Методическая статья

Подготовка модели крысы для оценки целостности визуальных путей с помощью электрофизиологической установки

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Nguyen, C. T. et al., Одновременная запись электроретинографии и визуальных вызванных потенциалов у крыс под наркозом.J. Vis. Exp. (2016)

Это видео демонстрирует подготовку модели крысы к изучению здоровья сетчатки и целостности зрительного пути. К крысе подключают визуальный вызванный потенциал, электроретинографию и активные электроды, после чего выравнивают платформу с крысой перед чашей Ганцфельда для равномерного освещения сетчатки глаза и закрывают клетку Фарадея во избежание внешних помех.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Преимплантация электродов с хроническим визуальным вызванным потенциалом (VEP)

ПРИМЕЧАНИЕ: Если необходимо собрать одновременные сигналы электроретинограммы (ЭРГ) и VEP, животным необходимо хирургически имплантировать электроды VEP по крайней мере за 1 неделю до сбора сигнала.

  1. Перед экспериментом простерилизуйте операционный стол с помощью хлоргексидина (0,5% в 70% этанола). Автоклавируйте все хирургическое оборудование перед использованием. Накройте животное стерилизованной хирургической простыней. Убедитесь, что все экспериментаторы носят хирургические маски, халаты и стерилизованные перчатки.
  2. Индуцируйте анестезию 3 - 3,5% изофлураном с О2 со скоростью потока 3 л/мин. Поддерживайте анестезию на уровне 1,5% и 2 л/мин на протяжении всей операции. Обеспечить достаточную глубину анестезии можно за счет отсутствия защемляющего рефлекса лапы.
  3. Нанесите 1% карбоксиметилцеллюлозу натрия на роговицу для предотвращения сухости глаз.
  4. Выбрейте участок размером 30 мм x 30 мм над лбом, сзади от глаз и спереди от ушей.
  5. Поместите животное на грелку (37°C) для поддержания температуры тела и стабилизации головы животного с помощью стереотаксической рамы.
  6. Продезинфицируйте выбритый участок 10% повидон-йодом три раза. Для области вокруг глаза следует избегать использования антисептиков на спиртовой основе, в соответствии со Стандартом практики, установленным Ассоциацией хирургических технологов.
  7. Сделайте скальпелем срединно-сагиттальный разрез на голове и из этого вырезайте круг дермальной ткани диаметром ~20 мм, чтобы обнажить черепную кость.
  8. Удалите подлежащую надкостницу путем соскабливания и высушивания марлей, чтобы обнажить корональные и сагиттальные черепные швы.
  9. С помощью зубного бора, прикрепленного к бормашине, трепан проделайте два отверстия (диаметр 0,7 мм, глубина ~ 1 мм) в черепе на обоих полушариях по стереотаксическим координатам: 7 мм каудально к брегме, 3 мм латерально к средней линии.
  10. Вкрутите винты из нержавеющей стали (диаметр 0,7 мм, длина 3 мм, стерилизованные хлоргексидином) в два предварительно изготовленных отверстия глубиной ~ 1 мм (2 мм открытого винта) для надежного крепления. Он контактирует с твердой мозговой оболочкой, не повреждая подлежащую кортикальную ткань.
  11. Подготовьте операционную область для зубной амальгамы, высушив черепную кость марлей и втянув дряблую кожу двумя швами 3 - 0 в положении ~ 4 и 8 часов.
  12. Нанесите стоматологическую амальгаму на открытый череп, чтобы закрепить винтовые электроды (винты из нержавеющей стали, описанные в шаге 1.10) на месте. Убедитесь, что ~ 1,5 мм винтов остаются открытыми для записи.
  13. Снимите ретракционные швы.
  14. Введите 0,5% карпрофена подкожно (5 мг/кг) для обезболивания и физиологический раствор (натрия хлорид 0,9%, 1,5 мл) подкожно для восполнения жидкости.
  15. Позвольте животным восстановиться в отдельных клетках. Не оставляйте животное без присмотра до тех пор, пока оно не придет в сознание, достаточное для поддержания лежачего положения на грудине.
  16. Не возвращайте животное в компанию других животных до тех пор, пока оно полностью не оправится от операции (минимум 5 дней).
  17. Продолжайте вводить 0,5% карпрофен подкожно для обезболивания (5 мг/кг) один раз в сутки в течение 4 дней.
  18. Запишите ЭРГ и ВЭП через 1 неделю после операции.

