Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Трансспинальная стимуляция постоянным током спинномозговой моторонуры крысы

1.3K просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Bączyk, M., et al. in vivo внутриклеточная запись типоидентифицированных спинномозговых мотонейронов крыс во время трансспинальной стимуляции постоянным током. J. vis. Exp. (2020).

Это видео описывает внутриклеточную запись мотонейронов крыс in vivo при трансспинальной стимуляции постоянным током. В протоколе описывается, как измерять свойства мембраны и регистрировать ритмичное возбуждение мотонейронов до, во время и после анодной или катодной поляризации спинного мозга.

Протокол

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

ПРИМЕЧАНИЕ: Каждый участник, участвующий в процедуре, должен быть должным образом обучен основным хирургическим процедурам и должен иметь действующую лицензию на проведение экспериментов на животных.

1. Анестезия и премедикация

  1. Обезболить крыс внутрибрюшинными инъекциями пентобарбитала натрия (начальная доза 60 мг·кг-1 для 6-месячных самцов крыс линии Wistar массой 400\u2012550 г).
    заметка: Этот протокол не ограничивается указанной линией, полом или возрастом крыс. Кроме того, альтернативные методы анестезии, такие как смесь кетамина-ксилазина, альфа-хлоралозы или фентанил+мидазолам+медетомидин, могут быть использованы, если это больше подходит для различных исследовательских целей или когда этого требует комитет по этике.
  2. Примерно через 5 минут проверьте глубину анестезии, зажав задний палец ноги крысы тупыми щипцами. Приступайте к следующим шагам протокола только тогда, когда не наблюдается рефлекторного действия.
  3. Введите 0,05 мл атропина подкожно, чтобы уменьшить выработку слизи после интубации.
  4. Подкожно вводят 5 мл фосфатного буфера, содержащего 4% раствор глюкозы, NaHCO3 (1 %) и желатин (14 %). Этот буфер будет поглощаться кожными сосудами на протяжении всего эксперимента и поможет поддерживать баланс жидкости.
  5. На протяжении всей операции периодически проверяйте животное на предмет рефлекторного действия и при необходимости дополняйте анестезию (10 мг·кг-1·ч-1 пентобарбитала натрия).

2. Хирургия

  1. Подготовьте животное к хирургическому лечению путем сбривания шерсти над спинной частью левой задней конечности, от лодыжки до бедра, задней частью, от хвоста до высоких грудных сегментов (Th), левой стороной грудной клетки и вентральной стороной области шеи над грудиной
  2. Установка внутривенной капельницы
    1. Положите крысу на спину на грелку с замкнутым контуром (и закрепите ее фиксацией конечностей).
    2. С помощью 21-го лезвия сделайте продольный разрез кожи от грудины до подбородка.
    3. Удерживайте кожу щипцами и отделите ее от подлежащих тканей.
    4. Используя техники тупого рассечения, обнажите правую яремную вену. Аккуратно рассеките вену от окружающих тканей.
    5. Найдите часть вены без точек разветвления и просуньте под нее две лигатуры 4-0.
    6. Сделайте один свободный узел на проксимальном конце ранее выявленного неветвящегося сегмента вены и один свободный узел на дистальном конце этого сегмента вены. Зажмите вену проксимальнее сердца, а затем переложите дистальную часть вены.
    7. С помощью ножниц для радужной оболочки глаза сделайте надрез между зажимом и дальней лигатурой. Возьмитесь за лоскут вены и введите предварительно заполненный катетер в точку, где он заблокирован зажимом.
    8. Удерживая вену и катетер вместе щипцами, снимите зажим и протолкните катетер на несколько миллиметров внутрь вены. Закрепите оба конца катетера в вене и добавьте дополнительную точку фиксации к коже.

3. Введение трахеальной трубки

  1. С помощью тупых щипцов отделите две нижнечелюстные железы, покрывающие грудиновидные мышцы. Отделите грудиноягодные мышцы по средней линии, чтобы обнажить трахею.
  2. Проведите три лигатуры 4-0 под трахею, затем сделайте два узла ниже точки введения трахеальной трубки и один узел выше.
  3. Найдите перстневидный хрящ гортани и сделайте разрез ниже третьего трахейного хряща.
  4. Введите трахеальную трубку вниз по трахее и закрепите трубку на месте с помощью заранее подготовленных лигатур, затем добавьте дополнительную лигатуру на кожу.
  5. Поместите небольшой кусочек ваты над отделенными мышцами и зашите кожу над прооперированной областью.

