Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Нанесение черепно-мозговой травмы в мозг мыши

1.2K просмотров

⸱

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Zhong, J., et al. Прижизненная визуализация экспрессии флуоресцентных белков у мышей с черепно-мозговой травмой закрытого черепа и черепным окном с использованием двухфотонного микроскопа. J. Vis. Exp. (2023)

Это видео демонстрирует доставку черепно-мозговой травмы (ЧМТ) у мышей. После обнажения черепа место ЧМТ помечается. Затем мышь помещается под устройством TBI. Удар наносится путем поднятия металлического стержня и его свободного опускания на ударный элемент, который соприкасается с черепом.

Протокол

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Проведение повторной индукции черепно-мозговой травмы (ЧМТ)

ПРИМЕЧАНИЕ: Параметры TBI скорректированы по сравнению с предыдущими отчетами, в которых воздействие TBI было показано один раз. Протокол здесь применяет тот же параметр, за исключением увеличения общего числа воздействия до 10.

  1. Оборудование TBI
    1. Используйте специально изготовленное портативное устройство для введения ЧМТ с закрытым черепом (Рисунок 1A) на головку мыши с правой стороны, как показано на Рисунке 1B.
  2. Подготовка перед операцией
    1. Оборудование для автоклавной хирургии, включая обычные ножницы, хирургический суппорт, хирургические пружинные ножницы, хирургические щипцы, щипцы от комаров, наконечники для головы, марлю и аппликаторы с ватными наконечниками.
    2. Взвесьте и запишите вес тела мыши за 2 ч до операции. Чтобы свести к минимуму отек мозга во время имплантации черепного окна, введите дексаметазона фосфат натрия в дозе 4,8 мг/кг [2 мг/мл, обычно ~70 мкл (необходимо вводить в двух местах)] в четырехглавую мышцу с помощью инсулинового шприца. После инъекции дексаметазона, но до начала операции по лечению ЧМТ, подготовьте стеклянные окна, как указано в шаге 2.1, для последующего использования.
    3. Продезинфицируйте операционный этап и оборудование для ЧМТ с использованием 75% этанола. Разверните одноразовую стерильную хирургическую простыню, чтобы покрыть операционный этап на стереотаксической платформе. Включите нагревательный прибор и монитор температуры, установив целевую температуру на 37 °C.
    4. Откройте клапан кислородного баллона и отрегулируйте поток кислорода до 1,5 л/мин. Откройте наркозный аппарат и установите значение уровня изофлурана на 3,<бр/> ПРИМЕЧАНИЕ: 100% чистый кислород может помочь животному пережить удары ЧМТ.
    5. Поместите мышь в индукционную камеру и оставьте на 5 минут для достижения полной анестезии.
    6. Как только мышь будет полностью обезболена (т.е. медленная, но стабильная частота дыхания примерно один цикл в 2 с в сочетании с отсутствием рефлекса защемления хвоста), извлеките мышь из индукционной камеры и поместите головку мыши в стереотаксическую рамку.
    7. Поместите носовой конус с анестезиологической трубкой на морду мыши.
    8. Поддерживайте анестезию с использованием 1,5% изофлурана, смешанного со 100% чистым кислородом, со скоростью потока 1 л/мин до конца операции. Периодически проверяйте частоту дыхания и выполняйте щипку хвоста или пальца ноги не реже одного раза в 15 минут на протяжении всей операции, чтобы оценить подходящую анестезию. Отрегулируйте концентрацию изофлурана по мере необходимости, чтобы поддерживать желаемую глубину анестезии.
  3. Хирургия ЧМТ
    1. Ввести бупренорфин (1 мг/кг, подкожно) с помощью одноразовых инсулиновых шприцев и нанести офтальмоглазную мазь на глаза мыши.
    2. Удалите волосы с макушки, подстригая их ножницами 1, а затем нанесите средство для депиляции на 1 мин.<бр/> ВНИМАНИЕ: Не наносите средство для депиляции более чем на 3 минуты на кожу головы, так как оно является раздражителем кожи. Кроме того, избегайте попадания средства для депиляции в глаза мыши.
    3. Очистите кожу головы, наложив марлю и аппликаторы с ватным наконечником. Затем продезинфицируйте кожу, используя сначала 75% этанола, а затем бетадин. Повторите это три раза (т.е. этанол с последующим бетадином), оставив окончательное нанесение бетадина на кожу.
    4. Повторно проверьте глубину анестезии, чтобы убедиться, что мышь полностью обезболена (т. е. медленная, но стабильная частота дыхания примерно один цикл в 2 с в сочетании с отсутствием рефлекса щипкового рефлекса). Наложите на кожу хирургические щипцы 3 и сделайте разрез по средней линии длиной 12-15 мм, начиная примерно на 3 мм позади глаз.
    5. Иссеките кожу над левым и правым полушарием черепа с помощью пружинных ножниц 2.
    6. Как только череп обнажится, удалите надкостницу, аккуратно потерев ее стерильным аппликатором с ватным наконечником и промыв стерильным физиологическим раствором.