2. Запись ERG и VEP

  1. Подготовка сбора данных
    1. Используйте компьютерное программное обеспечение для одновременного запуска стимула и сбора данных в соответствии с настройками, рекомендованными ниже.
      1. Усиление сигналов (ERG: ×1,000, VEP: x10,000) с внутренним коэффициентом усиления, заданным изолированным предусилителем и усилителем, и с согласованием импеданса с обоими глазами.
      2. Установите частоту дискретизации для ERG на 4 кГц в течение окна записи 650 мс (2 560 точек), Для этого перейдите на вкладку «Временная база» в программном обеспечении для сбора данных (название и версию программного обеспечения см. в таблице для материалов), выберите «2 560» для образцов и «500 мс» для времени, которое вернет окно записи в 650 мс.
        1. Используйте тот же метод, чтобы установить частоту дискретизации для VEP на 10 кГц в течение эпохи 250 мс. Предоставьте 10 мсс исходного уровня перед стимулированием для записей ERG и VEP. Для этого перейдите на вкладку «Настройка»; выберите «Стимулятор», чтобы открыть новое диалоговое окно; в этом окне выберите "Пульс" из выпадающего списка для "Режим"; и установите значение для параметра "delay" на "10 мс".
      3. Установите полосовую фильтрацию ERG на 0,3 - 1 000 Гц (- 3 дБ). Это делается нажатием кнопки «Bio Amplifier» в программном обеспечении для сбора данных. Затем установите значение для "High Pass" на "0,3Hz", а значение для "low Pass" на "1 kHz".
      4. Используя вышеупомянутый метод, описанный в пункте 2.1.1.3, установите настройки полосы пропускания VEP на 0,1 - 100 Гц (- 3 дБ) в соответствии с рекомендациями Международного общества клинической электрофизиологии зрения (ISCEV) для регистрации VEP у человека.

2. Подготовка электродов

  1. Изготовьте активные/неактивные электроды ERG и активные/неактивные электроды VEP, прикрепив серебряную проволоку или зажим типа «крокодил» к электроду соответственно. Коммерческое получение заземляющего электрода.
  2. Для 4 электродов, изготовленных на заказ, отрежьте наружный конец от удлинителя электрода. Удалите 1 см внешнего изоляционного покрытия из политетрафторэтилена лезвием скальпеля, убедившись, что внутренний провод не поврежден.
  3. Предварительно изготовьте неактивные электроды ERG, разрезав серебряную проволоку длиной 70 мм (толщина 0,3 мм) и сформировав петлю диаметром ~ 8 мм, чтобы окружить глаз крысы. Подготовьте равномерный круг, придав форму петли на кончике пипетки объемом 1 мл.
  4. Предварительно оформите неактивные электроды VEP, вырезав серебро длиной 70 мм и сформировав эллипс ~ 8 мм в продольном диаметре, чтобы зацепить его за резцы крысы.
  5. Предварительно сформируйте активные электроды ERG, отрезав серебряную проволоку длиной 30 мм и сформировав небольшую петлю для мягкого контакта с роговицей крысы (~ 1-2 мм в диаметре)
  6. Надежно прикрепите электроды (2 активных ЭРГ, 2 неактивных ЭРГ, 1 неактивный VEP) к электродовому проводу, обвязав серебро с оголенным внутренним проводом.
  7. Изолируйте излишки открытого металла малярной лентой, чтобы уменьшить фотоэлектрические артефакты.
  8. На неактивных электродах ЭРГ приклейте небольшой кусочек застежки-липучки (~ 5 мм × 20 мм) к малярной ленте для обеспечения надежного крепления к шейному ремню грызуна.
  9. Прикрепите зажим типа «крокодил» к внутреннему проводу электродных выводов, чтобы сделать электроды VEP активными.
  10. Перед записью гальваническое покрытие открытых поверхностей серебряных проводов (т.е. неактивного кольца и активного наконечника) хлоридом с помощью источника постоянного тока 9 В в течение 20 секунд для улучшения проводимости сигнала.
    1. Для этого погрузите серебряный наконечник электродного провода ERG (действующего в качестве анода первичного элемента) в обычный физиологический раствор, а другой конец этого электродного провода подключите к положительной клемме 9-вольтовой батареи.
    2. Подсоедините другой провод (катод) к отрицательной клемме аккумулятора и также погрузите другой конец в солевой раствор. Отсоедините через 20 секунд и наблюдайте, чтобы серебряный наконечник электродного провода ERG равномерно покрылся белым цветом.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Подготавливайте новые электроды ERG для каждого экспериментального сеанса (~ до 8 часов), чтобы обеспечить проходимость хлоридного покрытия.

