Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Электрофизиологические записи активности мозга in vivo из нескольких участков у крыс

1.8K просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Haumesser, J. K., et al. Острая электрофизиологическая регистрация in vivo потенциалов локального поля и многоединичной активности от гиперпрямого пути у крыс под наркозом. J. Vis. Exp.(2017).

Это видео демонстрирует подробную процедуру подготовки крысы под наркозом к электрофизиологической записи активности мозга из нескольких мест. Кожа головы рассекается для доступа к черепу, а в точных местах просверливаются отверстия для установки и фиксации электродов. Затем вольфрамовые микропроволочные электроды вставляются в целевое место для записи данных.

Протокол

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Хирургия

  1. Для электрофизиологической записи используйте уретан (ОСТОРОЖНО) для анестезии.
    осторожность: Уретан токсичен и канцерогенен, поэтому всегда соблюдайте правила техники безопасности и паспорт, предоставленный производителем вещества.
  2. Приготовьте раствор уретана 200 мг/мл в 0,9% растворе хлорида натрия (NaCl) медицинского физиологического раствора.
  3. Введите в общей сложности 1,3 г/кг уретана с массой тела внутрибрюшинно (ВП). В зависимости от штамма крысы может быть разумно разделить дозу на две дозы с интервалом в 15 минут между инъекциями, чтобы повысить безопасность анестезии.
  4. Проверьте глубину анестезии с помощью педально-отводящего рефлекса и других подходящих рефлексов. Если анестезия недостаточно глубока для проведения операции, введите 0,15 г/кг массы тела уретана IP и подождите еще 15 минут.
  5. Нанесите мазь для глаз, чтобы предотвратить обезвоживание роговицы.
  6. Постоянно контролируйте частоту дыхания и рефлекс отведения педалей во время анестезии. Используйте грелку для небольших животных с контролем температуры, чтобы обеспечить поддержание физиологической температуры тела на протяжении всей операции. Перед началом электрофизиологической записи смените насадку на неэлектрическую (например, насадку на головку из ацетата натрия).
  7. Сбрейте шерсть вдоль спинной стороны головы, чтобы получить чистое операционное поле. Продезинфицируйте вокруг места разреза соответствующим хирургическим дезинфицирующим средством. Зафиксируйте животное в стереотаксической рамке.
  8. Выполните скальпелем разрез кожи головы длиной 2 см в сагиттальном направлении. С помощью скальпеля слегка соскребите апоневроз черепа и продезинфицируйте череп. Используйте ватные палочки, смоченные в 3% перекиси водорода (H2O2), чтобы удалить остатки ткани.
  9. При необходимости используйте электрокаутер или термокаутер для остановки кровотечения. Остановите кровотечения из костей черепа и подкожной клетчатки, если кровотечение не прекращается спонтанно через 1-2 минуты и затрудняет зрение на череп.
  10. Отрегулируйте стержень резцов до тех пор, пока головка не окажется в положении плоского черепа, что означает, что брегма и лямбда как стереотаксические опорные точки находятся в одной плоскости. Это наиболее важно для достижения высокой хирургической точности. Используйте стандартный стереотаксический инструмент для выравнивания крысы, откалибруйте назначенный наконечник по брегме под микроскопическим зрением и отрегулируйте резец до тех пор, пока назначенные точки для брегмы и лямбды на инструменте не коснутся черепа одновременно.
    заметка: Вид с одной стороны и сфокусированный свет с другой может помочь определить это состояние. В качестве альтернативы возьмите стереотаксический держатель с тонкой канюлей и измерьте дорсовентральные координаты брегмы и лямбды под микроскопическим зрением. Отрегулируйте планку резцов до тех пор, пока дорсовентральные координаты брегмы и лямбды не совпадут.
  11. Используйте стереотаксический держатель с канюлей, откалибруйте по брегме, а затем рассчитайте положение всех просверленных отверстий на черепе. С помощью стереотаксического держателя отметьте положение отверстий, которые необходимо просверлить, тщательно поцарапав череп или используя хирургический цветной маркер. Координаты для этого зависят от целей; Координаты относительно брегмы приведены для гиперпрямого пути в таблице 1, включая рекомендуемые координаты для мозжечковых электродов сравнения.
  12. С помощью микродрели тщательно просверлите все отверстия. Для ядра субталамуса (STN) и черной сеточной субстанции (SNr) просверлите общее отверстие (размером примерно 2 мм x 3 мм). Все остальные отверстия должны иметь диаметр около 1 мм.
  13. Возьмите две тонкие канюли (не менее 27 г) и согните их кончики, чтобы сформировать крючковатую форму, используя твердую поверхность или пинцет. Используйте их для удаления мусора из отверстий, а также аккуратно отрежьте и удалите твердую мозговую оболочку в общем отверстии STN/SNr.
  14. Просверленные отверстия промойте физиологическим раствором. Наносите каплю физиологического раствора каждые 15 минут на отверстия, чтобы предотвратить высыхание мозга и твердой мозговой оболочки.
  15. Возьмите микродрель и подходящий микровинт из нержавеющей стали (например, винт M 1,2 мм x 2 мм), просверлите отверстие и вкрутите микровинт между отверстиями эпидуральных электродов сравнения над мозжечком, проделайте то же самое для эпидуральных электродов M1.
  16. Вставьте самодельные эпидуральные электроды Ag/AgCl в отверстия для электродов сравнения и электродов M1. Направьте наконечник электрода тонким пинцетом и вставьте его прямо под кость черепа в отверстие
  17. .
  18. Зафиксируйте все эпидуральные электроды двухкомпонентным стоматологическим акрилом. Убедитесь, что вы не закрываете точку брегмы и не затрагиваете общее отверстие STN/SNr.
  19. Вставьте подготовленный держатель с вольфрамовыми электродами из микропровода в стереотаксическую раму.
  20. Откалибруйте самый вентральный электрод, который предназначен для нацеливания на STN, по брегме. Отрегулируйте расчетное положение над общим отверстием STN/SNr и опустите электроды вниз к мозгу под микроскопическим зрением. Убедитесь, что электроды с вольфрамовым микропроводом плавно входят внутрь мозга.

