Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Проведение стимуляции кавернозных нервов у крыс для измерения внутрикавернозного давления

1.9K просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Hox, M., et al. стимуляция кавернозного нерва и регистрация внутрикавернозного давления у крысы. J. Vis. Exp. (2018).

Это видео демонстрирует изоляцию и стимуляцию кавернозного нерва у крысы под наркозом для изучения изменений артериального давления в пещеристом теле.

Протокол

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Подготовка трубки, электрода и инструментов для хирургической процедуры

  1. Используйте следующие микрохирургические инструменты: хирургические ножницы, угловые микроножницы, тканевые щипцы, пару изогнутых микрощипцов Dumont #7 и #5, микроиглодержатель и ретракторы.
    заметка: Это острая процедура, поэтому инструменты не нужно стерилизовать. После использования очистите и протрите кончики 70% этанолом.
  2. Замочите трубку в 70% этаноле, а затем промойте ее стерильным 0,9% NaCl со 100 Ед/мл гепарина перед использованием. Оставьте трубку заполненной, чтобы избежать попадания пузырьков воздуха в систему.
  3. Отрежьте кусок трубки из полиэтилена (ПЭ)-50 длиной 20-30 см, чтобы сделать катетер для измерения внутрикавернозного давления (ВЧД). Убедитесь, что трубка как можно короче, чтобы уменьшить демпфирование давления.
  4. Согните стерильную иглу 24G из стороны в сторону, пока игла не сломается посередине. Соедините деталь со скосом с дистальным концом полиэтиленовой трубки для введения в голень полового члена. Вставьте вторую половинку в ступицу для подключения к датчику давления. Заполните систему гепаринизированным физиологическим раствором (100 ЕД/мл).
  5. Чтобы изготовить биполярный электрод с тефлоновым покрытием, отрежьте две серебряные проволоки длиной 125 мкм одинаковой длины. С помощью куска ленты прикрепите провода к краю стола и продейте их вместе. Затем прикрепите электрод к черной пластине.
  6. Сделайте небольшой надрез в тефлоне и с помощью микрощипцов #5 снимите тефлоновое покрытие длиной 4-5 мм с кончиков электродов. Отрежьте кончики скальпелем, чтобы добиться одинаковой длины, и создавайте крючки, загибая концы вокруг тупого края лезвия скальпеля.
  7. Обмотайте электрод лентой концом, слегка выступающим за край черной пластины крючками, направленными вверх. Смешайте силиконовый клей на пластиковой пластине в течение 10 с и оберните клеевой пузырь вокруг электрода в 1-2 мм от крючка.
  8. Дайте ему высохнуть в течение примерно 5 минут перед использованием (Рисунок 1). Снимите тефлон с более длинной секции на другом конце, чтобы обеспечить подключение к стимулятору.
    заметка: При повторном наложении крючков на дистальном конце электрод может быть использован многократно.

2. Подготовка животного

  1. После обезболивания животного побрейте нижнюю половину живота, шею и промежность. Потрите животное 70% спиртом с последующим добавлением повидон-йода три раза. Положите крысу на подогретую хирургическую прокладку в лежачем положении на спине. Нанесите ветеринарную глазную мазь и переключите анестезию на носовой конус с 2,5% изофлураном и 0,8 л/мин кислорода в качестве носителя.
    заметка: Отрегулируйте уровень изофлурана и кислорода для достижения приемлемого уровня анестезии.

3. Предоперационная подготовка

  1. Выполняйте всю хирургическую процедуру под операционным микроскопом: достаточно увеличения в диапазоне от 3,15X до 20X. Используйте перчатки и поддерживайте чистоту на протяжении всей операции. Поместите крысу на простыню.

4. Диссекция ишиокавернозной мышцы для измерения ВЧД

  1. С помощью скальпеля, прямых ножниц и изогнутых микрощипцов Dumont #7 сделайте вертикальный разрез кожи размером 1 см на 5 мм латеральнее средней линии, начиная с уровня основания полового члена и продолжаясь вниз (Рисунок 2A). Используйте ватную палочку и осторожно отделите фасцию латерально к мошонке (рисунок 2B). После рассечения фасции прикрепите ретракторы и пальпируйте с помощью ватного наконечника, чтобы найти седалищный бугр (рис. 2C).
  2. Рассекайте через жировую ткань медиально от этой точки до тех пор, пока не будет визуализирована седалищная мышца (рисунок 3А). Используйте пару изогнутых микрощипцов Dumont #7 и разделите мышцу в продольном направлении. Белочная оболочка будет выглядеть как ярко-белая структура (Рисунок 3B). С помощью микрощипцов и микроножниц обнажите белочную оболочку в достаточной степени, чтобы увидеть ее ход (Рисунок 3C).
  3. После калибровки настроек системы вставьте трубку через кожу в промежность, убедившись, что она проходит параллельно голени полового члена (рис. 4). Оставьте линию на месте и поддерживайте разрез влажным с помощью физраствора.