4. Рассечение нервов задних конечностей

  1. С помощью лезвия 21 сделайте продольный надрез на задней стороне левой задней конечности, от ахиллова сухожилия до бедра.
  2. Захватите кожу щипцами и, используя тупые методы препарирования, отделите кожу от подлежащих мышц по обе стороны разреза.
  3. Расположите подколенную ямку в задней части коленного сустава, который закрыт двуглавой мышцей бедра, и с помощью ножниц сделайте надрез между передней и задней частью этой мышцы.
  4. Двигаясь вверх, разрежьте две головки двуглавой мышцы бедра до самого бедра, чтобы обнажить седалищный нерв. Прижигайте по мере необходимости, чтобы предотвратить кровотечение.
  5. Определите суральную, большеберцовую и общую малоберцовую ветви седалищного нерва.
  6. С помощью ножниц отделите боковую головку икроножной мышцы от медиальной, чтобы обнажить большеберцовый нерв и его ветви.
  7. С помощью 55 щипцов захватите дистальный конец икроножного нерва, разрежьте его дистально и рассеките как можно дальше.
  8. Повторите процедуру с общим малоберцовым нервом.
  9. С помощью стержня из тупого стекла отделите большеберцовый нерв от окружающих тканей, стараясь не повредить кровеносные сосуды, и разрежьте его дистально.
  10. Определите медиальный икроножный нерв (MG) и латеральный икроножный и камбаловидный нервы (LGS).
  11. С помощью 55 щипцов осторожно рассеките нервы MG и LGS, отсоединив их от окружающих тканей, но сохранив их связь с соответствующими мышцами.
  12. Подложите пропитанный солевым раствором кусочек ваты под обнаженные нервы.
  13. Закройте кожу над прооперированной областью.

5. Ламинэктомия

  1. С помощью лезвия на 21 очко сделайте продольный разрез от крестца до грудных позвонков.
  2. Отделите кожу от подлежащих мышц.
  3. Разрежьте длинную мышцу с обеих сторон грудного и поясничного остистых отростков.
  4. С помощью скальпеля с тупыми краями втяните мышцы от позвоночного столба, чтобы обнажить поперечные отростки каждого позвонка.
  5. С помощью ножниц с тупым кончиком разрежьте сухожилия мышц, соединенных с поперечными отростками по обнаженному позвоночному столбу. При необходимости применяйте кровоостанавливающие средства.
  6. Определите позвонок Th13 как самый нижний грудной сегмент с прикреплением ребер и, используя тонкие ронжеры, удалите остистые отростки и пластинки от позвонков Th13 до L2, чтобы обнажить поясничные сегменты спинного мозга. Помните, что нельзя повредить остистый отросток L3, который будет использоваться в качестве точки фиксации для стабилизации позвоночника.
  7. Удалите остистый отросток Th12 и максимально разгладьте дорсальную поверхность позвонка.
  8. Используя технику тупого препарирования, отделите мышцы от позвонка Th11, чтобы создать точки прикрепления держателя.
  9. Положите тонкую, пропитанную солевым раствором вату на открытые сегменты спинного мозга.
  10. Переместите крысу на изготовленную на заказ металлическую раму с двумя параллельными перекладинами и двумя регулируемыми руками с зажимами для поддержки и стабилизации позвоночника.

6. Подготовка к записи и стимуляция

  1. Фиксация позвоночного столба и расположение нервов
  2. Поместите крысу в специально изготовленную раму на грелку, подключенную к замкнутой системе обогрева, чтобы поддерживать температуру тела животного на уровне 37 ± 1°C.
  3. Вставьте электроды электрокардиограммы (ЭКГ) под кожу и подключите к усилителю для мониторинга сердечного ритма.
  4. С помощью кожных лоскутов сформируйте глубокую лужу над обнаженным спинным мозгом.
  5. С помощью металлических зажимов зафиксировать позвоночный столб, поставив зажимы ниже поперечных отростков Th12 и на L3 остистого отростка.
  6. Убедитесь, что позвоночный столб закреплен и расположен горизонтально, а затем приложите дорсо-вентральное давление с обеих сторон столба, чтобы втянуть мышцы.
  7. Наполните бассейн теплым (37 °C) минеральным маслом и поддерживайте в нем эту температуру.
  8. Проденьте лигатуру 4-0 через ахиллово сухожилие, поднимите и растяните прооперированную левую заднюю конечность так, чтобы лодыжка оказалась на одном уровне с бедром.
  9. С помощью кожных лоскутов сделайте глубокую лужу над обнаженными большеберцовыми, MG и LGS нервами.
  10. Наполните бассейн теплым (37 °C) минеральным маслом.
  11. Поместите нервы MG и LGS на биполярные электроды со стимуляцией серебряной проволокой и подключите их к квадратному импульсному стимулятору. Используйте отдельные каналы стимуляции для каждого нерва.