    7. Визуально осмотрите состояние черепа, чтобы убедиться, что он цел, за исключением двух небольших отверстий, которые были сделаны для предыдущей операции по введению вируса.
    8. Высушите область черепа и отметьте место удара ЧМТ в следующих координатах: 2,5 мм позади брегмы и 2 мм латерально от сагиттального шва справа (рис. 1В).
    9. Быстро извлеките мышь из стереотаксической рамки и поместите голову на буферную подушку под устройством TBI.
    10. Совместите наконечник ударного элемента с отмеченным местом удара.
    11. Поднимите металлическую колонну, потянув за привязанную нейлоновую нить на 15 см над головой мыши, а затем отпустите ее, позволив грузу свободно упасть на стержень датчика, который соприкасается с верхней частью черепа в месте ЧМТ. Не прикасайтесь к головке мыши при нанесении удара ЧМТ.
    12. Переместите мышь на нагревательное одеяло и положите его на спину, контролируя состояние дыхания.
    13. Как только мышь встанет из положения лежа на спине, поместите ее в индукционную камеру изофлурана на ~5 минут с 3% изофлураном, смешанным со 100% чистым кислородом со скоростью потока 1,5 л/мин.
    14. После того, как мышь будет полностью успокоена (т.е. медленная, но устойчивая частота дыхания примерно один цикл в 2 с, в сочетании с отсутствием рефлекса сжатия хвоста), повторите шаги 1.3.9-1.3.14, чтобы получить в общей сложности 10 ударов.
      ПРИМЕЧАНИЕ: В нашем исследовании было обнаружено, что десять воздействий ЧМТ индуцируют устойчивый фенотип с низкой смертностью мышей (данные еще не опубликованы). Параметры могут быть скорректированы для достижения различной степени тяжести черепно-мозговой травмы путем увеличения или уменьшения количества ударов и/или высоты, с которой сбрасывается груз. Все параметры подлежат утверждению местным IACUC.
    15. Осмотрите череп под хирургическим микроскопом и удалите мышь из исследования, если произошел перелом черепа.
    16. При фиктивной хирургии следуйте тем же процедурам, которые описаны выше, включая помещение животного под импактор, но без нанесения ударов ЧМТ.
    17. После того, как мышь выровняется из положения лежа на спине после 10-го удара ЧМТ, поместите ее в индукционную камеру изофлурана на ~5 минут. Затем выполните шаги 1.2.6-1.2.8, чтобы поместить головку мыши на стереотаксическую рамку для операции по имплантации краниального окна, описанной ниже.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1
Рисунок 1: Диаграммы для устройства ЧМТ, места воздействия ЧМТ и подготовки окна. (A) Оборудование для устройства для сброса веса TBI. 1: тумба, 2: кронштейн, 3: регулируемый зажим, 4: нейлоновая струна, 5: тоннель для сброса груза, 6: металлическая колонна (50 г), 7: ударный элемент, 8: буферная подушка. (B) Схема места инъекции вируса и удара ЧМТ с координатами 2,5 мм позади Bregma и 2 мм латеральн...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Регулируемые прецизионные кисти-аппликаторыПаркеллС379
Инсулиновый шприц BDБДNDC/HRI#08290-3284-385/16 дюйма x 31 ГБ
БетадинПердьюNDC67618-151-17В том числе 7,5% повидон-йода
БупренорфинФАРМАСЬЮТИКАЛНДЦ 42023-179-05
ЭтоналНаучный центр Фишера04355223ЕА75%
Отопительные приборыCWEМышь TC-1000Оснащен стереотаксическим инструментом и может использоваться во время хирургического вмешательства
Одеяло с подогревомCVS аптекаЕ12107Дополнительное нагревательное устройство и использоваться после операции
Лубрикантная офтальмологическая мазьПикетальНДЦ 46066-753-55
МаркерДеласкоСМП-БК
Москитные щипцыКаролинаТовар #:625314Нержавеющая сталь, изогнутая, 5 дюймов
Средство для депиляцииКорпорация McKessonН/ДNair Hair Aloe & Lanolin Лосьон для удаления волос
Обычные ножницы 1ЕвростатЕвростат ES5-300
Обычные ножницы 2Мировые прецизионные приборыNo 501759-G
солянойБиомирL19102411PR
Пружинные ножницы 1Мировые прецизионные приборыNo 91500-09Опрокидывайте прямо
Пружинные ножницы 2Мировые прецизионные приборыNo 91501-09Опрокидывайте прямо
Стереотаксическая платформаКОПФМодель 900LS
Хирургические щипцы 1НАУКИ ЭЛЕКТРОННОЙ МИКРОСКОПИИКатлог # 0508-5/45-POМодель 5/45, изогнутая
Хирургические щипцы 2НАУКИ ЭЛЕКТРОННОЙ МИКРОСКОПИИcatlog# 0103-5-POМодель 5, прямая
Хирургические щипцы 3НАУКИ ЭЛЕКТРОННОЙ МИКРОСКОПИИКошачий лог # 72912
Хирургические щипцы 4НАУКИ ЭЛЕКТРОННОЙ МИКРОСКОПИИКатлог # 0508-5/45-POМодель 5/45, изогнутая
Хирургическая лампаЛейкаLeica KL300 LED
Vetbond Тканевый клей3М Уход за животнымиНомер детали:014006

Больше статей

Модель мышистереотаксический аппаратобнажение черепананесение ударавысвобождение металлической колонныюстировка импакторакраниальное окнодвухфотонная микроскопияэкспрессия флуоресцентного белка