Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Регистрация нейронной активности у свободно движущихся мышей с помощью волоконной фотометрии

2.2K просмотров

⸱

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Мартьянова, Э., и др. Многоволоконная фотометрия для регистрации нейронной активности у свободно движущихся животных. J. Vis. Exp. (2019).

Это видео демонстрирует метод записи нейронной активности свободно движущейся мыши с помощью волоконной фотометрии. При этом методе нейроны в определенной области мозга экспрессируют генетически закодированный показатель кальция. К этой области мозга прикладывается стимул, и для идентификации нейронной активности измеряется зависящее от стимула изменение флуоресценции.

Протокол

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Выравнивание оптического пути между камерой CMOS (комплементарный металлический оксидный полупроводник) и отдельным или разветвляющимся патч-кордом

  1. Ослабьте все винты на 5-осевом трансляторе (Рисунок 1B).
  2. Вкрутите патч-корд (рис. 1B) в адаптер [SMA (субминиатюрный A) или FC (оптоволоконный разъем)], который прикреплен к 5-осевому транслятору.
  3. Включите индикатор возбуждения с длиной волны 470 нм (рис. 1B) на малой мощности (100 мкВт) и поместите кончик патч-корда на автофлуоресцентное пластиковое стекло. Это не имеет никакого отношения к будущим записям, а предназначено исключительно для визуализации процесса выравнивания.
  4. Запись с CMOS-камеры (рис. 1B) в режиме реального времени. Увеличьте усиление или настройте таблицу преобразования (LUT) до тех пор, пока изображение не станет полностью черным. Суть в том, чтобы иметь возможность видеть изображение в фокусной точке объектива (рис. 1B).
  5. Переместите 5-осевой транслятор к объективу, следя за тем, чтобы свет с длиной волны 470 нм был центрирован на оптоволокне на конце патч-корда SMA или FC до тех пор, пока изображение не будет получено на камере.
  6. Отрегулируйте оси X и Y до тех пор, пока изображение не будет центрировано и хорошо разрешено.
  7. Визуализируйте свет, излучаемый наконечником наконечника патч-корда. Он должен выглядеть в виде изотропного круга. Если используется ветвящийся патч-корд, количество света, излучаемого на концах наконечника каждого патч-корда, должно быть одинаковым. Если круг не изотропен или излучаемый свет неравномерен, настройте 5-осевой транслятор по оси X-Y.

2. Настройка ROI вокруг волокон для измерения средней интенсивности флуоресценции

  1. Включите все возбуждающие лампочки, чтобы лучше визуализировать волокна. Отрегулируйте усиление камеры так, чтобы пиксели не переполнялись и чтобы волокна были четкими.
  2. Запись в режиме реального времени или создание предварительного изображения.
  3. Нарисуйте ROI вокруг волокон и сохраните их для измерения средних значений интенсивности во время записи (рис. 1A).
  4. Для записи по нескольким оптоволоконным кабелям проверьте независимость сигналов.
    1. Живая запись со всех волокон.
    2. Направьте одно волокно в сторону источника света и постучите пальцем. Большие колебания должны происходить только в этом канале (допустимая утечка 1:1000).
    3. Если сигналы не являются независимыми, перерисуйте более консервативные ROI и повторите тест на независимость.
  5. Чтобы маркировать и отслеживать, какой ROI соответствует какому волокну, цветную ленту или лак для ногтей можно нанести на конец волокон. Сделайте снимок перед началом любого эксперимента в качестве вторичного напоминания.

3. Настройка сцены для записи

  1. Повесьте патч-корд над ареной с помощью подставок, зажимов или держателей.
  2. Убедитесь, что животное может свободно перемещаться по всей арене, не стесняясь длины волокна.
  3. Если используется оперантная коробка или открытое поле, убедитесь, что патч-корд может добраться до животного с минимальным изгибом. Если для этого требуется тыкать носом, убедитесь, что над головой достаточно места, чтобы предотвратить изгиб волокна. Избегайте чрезмерного сгибания или скручивания патч-корда.