7. Размещение поверхностных электродов

  1. Поместите серебряный шариковый электрод на левую каудальную сторону обнаженного спинного мозга, а электрод сравнения вставлен в мышцы спины, и подключите оба электрода к дифференциальному усилителю постоянного тока. Поверхностный шаровой электрод будет использоваться для записи афферентных залпов от нервов.
  2. С помощью стимулятора постоянного тока стимулируйте нервы МГ и ЛГС квадратными импульсами длительностью 0,1 мс, повторяющимися с частотой 3 Гц, и наблюдайте за афферентными залпами.
  3. Определите порог (Т) для активации нерва, стимулируйте каждый нерв с интенсивностью примерно 3·Т и запишите амплитуду афферентного залпа для каждого нерва.
  4. Переместите поверхностный электрод в ростраль и повторите процедуру для определения сегментов позвоночника, на которых амплитуды залпов являются наибольшими для каждого нерва. После определения максимального места залпа переместите поверхностный электрод на безопасное расстояние от спинного мозга.
  5. Паралич мышц и формирование пневмоторакса с целью уменьшения дыхательных движений
  6. Парализовать крысу внутривенно с помощью нервно-мышечного блокатора и подключить трахеальную трубку к внешнему аппарату искусственной вентиляции легких в соответствии с капнометром, совместимым с грызунами (Pancuronium bromide, в начальной дозе 0,4 мг·кг-1, добавляемый каждые 30 минут в дозе 0,2 мг·кг-1)
  7. Контролируйте концентрациюCO2 в конце прилива и поддерживайте ее на уровне около 3\u20124%, регулируя параметры вентиляции (частоту, давление воздуха и объемы потока).
  8. Сделайте продольный разрез на коже между 5-м и 6-м ребрами со стороны записи.
  9. С помощью ножниц с тупым кончиком разрежьте вышележащие мышцы, чтобы визуализировать межреберье между ребрами.
  10. С помощью маленьких острых ножниц сделайте небольшой разрез в межреберных мышцах и в области плевры, затем введите кончик щипцов с тупым краем в отверстие, стараясь не давить на легкие.
  11. Дайте щипцам расшириться или вставьте небольшую трубку, чтобы держать пневмоторакс открытым на протяжении всего эксперимента.
  12. После нервно-мышечной блокады контролируйте глубину анестезии, проверяя частоту ЭКГ, и дополняйте анестетик, если частота сердечных сокращений превышает 400 уд/мин. Паралич мышц и формирование пневмоторакса для уменьшения дыхательных движений, что улучшит стабильность записи.

8. Вскрытие твердой мозговой оболочки и пиа mater

  1. С помощью щипцов #55 аккуратно приподнимите твердую мозговую оболочку и разрежьте ее каудально от сегмента L5, рострально вверх до сегмента L4.
  2. С помощью пары ультратонких щипцов 5SF сделайте небольшой пластырь в пиа, охватывающий дорсальный столб между кровеносными сосудами, точно на уровне максимального афферентного залпа от МГ или нерва ЛГС.
  3. При необходимости используйте небольшие кусочки пропитанной солевым раствором и высушенной гелевой пены, чтобы остановить кровотечение.

9. Трансспинальная стимуляция постоянным током (tsDCS) размещение электродов

  1. Сделайте небольшой разрез на коже на вентральной стороне живота крысы на рострокаудальном уровне, соответствующем расположению поясничных (L)4-L5 позвоночных сегментов.
  2. Возьмитесь за открытый кожный лоскут металлическим зажимом, который будет служить электродом сравнения.
  3. Положите смоченную солевым раствором губку на дорсальную сторону грудного (Th) 12 позвонка. Следите за тем, чтобы размер губки был равен размеру активного электрода tsDCS (круглая пластина из нержавеющей стали диаметром 5 мм).
  4. С помощью тонкого манипулятора прижмите губку с активным электродом tsDCS к кости и убедитесь, что вся поверхность электрода прижата одинаково.
  5. Подключите электроды сравнения и активные электроды tsDCS к блоку стимулятора постоянного тока, способному выдавать непрерывный поток постоянного тока.

