Методическая статья

Внеклеточная регистрация электрической активности в центральной нервной системе дрозофилы

835 просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Swale, D. R., et al. Электрофизиологическая запись активности центральной нервной системы дрозофилы Melanogaster третьего возраста. J. Vis. Exp. (2018)

Видео демонстрирует внеклеточную запись нейронной активности центральной нервной системы (ЦНС) личинок дрозофилы. Разрезанная ЦНС размещается в регистрирующей камере, и электрическая активность нисходящего нерва регистрируется для установления исходной частоты возбуждения. Затем вводят испытуемый агент, и регистрируют изменение частоты срабатывания для определения возбуждающего или ингибирующего эффекта агента.

Протокол

Все процедуры, связанные со сбором образцов, были выполнены в соответствии с рекомендациями института IRB.

1. Препарирование и подготовка ЦНС личинки дрозофилы

ПРИМЕЧАНИЕ: Методы диссекции ЦНС личинок ясно проиллюстрированы у Хафера и Шедля, но эти ранее опубликованные методы уменьшают длину нисходящих нейронов, которые важны для измерения частоты спайков. Здесь описывается дополнительный метод иссечения личиночной ЦНС, которая поддерживает длинные, неповрежденные нисходящие нейроны.

  1. Солевой препарат.
    1. Приготовьте для вскрытия и записи физиологический раствор до следующего значения в мМ: 157 NaCl, 3 KCl, 2 CaCl2, 4 2-[4-(2-гидроксиэтил)пиперазин-1-ил]этансульфоновой кислоты (HEPES); титруйте pH до 7,25.
  2. Препарируйте личиночную ЦНС дрозофилы.
    1. Определите и извлеките блуждающую Drosophila melanogaster третьего возраста из флакона для культуры и поместите в нее 200 мкл физиологического раствора (рис. 1A).
    2. Возьмитесь за крючки для рта парой тонких щипцов и обхватите брюшную полость личинки второй парой щипцов (Рисунок 1B).
      заметка: Не надавливайте слишком сильно на живот, так как это может привести к разрыву тонкого кутикулярного слоя личинки.
    3. Осторожно потяните за крючки для рта и брюшко в разных направлениях, чтобы отделить хвостовой конец личинка от области головы и обнажить внутренности личинки (Рисунок 1C).
      заметка: ЦНС будет переплетена с трахеей и пищеварительным трактом. Не отделяйте ЦНС от тканей, чтобы предотвратить перерезание нисходящих периферических нервов.
    4. Выведите ЦНС из пищеварительного тракта и трахеи с помощью щипцов (рисунок 1D).
    5. При необходимости нарушить гематоэнцефалический барьер, вручную пересектив ЦНС позади мозговых долей пружинными ножницами Ваннас.
      заметка: Это следует делать, исходя из физико-химических свойств используемого химического вещества. Красная линия на рисунке 2А — это предполагаемая точка пересечения и пересеченная ЦНС с неповрежденными нисходящими периферическими нервными стволами, показанными на рисунке 2В. Разрезанная ЦНС готова к экспериментам после завершения шага 1.2.5.

2. Внеклеточная запись ЦНС дрозофилы.

