляции нейронной активности из первичных культур спирального ганглиозного нейрона мыши (SGN) на многоэлектрической матрице (MEA). Он включает в себя промывку и подготовку MEA, регистрацию спонтанной нейронной активности и применение контролируемых электрических стимулов для определения стимуляционно-зависимой нейронной активности.

Протокол

Все процедуры, связанные с образцами животных, были рассмотрены и одобрены соответствующим комитетом по этической экспертизе животных.

1. Электрофизиологические записи для исследования спонтанной и зависящей от электродной стимуляции активности

  1. Промойте культуру многоэлектродной матрицы (МЭА) внеклеточным раствором при комнатной температуре (ОТ).
  2. Высушите контакты салфеткой и установите MEA на установку MEA.
    заметка: Чтобы культура оставалась влажной во время монтажа, добавьте в культуру небольшую каплю внеклеточного раствора.
  3. Добавьте 300 μл внеклеточного раствора и подождите 10 минут перед записью, чтобы дать системе стабилизироваться.
  4. Записывайте спонтанную активность в течение 2 минут со всех электродов нажатием кнопки записи/захвата программного обеспечения и идентифицируйте записывающие электроды.
  5. Стимуляция электродами MEA: Выберите амплитуду/продолжительность/форму стимула в соответствующем программном обеспечении и примените его к нескольким электродам последовательно. Подбирайте электроды исходя из тех, которые проявляют спонтанную активность (как в шаге 1.4). Запись со всех оставшихся электродов.
  6. Чтобы исключить артефакт стимуляции, стимулируйте от одного и того же электрода 10 раз. Если бактериологическое исследование реагирует по крайней мере в 8 из 10 раз, можно предположить, что это положительный ответ на стимуляцию, индуцированную электродами.
  7. Для идентификации фонового шума нанесите на культуру тетродотоксин (ТТХ) в концентрации 1 мкМ, чтобы заблокировать потенциал-зависимые натриевые каналы, и записывайте в течение 2 мин. Используйте его для детектирования спайков (2.1 и 2.2).

2. Анализ данных

  1. С помощью соответствующего программного обеспечения можно обнаружить спонтанную активность для каждого электрода с помощью детектора на основе стандартных отклонений и последующего дискриминатора. Активность проявляется в виде быстрых переходных процессов напряжения (<5 мс).
  2. Выберите пороговое значение, при котором при анализе обработанных образцов TTX не будет никаких действий. Настройте пороговое значение для каждого эксперимента, чтобы различать ложноположительные и ложноотрицательные обнаружения.
  3. С помощью соответствующего программного обеспечения наблюдайте за обнаруженной нейронной активностью каждого электрода в виде растрового графика в соответствии со стандартными процедурами (см. рис. 1A-C).
  4. Определяйте и отображайте общую сетевую активность путем суммирования всех обнаруженных событий в пределах скользящего окна в 10 мс, смещенного на 1 мсек.
  5. Выявляйте активность, вызванную стимуляцией, отображая необработанные данные с помощью соответствующего программного обеспечения для анализа. Определите одиночные всплески в автономном режиме вручную. Одиночные всплески проявляются в виде быстрых переходных процессов напряжения, возникающих после артефакта стимуляции (стрелка на рисунке 1E). Пример показан на рисунке 1E.
  6. В зависимости от эксперимента проанализируйте количество реагирующих электродов, порог, необходимый для достижения отклика, количество потенциала действия на электроды и другие интересующие параметры.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1
Рисунок 1. Запись данных на MEA. (А) Следы оригинальных записей шести из 63 электродов, показывающих спонтанную активность. (B) Растровый график шести электродов на рисунке 1A после обнаружения спайков. Каждая полоса представляет один потенциал действия. (C) Растровый график, включающий все электроды (как в A и

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Внеклеточный раствор (pH 7,4)
NaCl145 мМ
KCl4 мМ
MgCl21 мМ
CaCl22 мМ
ХЕПЕС5 мМ
На-пируват2 мМ
глюкоза5 мМ
материалы
Электроды MEAQwane Biosciences(Лозанна, Швейцария)
программное обеспечение
ЛабвьюНациональные инструментыШвейцария
IgorProВолновая метрикаОзеро Освега, США

Теги

Мультиэлектродная матрицарегистрация нейронной активностиспонтанная нейронная активностьстимул-зависимая активностьвнеклеточный растворпотенциалзависимые ионные каналыобработка ТТХстимуляция электродомустановка для регистрации MEA