10. Приготовление микропипеток

  1. С помощью съемника микроэлектродов подготовьте микроэлектрод.
    заметка: Можно использовать как филаментные, так и нефиламентные электроды. Однако помните, что хвостовик электрода должен быть достаточно длинным, чтобы доставать до брюшного рога, и в то же время достаточно тонким, чтобы не сдавливать спинной мозг при опускании.
  2. Отрегулируйте настройку съемника таким образом, чтобы длина стержня, входящего в спинной мозг, составляла примерно 3 мм, при этом диаметр кончика электрода составлял не более 1\u20122 мкм, а сопротивление микроэлектрода — от 10 до 20 МОм.
  3. Заполните микроэлектроды 2М калий-цитратным электролитом.
  4. Установите подготовленный микроэлектрод на микроманипулятор, обеспечив ступенчатое движение с шагом 1\u20122 мкм и стереотаксическую калибровку.
  5. Подключите микроэлектрод к внутриклеточному усилителю с помощью электрода сравнения, помещенного в мышцы спины.
  6. После нервно-мышечной блокады контролируйте глубину анестезии, проверяя частоту электрокардиограммы (ЭКГ), и дополняйте обезболивающее средство так, чтобы частота сердечных сокращений крысы не превышала 400 уд/мин.

11. Отслеживание и проникновение мотонейронов

  1. Поместите электрод для записи афферентного залпа обратно на дорсальную поверхность спинного мозга, каудально к месту записи, на уровне сегмента L6.
  2. Стимулируйте медиальный икроножный нерв (МГ) и латеральный икроножный и камбаловидный нервы (ЛГС) электрическими импульсами продолжительностью 0,1 мс с частотой 3 Гц и интенсивностью 3 Тл, чтобы активировать все аксоны альфа-мотонейронов в пределах выбранного нерва.
  3. Введите микропипетку в выбранный участок в пиа с медиолатеральным углом 15\u201220° (с наконечником, направленным в сторону).
  4. После спуска под поверхность откалибруйте микроэлектрод и компенсируйте его емкость и смещение напряжения, а также продолжайте проникновение в спинной мозг, когда все параметры стабилизируются. Потенциал антидромного поля пула мотонейронов будет виден на трассе напряжения микроэлектродов при приближении к специальному моторному ядру во время стимуляции соответствующего нерва.
  5. Продолжайте проникновение микроэлектродом с шагом 1\u20122 мкм и периодически используйте функцию жужжания внутриклеточного усилителя, чтобы очистить наконечник электрода от любых остатков.
  6. Наблюдайте за проникновением мотонейрона, которое будет характеризоваться внезапной гиперполяризацией регистрируемого следа напряжения и появлением антидромного спайкового потенциала.

12. Запись мембраны мотонейрона и свойств обжига

  1. В мостовом режиме внутриклеточного амплификатора идентификацию мотонейрона, исходя из появления антидромного потенциала действия по принципу «все или ничего» путем стимуляции соответствующих нервных ветвей. Запишите 20 последующих трассировок для последующего усреднения.
  2. Внедрить строгий критерий включения для обеспечения высокого качества данных: мембранный потенциал покоя не менее -50 мВ по амплитуде; амплитуды потенциала действия более 50 мВ, с положительным выбросом; мембранный потенциал, стабильный в течение не менее 5 мин до записи.
  3. В режиме прерывистого тока-зажима (режим скорости переключения тока 4–8 кГц) внутриклеточного усилителя вызвать ортодромный потенциал действия в мотонейроне с помощью импульсов внутриклеточного деполяризующего тока длительностью 0,5 мс. Повторите не менее 20 раз для усреднения в автономном режиме.
  4. Стимулируйте мотонейрон 40 короткими импульсами (100 мс) гиперполяризационного тока (1 нА) для расчета входного сопротивления клетки.
  5. Стимулируйте мотонейрон прямоугольными импульсами длительностью 50 мс с возрастающей амплитудой, чтобы определить значение реобазы как минимальную амплитуду деполяризационного тока, необходимую для возникновения одного скачка.
  6. Впрыскивание прямоугольных импульсов деполяризующего тока длительностью 500 мс с возрастающей амплитудой с шагом 0,1–2 нА для вызова ритмичных разрядов мотонейронов.