5. Диссекция КН для стимуляции

  1. Сделайте разрез живота на 2 см ниже, по средней линии живота, сначала с помощью скальпеля, а затем прямых ножниц и микрощипцов. Сделайте соответствующий разрез через фасцию вдоль белой линии и подлежащей мышечной ткани, чтобы обнажить мочевой пузырь и простату.
  2. Используйте втягивающие устройства для достижения хорошей экспозиции. Используйте ватные тампоны для отделения простаты от жировой ткани, чтобы получить четкую визуализацию большого тазового ганглия (MPG) и кавернозного нерва (CN), проходящего на дорсолатеральной стороне простаты (Рисунок 5).
  3. После визуализации МПГ и КН осторожно разрежьте фасцию, расположенную над нервом на расстоянии 2-5 мм дистальнее МПГ, угловыми микроножницами (рис. 6а). С помощью микрощипцов #5 распределите ткань по каждой стороне нерва и под ним, чтобы освободить участок длиной 4 мм (Рисунок 6b), и проложите шов 9-0 под нерв (Рисунок 6c).
  4. Слегка приподнимите нерв с помощью шовной нити (Рисунок 7a), чтобы облегчить размещение крючков биполярного электрода вокруг нерва (Рисунок 7b). Дайте помощнику перемешать двухкомпонентный силиконовый клей кончиком инсулиновой иглы в течение 5 с. Высушите нерв и нанесите клей на область вокруг крючков и нерва (рисунок 7c, d). Держите нерв в приподнятом положении, слегка потянув за электрод примерно на 1 минуту, чтобы клей высох.
  5. Снимите втягивающие устройства, за исключением втягивающих устройств с правой стороны, во избежание вытягивания или скручивания электрода. Смочите обнаженные органы физиологическим раствором и положите на разрез марлю, смоченную в физрастворе.

6. Канюляция кавернозного тела для измерения ВЧД

  1. Восстановите визуализацию белочной оболочки с помощью ретракторов. Следите за тем, чтобы не прикреплять ретракторы к седалищной мышце, так как это приведет к деформации голени.
  2. Прикрепите иглу и промойте трубку гепаринизированным физиологическим раствором, прежде чем вводить его в белочную оболочку. Держите белочную оболочку в растянутом положении, используя изогнутые микрощипцы Dumont #7 в одной руке (не доминантные), удерживая белочную оболочку и остальную часть вышележащей мышцы дистальнее точки введения. Держите иглу прямыми микрощипцами в другой доминирующей руке и введите ее параллельно ходу кавернозного тела (Рисунок 8).
  3. Вдавите иглу на 5-8 мм в пещеристое тело. Промойте трубку и нажмите на горлышко, чтобы проверить линию (Рисунок 9). Убедитесь в отсутствии утечек. Закрепите трубку на столе с помощью ленты, чтобы предотвратить случайное натягивание лески. Снимите втягивающие устройства.

7. Стимуляция ЧН

  1. При запуске программы записи (например, Spike 2) непрерывно записывайте внутрикавернозное и среднее артериальное давление.
  2. Установите следующие параметры на стимуляторе (например, SD9 Grass Instruments, см. Таблицу материалов) для стимуляции ЦН: ток на 1,5 мА, частота на 16 Гц, напряжение на 3 В и ширина импульса на 5 мс. Примените 50 с стимуляции с минимальным отдыхом 1 минута между стимуляциями.
    заметка: Первые стимулы обычно приводят к снижению реакции (Рисунок 10).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1
Рисунок 1. Биполярный серебряный электрод с тефлоновым покрытием. (A) Пузырь клея в переходной зоне между электродом с покрытием и без покрытия. (В) Дистальные 2 см электрода плотно оплетите. (C) Параллельные крючки без покрытия на расстоянии 1 мм друг от друга.

figure-results-2

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Щипцы АдсонаИнструмент изобразительной науки11006-12
Щипцы Dumont #7Инструмент изобразительной науки11271-30
Щипцы Dumont #5Инструмент изобразительной науки11273-20
Ножницы ToughCut MayoИнструмент изобразительной науки14110-15
Миниатюрные весенние ножницы VannasИнструмент изобразительной науки15006-09
Сверхтонкий гемостатИнструмент изобразительной науки13020-12
Crile HemostatИнструмент изобразительной науки13004-14
Клей Kwik-SilМировые прецизионные приборыКВИК-СИЛ
Серебряная проволока с тефлоновым покрытием 0,125 ммМировые прецизионные приборыAGT0510
Втягивающие эластичные проволокиИзготовление на заказ
Лезвие скальпеляИнструмент изобразительной науки10023-00
Трубки ПЭ-50Уорнер Инструментс64-0753 (Английский
Игла 23 гКруузе121272
SD-9 Квадратный пульсовый стимуляторСоматко1077/183
Датчик артериального давления и кабельМировые прецизионные приборыБЛПР2
Raucotupf Аппликаторы с хлопковыми наконечникамиЛоманн-Раухер11966
Глазные палочки Pro-ophtaЛоманн-Раухер16515
NaCl 0,9 % 100 млМестная аптека
ГепаринМестная аптека
Шприц 25 млУниверситетская клиника Оденсе
Ветеринарная глазная мазь - ViscotearsМестная аптека
серебряные проводаScience Products GmbH, Гейдельберг, Германия
Силиконовый клейKwik-Sil, World Precision Instruments, Сарасота, Флорида, США
) г.

Теги