  1. Подготовьте ЦНС к записи.
    1. Протяните стеклянный электрод для пипетки от капилляров боросиликатного стекла с сопротивлением 5-15 мОм.
    2. Вставьте рассеченную ЦНС в восковую камеру, содержащую 200 мкл физиологического раствора. Зажмите штифт без покрытия с помощью зажима типа «крокодил», припаянного к заземляющему проводу, и вставьте штифт в солевой раствор, чтобы завершить цепь.
    3. С помощью микроманипуляторов ориентируют электрод на каудальный конец разрезаемой ЦНС. Исключите запись фонового шума, отрегулировав пороговый уровень в программном обеспечении для сбора/анализа данных перед контактом с периферическими нервными стволами.
    4. Втяните любые удобные периферические нервы в отсасывающий электрод, слегка надавливая на шприц.
      заметка: Базовая частота возбуждения коррелирует с количеством нейронов, втянутых в электрод, где большее количество нейронов часто приводит к увеличению сопротивления электрода.
  2. Начните внеклеточную регистрацию активности нисходящего нерва ЦНС.
    1. Запустите запись в программном обеспечении для сбора данных и отслеживайте базовую частоту срабатывания. Дайте скорости срабатывания стабилизироваться в течение 5 минут, прежде чем собирать данные о базовой скорости срабатывания.
    2. Откажитесь от подготовки и записи, если схема срабатывания контрольной обработки не является схемой разрыва, аналогичной показанной на рисунке 3A.
      заметка: Измененный паттерн возбуждения предполагает аномальную или нестабильную активность центрального генератора паттернов, которая может изменить нейронную функцию.
    3. Через 5 минут добавьте 200 μL физиологического раствора + транспортное средство, чтобы довести общий объем камеры до 400 μL для начала регистрации контрольных скоростей стрельбы.
    4. После установления исходного уровня (3-5 мин) извлеките 200 μл физиологического раствора и добавьте 200 μЛ экспериментального средства, растворенного в физрастворе.
      заметка: Диметилсульфоксид (ДМСО) является рекомендуемым растворителем для липофильных соединений и не должен превышать 0,1% v/v.
    5. Применяйте концентрации препарата последовательно (от низких до высоких концентраций) и регистрируйте каждую концентрацию в течение выбранного периода времени (определяемого исследователем на основе химических свойств препарата). Обозначьте этот момент времени применения препарата в программном обеспечении для сбора/анализа, включив комментарий, включающий препарат и конечную концентрацию.
      заметка: Активность возбуждения ЦНС снижается примерно на 10-20% через 30-50 минут после вскрытия, поэтому следует проводить соответствующий нелеченный контроль, а медикаментозное лечение не должно превышать этот период времени.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1
Рисунок 1: Метод иссечения ЦНС от личинок третьего возраста. (А)Неповрежденная личинка погружена в 200 μл физиологического раствора. Стрелка указывает на крючки для рта, которые используются для отделения стенки тела. (B) Две пары щипцов помещаются в середину личинки и на крючки для рта, чтобы начать отделение стенки тела. (C) Стенка тела отделяется путем приложения ...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Drosophila melanogaster (штамм OR)Блумингтонский фондовый центр дрозофил2376
Виброизоляционный столКинетические системыСерия 9200
Клетка ФарадеяКинетические системыН/Д
Препарирующий микроскоп на штангеКомпания NikonSMZ800NМожно использовать несколько прицелов; решающее значение имеет стойка стрелы
Дифференциальный усилитель переменного/постоянного токаПриложенияAM3000HМодель 1700 может быть использована вместо модели 3000
АудиомониторПриложенияАМ3300
Шумоподавление жуковСистемы А-М726300
Система сбора данных (PowerLab)ПриложенияПЛ3504Можно использовать несколько моделей PowerLab.
Программное обеспечение Lab Chart ProПриложенияН/Д - Онлайн Скачать
Оптоволоконные светильникиЭдмунд Оптикс89-740Можно использовать разные источники света, но наиболее адаптируемыми являются волоконные оптические
микроманипуляторМировые прецизионные приборыМ325
Держатель микроэлектродовМировые прецизионные приборыМЭН715Допустимы разные модели
Кабели BNCМировые прецизионные приборыКратно в зависимости от размера
Стеклянные капиллярыМировые прецизионные приборыPG52151-4
Съемник микроэлектродовИнструменты Саттера-1000Также можно использовать Narashige PC-100
Черный воскКаролина Биджиал Поставка974228
Булавки от насекомых без покрытия, размер #2Биокип1208С2
Щипцы FinceИнструменты для точной науки11254-20
Весенние ножницы VannasИнструменты для точной науки15000-03
г.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Drosophila

Похожие статьи