2. Электрофизиологическое картирование и запись

ПРИМЕЧАНИЕ: Для этого шага необходима клетка Фарадея и многоканальная электрофизиологическая система записи с записывающим программным обеспечением, способная к онлайн-фильтрации и онлайн-сортировке спайков. Предпочтительно использовать систему, которая работает с предварительным усилителем, расположенным рядом с головой животных, чтобы свести к минимуму электрические шумы и артефакты. Помимо вольфрамовых электродов с микропроволокой, для записи гиперпрямого пути необходим как минимум один эпидуральный электрод и один электрод сравнения. Эпидуральные и референсные электроды рекомендуется вставлять попарно, не соприкасаясь друг с другом, это помогает в случае неисправности и позволяет использовать различные типы ссылок при анализе данных.

  1. Поместите мобильную клетку Фарадея над стереотаксической рамой. Если доступна только стационарная клетка Фарадея, осторожно переместите стереотаксическую рамку в клетку Фарадея, следя за тем, чтобы глубокие электроды мозга не опускались в мозг до тех пор, пока стереотаксическая рамка не окажется в своем окончательном положении.
  2. Подсоедините электроды к головному столу электрофизиологической установки. Убедитесь, что электроды сравнения подключены к соответствующим каналам сравнения.
  3. Настройте программное обеспечение для записи: полосовой фильтр (0,05-8 000 Гц) и усилите (усиление в 1 500-2 000 раз) исходный сигнал данных. Используйте онлайн-фильтр LFP и спайк-фильтр с соответствующими настройками (полосовой фильтр 0,05-250 Гц для LFP, полосовой фильтр 300-8 000 Гц для MUA). Для всех фильтров используйте фильтр типа Баттерворта.
  4. Настройте пороговое значение пиков, если применимо, для сортировки пиков в интернете. Большинство программ для записи позволяют установить порог спайка, который представляет собой значение амплитуды, выше которого сигнал помечается программным обеспечением как спайк. Этот порог может быть определен либо математически как фактор или стандартное отклонение от средней амплитуды отфильтрованного сигнала спайка, либо предпочтительно может быть определен путем визуального осмотра сегментов данных <500 мс и установлен в виде линии над шумом сигнала в графическом пользовательском интерфейсе><. заметка: Цель установки порога спайков состоит в том, чтобы подсчитать пики и отсортировать единицы, чтобы предоставить информацию о том, сколько нейронов в данный момент записано и как сформированы их спайки.
  5. Медленно опустите вольфрамовые микропроволочные электроды на 1 мм дорсально от мишени, что является STN для гиперпрямого пути. При необходимости дождитесь стабилизации сигнала.
  6. Для электрофизиологического картирования продвигайте электроды вентрально с шагом 100 мкм. На каждом шаге оценивайте схему стрельбы, скорость стрельбы и форму шипов. Сравните их с типичными примерами, приведенными на рисунке 1. Как правило, плотные ядра демонстрируют быстрые и непрерывные спайки на протяжении нескольких дорсовентральных ступеней, в то время как богатые волокнами структуры демонстрируют низкую скорость возбуждения и менее однородную спайковую активность на последующих вентральных ступенях.
  7. Для гиперпрямого пути убедитесь, что самый вентральный электрод находится внутри STN.
    заметка: STN достигается, когда обнаруживается значительное увеличение MUA вентрально от Zona incerta. Вентрально по отношению к STN спайкинг прекращается почти полностью, потому что электрод достиг внутренней капсулы. Когда самый вентральный электрод находится в STN, конфигурация вольфрамовых микроэлектродов гарантирует, что задний, второй электрод находится в SNr. Дорсовентральная тонкая настройка с небольшими приращениями может потребоваться для одновременной регистрации типичного MUA в STN и SNr. Отметим, что частота MUA зависит от количества фактически зарегистрированных нейронов и от уровня активации мозга.
  8. После того, как электроды окажутся в нужных структурах, настройте онлайн-фильтрацию и сортировку спайков (см. рис. 2), а затем начните запись данных. Типичные примеры различных состояний синхронизации коры головного мозга, которые могут быть идентифицированы в записях LFP, показаны на рисунке 3.

