Методическая статья

Измерение потенциалов действия сложных мышц в мышцах передних конечностей мыши in vivo

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Pollari, E. et al., Электрофизиологическое измерение потенциала действия сложных мышц передних конечностей in vivo в мышиных моделях дегенерации двигательных нейронов.J. Vis. Exp. (2018).

Это видео демонстрирует метод in vivo для измерения потенциала действия сложных мышц (CMAP) у мышей. В нем описаны шаги по установке электродов, стимуляции нейронов передних конечностей, которые иннервируют мышечные волокна, и записи мышечных реакций. Метод оценивает демиелинизацию нейронов и потерю функциональных нейронов.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Подготовка животных и анестезия

  1. Вызвать анестезию у мышей с помощью ингаляции изофлурана/кислорода. Используйте 4% изофлурана для индукции анестезии и 2-3% для поддержания потока кислорода при 2,5 л/мин. Корректируйте процентное содержание изофлурана для поддержания анестезии в соответствии с состоянием мыши, т.е. маленьким и слабым мышам требуется меньше анестетиков. Подтвердите адекватную анестезию, например, слегка надавливая на подушечку для ходьбы задних конечностей, чтобы проверить отсутствие рефлекса отмены боли.
  2. Контролируйте температуру тела мыши с помощью термостатической нагревательной пластины при температуре 37 °C, чтобы предотвратить снижение температуры тела во время анестезии.
  3. Установите мышь с носовым конусом для поддержания анестезии. Убедитесь, что животное получает достаточное количество кислорода, убедившись, что носовой конус не блокирует дыхательные пути и что животное дышит ровно.
  4. Во время записи следите за тем, достаточно ли мышь обезболивается, наблюдая за частотой дыхания (примерно 1 Гц в анестезии) и отсутствием рефлекса отмены при умеренном давлении. Увеличивайте концентрацию изофлурана вручную, если анестезия недостаточно глубокая.
  5. После измерений оставьте мышь восстанавливаться на нагревательной пластине или в тепле инфракрасной лампы до тех пор, пока она не придет в сознание, достаточное для поддержания лежачего положения грудины, примерно на 2-5 минут. Не оставляйте мышь без присмотра и в компании других мышей до тех пор, пока она полностью не оправится от наркоза.

2. Измерение CMAP в передних конечностях

  1. Используйте игольчатые электроды 27 G для измерения CMAP передних конечностей. Рекомендуемые места расположения электродов приведены на рисунке 1.
  2. Расположите электроды на передние конечности следующим образом.
    1. Расположите мышь на грелке в положении лежа на спине и с помощью клейкой ленты удлините обе передние конечности по бокам тела (рис. 1B).
    2. Поместите стимулирующие электроды (1 = анод и 2 = катод) подкожно с обеих сторон передней конечности так, чтобы они совпали с нервом плечевого сплетения. Приподнимите кожу, чтобы ввести иглу перпендикулярно коже и протолкните иглу примерно на 5 мм под кожу, не прокалывая нижележащие мышцы.
    3. Поместите записывающий электрод (3) подкожно поверх двуглавой мышцы плеча, приподнимая кожу. Поместите электрод сравнения (4) на прогулочные площадки на глубину 3 мм под углом 30 градусов. Поместите заземляющий электрод (5) подкожно на боковую сторону мыши.
      заметка: В этой конфигурации электроды находятся в непосредственной близости друг от друга. Не допускайте соприкосновения электродов друг с другом, так как это искажает запись.

3. Сбор данных

  1. Начните стимуляцию, нажав кнопку рекуррентного стимула в блоке контроллера, и поверните ручку регулятора интенсивности, чтобы увеличить стимул. Стимулируйте все аксоны с помощью 1 импульса/с с длительностью стимула 0,1 мс. Выберите правильную частоту и продолжительность из выпадающих меню в программном обеспечении.
  2. Для достижения супрамаксимальных стимулов (5-20 мА; в демиелинизирующих условиях до 60 мА) применяйте увеличивающие стимулы, поворачивая ручку регулятора интенсивности до тех пор, пока амплитуда ответа CMAP не перестанет увеличиваться. После этого увеличьте стимул еще на 20%, чтобы амплитуда CMAP достигла своего максимального отклика. Завершите стимуляцию, снова нажав кнопку повторного стимула.
  3. С помощью инструмента маркера укажите следующие моменты в записи: начало стимула, начало ответа, максимальный положительный пик и максимальный отрицательный пик (рис. 2).
  4. Определите латентность (в мс) как задержку от начала стимула до начала ответа (рис. 2). Определите начало реакции как самую раннюю точку, в которой амплитуда начинает увеличиваться. Используйте задержку для оценки демиелинизации в аксонах.
  5. Измерьте амплитуду (мВ) от максимального отрицательного до максимального положительного пика (Рисунок 2). Используйте величину амплитуды для корреляции количества функциональных аксонов.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Рисунок 1. Позиционирование электродов для измерений CMAP.Положение электродов представлено для задних (А) и передних конечностей (В). Электроды нумеруются следующим образом: 1: анод и 2: электроды стимуляции катода, 3: активный записывающий электрод, 4: электрод сравнения, 5: заземляющий электрод.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Подкожный игольчатый электрод раздвижной, Pl/IrТехномедTE/S61-434Длина иглы составляет 13 мм (0,51 дюйма), диаметр 0,4 мм (27 г)
Система электродиагностики NatusNatus NeurologyУльтраПро С100Аппарат ЭМГ
синергияNatus NeurologyВерсия 20.1.0.100Программное обеспечение EMG для UltraPro S100
Контроллер PhysitemРотахер-Медикал ГмбХТКАТ-2ЛВГрелку
combi-vet Base Anesthesia System Цифровой флоуметр с TEC 3 VaporizeRothacher & PartnerКВ 30-301-ДИзофлуран Испаритель и расходомер
Изо-Вет 1000 мг/г Пирамал Хэлскесси ЮК ЛимитедAP/DRUGS/220/96Изофлуран
Мыши SOD1-G93AЛаборатория Джексона#002726БАС тг и не-тг контрольные однопометники, только суки
Мыши PrP-hFUS-WT3Лаборатория Джексона#017916 Однопометники с БАС тг и без тг, все группы сбалансированы по самцам и сукам
Мыши C57BL/6JaxЛаборатория Джексона#000664Мыши без ТГ для аксотомии, мужские и женские
Мыши C61-PMP22Мышиная линия была щедро подарена профессором М. Середой (Институт экспериментальной медицины Макса Планка, Гёттинген, Германия).ШМТ тг и не-тг контролируют однопометников, все группы сбалансированы на кобелей и сук

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

in vivo

Похожие статьи