Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Иммуноокрашивание нейронов, обработанных агрегатами альфа-синуклеина

946 просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Panattoni, G., et al. Экзогенное введение связанных с микросомами агрегатов альфа-синуклеина в первичные нейроны в качестве мощной клеточной модели образования фибрилл. J. vis. Exp. (2018)

Это видео демонстрирует иммуноокрашивание нейронов, обработанных агрегатами альфа-синуклеина (αS). Сначала нейроны обрабатываются αS-агрегатами. Затем они фиксируются, проникают и обрабатываются блокирующим раствором. Добавляются первичные антитела, за которыми следуют флуоресцентно меченные вторичные антитела и ядерный краситель. Затем образец монтируется и рассматривается под микроскопом.

Протокол

1. Лечение нейронов

Примечание: Обработка была проведена в Отделе (DIV) 7. Все этапы проводятся под колпаком для клеточных культур в стерильных условиях. Пример плотности культуры нейронов коры головного мозга в DIV 7 показан на рисунке 1.

  1. Объединение ассоциированных микросомами агрегатов αS, полученных из спинного мозга трех различных больных трансгенных мышей, для получения раствора 1 мкг/мкл, с использованием оригинального гомогенизационного буфера [состоящего из 250 мМ сахарозы, 20 мМ HEPES (4-(2-гидроксиэтил)-1-пиперазинетансульфоновая кислота), 10 мМ KCl (хлорид калия), 1,5 мМ MgCl2 (хлорид магния), 2 мМ ЭДТА (этилендиаминтетрауксусная кислота), и 1x ингибиторы фосфатазы/протеазы] для разведения.
  2. Возьмите культуру нейронов на покровных стеклах поли-D-лизина в 24 луночных планшетах, содержащих среду (2% B27, 10x гентамицин и 2 мМ глутамина). Удалите 1/3 среды и аккуратно замените ее свежей средой, содержащей 2% B27, 1x гентамицин и 2 мМ глутамина.
  3. Добавьте 1 г объединенных микросом-ассоциированных агрегатов альфа-синуклеина (αS) в клеточную среду. Верните нейроны в инкубатор при температуре 37 °С.
  4. Каждые 3 дня в течение 1 недели добавляйте 1/3 свежей среды. Не заменяйте носитель. Просто добавьте его.
  5. Через 1 неделю лечения удалите 1/3 среды и аккуратно замените ее свежей средой, содержащей 2% B27, 10 мкг/мл гентамицина и 2 мМ глутамина. Повторяйте каждые 3 дня.
  6. Зафиксируйте нейроны через 2 недели лечения (DIV 21).