4. Записи in vivo

  1. Визуально осмотрите дистальный конец волокон патч-корда на глаз и с помощью микроскопа из минифибры. Если поверхность волокон поцарапана, повторно отполируйте волокна с помощью пленки для полировки/притирки волокон с мелкой зернистостью (1 мкм и 0,3 мкм).
  2. Очистите дистальные концы патч-корда 70% этанолом и аппликатором с ватным наконечником.
  3. Очистите оптоволоконные канюли с помощью 70% этанола и аппликатора с ватным наконечником.
  4. Соедините наконечник патч-корда с имплантируемым волокном с помощью керамической разъемной втулки, покрытой черной термоусадочной трубкой. Убедитесь, что втулка плотно прилегает во время соединения. В противном случае используйте новый рукав.
    заметка: Если между наконечником патч-корда и имплантатом есть какое-либо пространство, произойдет большая потеря сигнала, и запись не будет работать.
  5. Дайте животному прийти в себя за несколько минут до начала поведенческого тестирования.
  6. Начните запись оптического сигнала и проведите эксперимент.
  7. Во время записи внимательно следите за трассировкой в реальном времени, чтобы обеспечить качество записи. Ожидается, что сигнал будет быстро уменьшаться в зависимости от времени в течение первых 2 минут записи. Этот эффект вызван тепловым затуханием светодиодов, в результате чего увеличение нагрева увеличивает сопротивление оптического элемента.
  8. Если происходит скачок сигнала, превышающий кинетику включения/выключения GCaMP, это часто указывает на то, что втулка недостаточно плотная и пространство между патч-кордом и имплантатом меняется. В этом случае остановите эксперимент и снова соедините животное с помощью новой втулки.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1
Рисунок 1: Схема фотометрии волокон. (A) Возбуждающий свет от двух светодиодов (410 нм и 470 нм) проходит через ряд фильтров и дихроичных зеркал и создает пятно возбуждения на рабочем расстоянии объектива 20x. Свет проходит либо через один патч-корд, либо через пучковые волокна (для записи нескольких участков), подключенные к имплантированным канюлям. Излучаемая флуоресценция собирается теми же волок...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
1/4"-20 Винт с колпачком из нержавеющей стали, длина 1"ТорлабсSH25S100
1/4"-20 Винт из нержавеющей стали, длина 1/2"ТорлабсSH25S050
Винт с колпачком из нержавеющей стали 1/4"-20, длина 3/8"ТорлабсSH25S038
1000 мкм, 0,50 NA, SMA-SMA
Оптоволоконный патч-кабель
ТорлабсМ59Л01
Оптический штифт 12,7 ммТорлабсTR30/М
Держатель стойки на пьедестале 12,7 ммТорлабсРН20ЭМ
Блок питания 15 В, 2,4 А с <бр/> Разъем 3,5 мм для T-CubeТорлабсКПС101
Цель в 20xТорлабсRMS20X
30 мм Cage Cube с креплением для фильтра DichroicТорлабсКМ1-ДЧ/М
Светодиод 405 нмДорические линзыCLED_405
Полосовой фильтр 410 нмТорлабсФБ410-10
465 нм. СветодиодДорические линзыCLED_465
Полосовой фильтр 470 нмТорлабсФБ470-10
Полосовой фильтр 560 нмСемрокФФ01-560/14-25
Светодиод 560 нмДорические линзыCLED_560
5-осевое кинематическое креплениеТорлабсК5Х1
Ахроматический дублетТорлабсАС254-035-А-МЛ
Адаптер для коллиматора 405ТорлабсАД11Ф
Адаптер для регулируемого коллиматораТорлабсАД127-Ф
Алюминиевая макетная платаТорлабсМБ1824
Зажимная вилкаТорлабсКФ125
Кубический соединительТорлабсКМ1-СС
Двойной дихроичный 493/574СемрокФФ493/574-ДИ01-25х36
Фильтр излучения для GCaMP6СемрокФФ01-535/22-25
Корпус с черными панелями из оргалитаТорлабсXE25C9
Наружная торцевая крышка с резьбой SM1 для механической обработкиТорлабсSM1CP2M
Быстросменный держатель фильтра для линзовой трубки SM1ТорлабсSM1QP
Стационарный коллиматор для света 405 нмТорлабсF671SMA-405
Фиксированный коллиматор для света 470 и 560 нмТорлабсF240SMA-532
Зеленый фильтр выбросовСемрокФФ01-520/35-25В светоделителе
CMOS-камера с высоким разрешением USB 3.0ТорлабсDCC3260M
СветоделительНейрофотометрияраскалывать
Длиннопроходное дихроичное зеркало, отсечка 425 нмТорлабсDMLP425R
Длиннопроходное дихроичное зеркало, отсечка 495 нмСемрокFF495-Di03
Стоматологический цемент MetabondС&В
Кабель M8 - M8Дорические линзыCable_M8-М8
Канюли для оптического волокнаДорические линзыНеобходимо указать, что они будут использоваться для фотометрических экспериментов, требующих низкой автофлуоресценции
Оптоволоконные патчкордыДорические линзыНеобходимо указать, что они будут использоваться для фотометрических экспериментов, требующих низкой автофлуоресценции
Красный фильтр излученияСемрокФФ01-600/37-25В светоделителе
Разъем T7 LabJackЛабДжек
Светодиодный драйвер T-cubeТорлабсСВЕТОДИОД1Б
Кабель ввода-вывода USB 3.0, Hirose 25, для DCC3240ТорлабсКАБИНА-DCU-T3

Теги

Регистрация нейронной активностигенетически кодируемый кальциевый индикаторлатеральная область гипоталамусалатеральная габенуластимуляция потоком воздухаизмерение флуоресценцииоптоволоконная канюлякальциевый имиджинг