$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Все процедуры, связанные с образцами животных, были рассмотрены и одобрены соответствующей экспертизой по этике животных.
1. Решения для хирургии и экспериментальной регистрации
- Приготовьте обычный буфер искусственной спинномозговой жидкости (aCSF), содержащий (mM) NaCl (хлорид натрия) 124, KCl (хлорид калия) 3,75, KH2PO4 (дигидрофосфат калия) 1,25, MgSO4 (сульфат магния) 2, NaHCO3 (бикарбонат натрия) 26, декстрозу 10 и CaCl2 (хлорид кальция) 2. Используйте этот нормальный аКСФ для восстановления тканей после рассечения и для промывочной системы в начале эксперимента.
- Приготовьте сахарозу aCSF, которая используется во время диссекции гиппокампа и содержит (мМ): сахарозу 220, KCl 2,95,2PO4 (дигидрофосфат натрия) 1,3, MgSO4 2, NaHCO3 26, декстрозу 10 и CaCl2 2. С целью индуцирования эпилептиформной активности в интактном препарате ткани гиппокампа добавляют 4-аминопиридин (4-АП) к нормальному акКСФ в концентрации 100 мкМ.
2. Размещение развернутого гиппокампа на проникающей микроэлектродной решетке (PMEA) для записи нейронной активности
- Чтобы подготовить экспериментальную установку, заполните одну бутылку обычным aCSF, а другую — 4-AP aCSF. В обоих флаконах пузырьки 95% O2 / 5% CO2 с самого начала каждого эксперимента. Используйте трехклапанный разъем для управления выбором решения во время эксперимента. Подсоедините вакуумную трубку на выходе из камеры, чтобы закачать раствор в контейнер для пыли. Нагрейте трубопровод перед подачей в камеру записи и поддерживайте контролируемый уровень температуры раствора (35 °C).
- Когда входное и выходное отверстия записывающей камеры закрыты, используйте изготовленную на заказ стеклянную пипетку, чтобы перенести и поместить развернутый гиппокамп в камеру. Расположите развернутый гиппокамп под микроскопом с помощью обычной маленькой кисточки, пока ткань плавает в растворе. Поместите развернутый гиппокамп альвеусной стороной вниз, область CA3 направлена в сторону, а поле CA1 направлено в сторону исследователя.
- Осторожно отсосите раствор в камере с помощью вакуумной пипетки от края записывающей камеры, чтобы снизить уровень раствора до тех пор, пока камера не высохнет и ткань не будет опущена на матрицу. Затем осторожно поместите изготовленный на заказ тканевый анкер (Рисунок 1) (No 7 в разделе «Специальные материалы и оборудование») поверх ткани, чтобы удерживать развернутый гиппокамп на массиве. Налейте несколько капель раствора в записывающую камеру, чтобы наполнить ее, и постепенно открывайте входное и выходное отверстия, чтобы отрегулировать скорость потока примерно до двух капель в секунду в капельной камере внутривенного введения.
- Инкубируйте ткань в регистрирующей камере с нормальным aCSF в течение примерно 1 минуты для восстановления, затем переключите подачу раствора на 4-AP растворенный aCSF и правильно отрегулируйте скорость потока. Инкубируйте ткань в растворенном 4-АП АККС в течение примерно 5-10 минут, после чего исследователь может запустить программное обеспечение для записи сигнала при появлении спонтанной активности.