3. Подготовка животных

  1. Адаптируйте животных к темноте в течение ночи (≥ 8 часов) перед записью в светонепроницаемом помещении. Обеспечьте максимальную адаптацию к темноте, выключив свет в комнате и закрыв все двери и жалюзи. Сведите к минимуму утечку света, разместив светонепроницаемые материалы вокруг стыков дверей и окон и разместив экраны компьютеров за плотными черными шторами.
  2. Проводите подготовку животных в темном помещении с помощью тусклого красного светодиода (LED; 17,4 кд.м-2, λmax = 600 нм) для поддержания чувствительности стержня.
  3. Обезболивайте крысу путем внутримышечного введения кетамина/ксилазина (60:5 мг/кг). Подтверждают достаточную глубину анестезии отсутствием лапячного рефлекса.
  4. Для поддержания седативного эффекта при необходимости введите еще одну дозу анестезии (50% от начальной дозы) через 50 минут.
  5. Для дополнительной местной анестезии нанесите по одной капле 0,5% проксиметакаина на каждый глаз и смахните лишнюю жидкость.
  6. Для расширения зрачков нанесите по одной капле 0,5% тропикамида на каждый глаз, затем высушите лишнюю жидкость.

4. Позиционирование электродов ERG и VEP

  1. Поместите животное на платформу ERG перед чашей Ганцфельда, расположенной в клетке Фарадея. Избегайте использования электрической грелки, так как она может внести электрический шум в электрофизиологические записи.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Платформа прикреплена к циркуляционной платформе с подогревом воды для поддержания температуры тела.
  2. Закрепите животное на платформе с помощью полоски застежки-липучки, плотно, но не плотно прилегающей к затылку.
  3. Зацепите неактивный электрод VEP вокруг нижних резцов крысы, находящейся под наркозом.
  4. Расположите неактивные электроды ЭРГ, неинвазивно обернув склеральное кольцо вокруг экватора глаза. Стабилизируйте это, прикрепив электроды к застежке-липучке вокруг затылка. Повторите то же самое для контралатерального глаза.
  5. Закрепите активные электроды VEP, прикрепив зажимы типа «крокодил» к винтам из нержавеющей стали, предварительно имплантированным на череп.
  6. Поместите небольшую каплю 1% карбоксиметилцеллюлозы натрия на роговицу перед установкой активного электрода ERG для улучшения качества сигнала.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Вискозная жидкость также помогает поддерживать гидратацию роговицы на протяжении всего эксперимента, чтобы свести к минимуму образование катаракты типа высыхания у грызунов.
  7. Поместите небольшую каплю 1% карбоксиметилцеллюлозы натрия на нижние резцы, чтобы улучшить контакт неактивного электрода VEP и, таким образом, качество сигнала.
  8. Расположите активные электроды ERG так, чтобы они слегка касались центральной поверхности роговицы с помощью микроманипулятора, прикрепленного к специально изготовленному стереотаксическому манипулятору.
  9. Введите 2 - 5 мм заземляющего игольчатого электрода (нержавеющая сталь) подкожно в хвост.
  10. При необходимости высушите лишнюю жидкость с нижнего века перед записью, чтобы улучшить качество сигнала.
  11. Сдвиньте платформу ближе к миске Ганцфельда, убедившись, что глаза животного находятся на одной линии с отверстием миски, чтобы обеспечить равномерное освещение обеих сетчаток (см. шаг 2.4.1).
  12. Закройте клетку Фарадея, чтобы уменьшить посторонние шумы.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
крокодилБренд дженериковНМ3022Зажим из нержавеющей стали 26 мм для подключения винтовых электродов VEP к кабелям
БиоусилительПриложенияМЛ 135Для усиления сигналов ERG и VEP
Карбоксиметилцеллюлоза натрия 1,0%АллерганКАС 0009000-11-7Вязкая жидкость для улучшения качества сигнала активного электрода ЭРГ
Карпрофен 0,5%Группа по охране здоровья животных PfizerКАС 53716-49-7Запатентованное название: Римадил инъекционный (50 мг/мл). Для послеоперационного обезболивания, разведенного до 0,5% (5 мг/мл) в обычном физиологическом растворе
Хлоргексадин 0,5%Лаборатории Ориона27411, 80085Для дезинфекции хирургических инструментов
Циркуляционная водяная баняЛауда-КёнигсхоффенMGW LaudaДля поддержания температуры тела животного, находящегося под наркозом, во время хирургического вмешательства и электрофизиологической регистрации
Стоматологическая амальгамаДегуДент ГмбХ64020024Для облицовки узла электрод-череп для повышения его прочности