Таблица 1: Стереотаксические координаты для записи гиперпрямого кортико-базального пути ганглий. Все точки измеряются от точки отсчета брегмы на черепе в мм; n.a.- не применяется.

Координаты из БрегмыСТНSNrМ1Ссылка 1Ссылка 2
передне-задний-3.6-4.8+3,0-10.0-10.0
медиально-латеральный+2,5+2,5+3,0+3,0-3.0
дорсально-вентральный-8.0н. а.н. а.н. а.н. а.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1
Рисунок 1: Характеристическая многоединичная активность дорсовентральной траектории электрода, нацеленной на STN. (A) Мультиъединичные записи вентрального заднемедиального таламического ядра (VPM), внутренней зоны (ZI), субталамического ядра (STN) и черной субстанции pars reticularis (SNr). VPM демонстрирует редкие и неравномерно расположенные пики высокой амплитуды. Этот паттерн спайков прекращается...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Специальные эпидуральные электроды Ag/AgClGoodfellow GmbH
D-61213 Бад-Наухайм, Германия
info@goodfellow.com
Product-ID AG005127 для 99,99% серебряной проволокиЭлектроды Ag/AgCl обеспечивают лучшее качество сигнала, но могут использоваться только в острых экспериментах. Возможная замена: Электроды из нержавеющей стали
Стереотаксический держатель с акриловым блокомDavid Kopf Instruments,
7324 Elmo Street, Туджунга, CA 91042, США
Product ID Модель 1770 Стандартный держатель электродовУбедитесь, что акриловый блок имеет углубления, которые подходят для настройки электродов для желаемой цели. Акриловые блоки можно легко модифицировать с помощью файла для получения нужной конфигурации. Возможная замена: Самосконструированные держатели электродов
Вольфрамовые микропроволочные электроды импеданс 1,5 МОмMicroprobes.com
18247-D Flower Hill Way Гейтерсберг, Мэриленд, 20879 США
ID продукта WE3ST31.5A5-250umСопротивление 1,5 МОм необходимо для одновременной записи MUA и LFP. Возможная замена: Можно использовать микроэлектроды из разных материалов. Электроды должны быть прямыми, прочными и как можно тоньше.
Инструмент для выравнивания крысDavid Kopf Instruments,
7324 Elmo Street, Туджунга, CA 91042, США
ID продукта Model 944 Инструмент для выравнивания крысПозволяет точно определить ориентацию мозга в соответствии со стереотаксическими атласами. Возможная замена: Стереотаксический держатель с канюлей
Двухкомпонентный стоматологический акрилАссошиэйтед Дентал Продактс Лтд.<бр /> Kemdent Works, Purton, Swindon
Wiltshire, SN5 4HT, Великобритания
Simplex Rapid Powder Clear 225 г, Код товара: ACR803; Simplex Rapid Liquid 150 мл, Код товара: ACR920В зависимости от используемых электродов суперклей может быть легкой альтернативой, если электроды небольшие и легкие. Возможная замена: Суперклей (на основе цианаакрилата)
Клетка ФарадеяСамостоятельное строительствоПравильная клетка Фарадея будет лучшей защитой от электромагнитных артефактов, но может помочь все, что может быть сформировано в форме коробки или нанесено на каркас и изготовлено из проводящего материала. Возможная замена: Алюминиевая фольга или медная сетка
Электрофизиологическая установка с программным обеспечением для записи и возможностью онлайн-сортировки спайковНейронная система сбора данных OmniPlex®
Plexon Inc
6500 Гринвилл Авеню, Люкс 700< спальня /> Даллас, Техас 75206
США
Программное обеспечение для сортировки в автономном режиме является потенциальной альтернативой, несколько скриптов и программного обеспечения можно найти бесплатно в сообществе с открытым исходным кодом.

Теги