13. Трансспинальная стимуляция постоянным током (tsDCS)

  1. Сохраняя стабильное проникновение мотонейрона, начните процедуру поляризации путем трансспинального приложения постоянного тока. Отрегулируйте текущую интенсивность и время применения в соответствии с планом эксперимента (например, 0,1 мА в течение 15 минут).
  2. Сразу после включения постоянного тока наблюдайте за потенциалом мембраны мотонейрона. Анодная поляризация (активный электрод в качестве анода) должна приводить к деполяризации мембранного потенциала, в то время как катодная поляризация (активный электрод в качестве катода) должна вызывать противоположный эффект. Наблюдайте, является ли изменение потенциала мембраны покоя в ответ на стимуляцию постоянным током, что гарантирует, что интенсивность электрического поля не изменяется.
  3. При подаче постоянного тока повторяйте шаги 5,3\u20125,6 с интервалом в 5 минут.
  4. Выключите контроллер переменного тока и продолжайте повторять шаги 5.3\u20125.6 с интервалом в 5 минут, пока запись не станет нестабильной или не будут нарушены критерии включения.
  5. Прекратить эксперимент и усыпить животное с помощью внутривенного введения смертельной дозы пентобарбитала натрия (180 мг·кг-1).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Дуги и растворы- T- T- T
Atropinum sulfuricumPolfa Warszawa- T- T
глюкозаМерк346351- T
NaHCO3Мерк106329- T
Панкуроний JelfaPharmaSwiss/Valeant- TНервно-мышечный блокатор
Пентобарбитал натрияBiowet Pufigure-materials-1awy Sp. z o.o- TОсновное обезболивающее средство
Цитрат калийногоЧемпур6100-05-06- T
ТетраспанБраун- TРешение HES
Хирургическое оборудование- T- T- T
21 КлинокФСТ10021-00Лезвие скальпеля
ПрижиганиеФСТ18010-00- T
Плевральные дренажные трубкиМилаКТ1215- T
Щипцы Dumont #4ФСТ11241-30Мышечные щипцы
Щипцы Dumont #5ФСТ11254-20Щипцы твердой мозговой оболочки
Щипцы Dumont #5FФСТ11255-20Нервные щипцы
Щипцы Dumont #5SFФСТ11252-00Щипцы Пиа
щипцыФСТ11008-13Тупые щипцы
щипцыФСТ11053-10Кожные щипцы
ГемостатФСТ13013-14- T
РонжерФСТ16021-14Для ламинэктомии
ножницыФСТ15000-08Ножницы для вен
ножницыФСТ15002-08Ножницы Dura
ножницыФСТ14184-09Для разреза трахеи
ножницыФСТ104075-11Мышечные ножницы
ножницыФСТ14002-13Ножницы для кожи
Трахеальная трубка- T- TИзготовление на заказ
Катетер для венВыгон1261. 201- T
Щипцы для канюляции сосудовФСТ18403-11- T
Хомут для сосудовФСТ18320-11Для пережатия вен
Зонд расширения сосудаФСТ10160-13Для рассечения вен
Материалы Sugrgical- T- T- T
Гелевая пенаКомпания PfizerGTIN 00300090315085Кровоостанавливающее средство
Шелковый шовный материал 4.0ФСТ18020-40- T
Шелковый шовный материал 6.0ФСТ18020-60- T
оборудование- T- T- T
Аксозажим 2BМолекулярные устройстваПрекращеноВнутриклеточный усилитель / новая модель Axoclamp 900A
Монитор CO2 в конце прилива CapStar-100CWE11-10000газоанализатор
Трава С-88Системы А-МПрекращеноСтимулятор постоянного тока
Гомеотермические одеяла с гибким зондомГарвардский аппарат5072222ФСистема отопления
ISO-DAM8AВПИ74020Внеклеточный усилитель
Микропривод- T- TИзготовление на заказ/замена IVM/Scientifica
P-1000 Съемник микроэлектродовИнструменты Саттера-1000Съемник микроэлектродов
SAR-830/AP Аппарат искусственной вентиляции легких для мелких животныхCWE12-02100 (Английскийреспиратор
Опорная рама- T- TИзготовленная на заказ/замена стандартная лабораторная база 51601/Stoelting
Спинальные зажимы- T- TИндивидуальный / запасной адаптер для позвоночника Rat 51695 / Stoelting
Стимулятор постоянного тока ТП-1Винуэ- TСтимулятор tsDCS
смешанный- T- T- T
1В150-4 стеклянные капиллярыВПИ1В150-4Для производства микроэлектродов
вата- T- T- T
гибкие трубки- T- TДля подключения респиратора и анализатора CO2
МикрофилВПИMF28G67-5Для наполнения микропипетками
Серебряная проволока- T- TДля нервных электродов
крема гг. Сталь гг. гг. гг. )

Теги

current clamp