Зубные заусенцыStorz Instruments, Bausch and Lomb#E0824AМиниатюрная сверлильная головка диаметром ~0,7 мм для проделывания небольшого отверстия в черепе над каждой полусферой для вживления винтов VEP
сверлоБошСерия Dremel 300Автоматическая дрель для трепанации
Электродный проводТравяной телефактор Ф-Э2-30Платиновые кабели для подключения электродов серебряной проволоки к усилителю
Клетка ФарадеязаказнойОбеспечивает светонепроницаемость для адаптации к темноте. Включает в себя установку Ganzfeld для улучшения соотношения сигнал/шум
Марлевые тампоныМультигейт Медикал Продактс Пти Лтд57-100ВДля подсушивания хирургического разреза и открытой поверхности черепа во время операции
Интегрирующая сфера ГанцфельдаФотометрические решения ИнтернэшнлСпециально разработанный световой стимулятор: диаметр 36 мм, размер апертуры 13 см
VELCROVELCRO Австралия Пти ЛтдМногоразовая обертка VELCROЗастежка-липучка для фиксации электродов и животного на записывающей платформе
Изофлуран 99,9%Abbott Australasia Pty LtdКАС 26675-46-7Запатентованное название: ингаляционный анестетик Isoflo(TM). Фармацевтический ингаляционный анестетик в смеси с газообразным кислородом для имплантации электродов VEP
Кетамин Лаборатории ТроиПодвздошная кэтамильФирменное название: Кетамил Инъекции, Бренд: Подвздошная кость. Фармацевтический анестетик для электрофизиологической регистрации
Светодиоды LuxeonФиллипс Лайтинг Ко.Для световой стимуляции двадцать светодиодов по 5 Вт и один светодиод по 1 Вт.
микроманипуляторГарвардский аппаратБС4 50-2625Удерживает активный электрод ERG во время записи
Игольчатый электродТравяной телефактор Ф-Э2-30Подкожно вставляется в хвост в качестве заземляющего электрода для ERG и VEP
Фенилэфрин 2,5% минимс Бауш и ЛомбКАС 61-76-7Инстиллируется тропикамидом для достижения максимальной дилатации для регистрации ЭРГ
Повидон йод 10%Санофи-АвентисКАС 25655-41-8Фирменное наименование: Бетадин, Антисептик для подготовки выбритой кожи к операции 10%, 500 мл
Система сбора данных PowerlabПриложенияМЛ 785Управление светодиодами
Проксиметакаин 0,5%Лаборатории Alcon КАС 5875-06-9Для анестезии роговицы во время записи ЭРГ
Солевой растворГельфлексНеинъекционный, для гальванического покрытия электродов из серебряной проволоки
Программное обеспечение ScopeПриложенияВерсия 3.7.6Одновременно запускает стимул через систему Powerlab и собирает данные
Серебро (тонкая круглая проволока)Металлообработка и кондиционирование0,3 ммИспользуется для изготовления активных и неактивных электродов ЭРГ, а также неактивных электродов ВЭП
Винты с полосами из нержавеющей стали МикроФастнерыДиаметр стержня 0,7 мм, длина 3 мм для имплантации над первичной зрительной корой и использования в качестве активных электродов VEP
Стереотаксическая рамаДэвид КопфМодель 900Стереотаксический инструмент для мелких животных для определения местоположения первичной зрительной коры в соответствии с координатами атласа мозга крыс Paxinos & Watson 2007 года
Хирургическое лезвиеSwann-Morton Ltd.206Для разреза участка кожи, перекрывающего первичную зрительную кору, для имплантации электродов VEP
шовШанхай Пудун Цзиньхуань Медикал Продактс Ко., Лтд3-0 шелковый плетеный шовный нерассасывающийся, для втягивания кожи во время операции по имплантации электродов VEP
Тобрамицин глазная мазь 0,3%Лаборатории Alcon КАС 32986-56-4Фирменное название: Tobrex. Профилактическая мазь с антибиотиками, наносимая вокруг кожной раны после операции
Тропикамид 0,5%Лаборатории Alcon КАС 1508-75-4Фирменное название: 0,5% мидриациловые глазные капли, закапываемые для достижения мидриаза для регистрации ЭРГ
КсилазинЛаборатории ТроиПодвздошная ксилазила-100Фармацевтический анестетик для электрофизиологической регистрации
Наконечник для пипетки Компания Eppendorf Pty Ltd0030 073.169 (АнглийскийEppendorf epTIPS 100 - 5000 мл, для электродов по индивидуальному заказу
Инъекция эвтаназии летабарбомVirbac (Australia) Pty LtdLETHA450325 мг/мл пентобарбитала натрия для быстрой эвтаназии
Microsoft Office ExcelМайкрософтверсия 2010Программное обеспечение для работы с электронными таблицами для анализа данных
)

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Visual Evoked PotentialsElectroretinographyGanzfeld BowlFaraday CageRat ModelElectrode PlacementDark AdaptationKetamine XylazineCorneal LubricationGround Electrode

Похожие статьи