2. Иммунофлюоресценция

  1. Зафиксируйте нейроны с помощью 2% параформальдегида в фосфатно-солевом буфере (PBS) 1x и 5% растворе сахарозы в течение 15 минут при комнатной температуре (RT) без встряхивания под химическим вытяжным шкафом.
  2. Удалите фиксирующий раствор. Кратко вымыть PBS 1x, 3 раза.
    заметка: Выполняйте все этапы стирки аккуратно, потому что первичные нейроны не прилипают прочно к полилизиновым покровным стеклам.
  3. Пермеабилизируйте нейроны 0,3% неионогенного поверхностно-активного вещества в PBS 1x в течение 5 мин при ЛТ.
  4. Коротко вымыть PBS 1x, 3 раза.
  5. Инкубируйте нейроны с 3% фетальной сывороткой крупного рогатого скота (FBS) в PBS 1x в течение 30 минут в режиме РТ для блокирования неспецифических сайтов связывания на орбитальном шейкере.
  6. Инкубировать нейроны с соответствующими первичными антителами, растворенными в 3% FBS в PBS 1x, O/N при 4 °C на орбитальном шейкере.
    Примечание: использовали антитела syn303 (1:1000), мышиного αS (1:200), pser129-αS (1:1000) и Tau (1:1000).
  7. Удалите раствор антитела и кратковременно смойте PBS 1x, 3 раза.
  8. Инкубируйте нейроны с соответствующими флуоресцентными вторичными антителами, растворенными в 3% FBS в PBS в течение 1 ч при ЛТ в темноте на орбитальном шейкере.
  9. Удалите раствор антитела и кратковременно смойте PBS 1x, 3 раза.
  10. Окрашивание нейронов раствором DAPI (4',6-диамидино-2-фенилиндол) (0,1 мкг/мл в PBS 1x) в течение 15 мин при ЛТ в темноте на орбитальном шейкере.
  11. Удалите раствор антитела и кратковременно смойте PBS 1x, 3 раза.
  12. Закрепите покровные стекла на слайде с помощью монтажной среды, предотвращающей выцветание.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1
Рисунок 1. Культуры корковых нейронов. Репрезентативное изображение, показывающее плотность культур корковых нейронов в DIV 7. Изображения были получены с помощью микроскопа с инвертированным светом и объективом 10X. Масштабная линейка = 100 мкм.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
сахарозаСигма-Олдрич84097-1КГ
ХепесСигма-ОлдричH0887-100МЛ1М рН=7-7,6
ЭдтаСигма-Олдрич0390-100млрН=8 0,5 М
Хлорид магнияСигма-ОлдричМ8266-100Г
углекислый натрийСигма-ОлдричС7795-500Г
Бикарбонат натрияСигма-ОлдричС5761-500Г
метанолСигма-Олдрич322415-6X1L
KClСигма-ОлдричП9541-500Г
cOmplete MiniРош11836170001ингибитор протеазы
ФосСтопРош4906837001Ингибитор фосфатазы
Набор для анализа белка BCAЕвроклонEMPO14500
Criterion TGX 4-20% без пятен, 18 лунокБиорад5678094
Поддерживаемая нитроцеллюлозная мембранаБиорад16200970,2 мкм
Блокатор блоттингового классаБиорад1706404Обезжиренное сухое молоко
Хемилюминесцентная подложка SuperSignal West PicoТермо Фишер НаучныйNo 34077 (Английский
азотная кислотаСигма-Олдрич100441100065%
Стеклянные покровные стеклаТермо Фишер Научный1014355118НР118 мм х
Поли-D-лизинСигма-ОлдричП7280
Сбалансированный солевой раствор ХэнкаТермо Фишер Научный14170-500 мл
Пенициллин/стрептомицинТермо Фишер Научный1514012210 000 Ед/мл, 100 мл
Модифицированный Eagle's Medium от DulbeccoТермо Фишер НаучныйD5796-500 мл
Трипсин-ЭДТАТермо Фишер Научный154000540,50%
Дополнение B27Термо Фишер Научный17504044В 50 раз
ГлутамаксТермо Фишер Научный35050-038 (Английский)в 100 раз
ДНКазаСигма-ОлдричД5025
Фетальная бычья сывороткаЕвроклонEC50182L
глутаматСигма-Олдрич1446600-1Г
ГентамицинТермо Фишер Научный1571010 мг/мл
Нейробазальная средаТермо Фишер Научный10888-022
Цитозин арабинозид (AraC)Сигма-ОлдричC3350000
Монтажная среда VECTASHIELD с защитой от выцветанияЛаборатория «ВекторН-1000
DAPIТермо Фишер НаучныйNo 62247
Ротор 90 TiБэкменН/ДРотор ультрацентрифуги
Ультрацентрифуга Optima L-90KБэкменН/Д
Антитело Syn-1, клон 42BD Biosciences610786Баланс белой зоны защиты от мыши: 1:5000
Антитело к Syn303Биолегенда824301антимышь ЕСЛИ: 1:1000
Антитела к тауСинаптические системы314 002антикроличья ПЧ: 1:10 000
Антитело pser129-αSПодарок от Фудзивара и др., ссылка 19Противозаячья ВБ: 1:5000
Антитело pser129-αSАбкамАБ51253антикроличий ЕСЛИ: 1:1000
Мышь αS (D37A6) XPКлеточная сигнализацияNo 4179антикроличий ПЧ 1:200
Alexa fluor 555-конъюгированное антитело против кроликаТермо Фишер НаучныйА27039
Alexa fluor 488-конъюгированное антитело против мышиТермо Фишер НаучныйА-11029
Микросон XL-2000МисониксУльтразвуковой аппарат
Ultra Bottles (Oakridge Bottles), печатная плата, 16x76 мм, сборка, крышка Noryl, тип BeckmanНаучная служба ЕСС4484Ультрацентрифужные пробирки
Микроскоп инвертированного света AXIO ObserverЦейссН/Д
Лазерный сканирующий конфокальный микроскоп TCS SP2ЛейкаН/Д
Инвертированный эпифлуоресцентный микроскопКомпания NikonН/Д
Тритон х-100Сигма-ОлдричХ100-500МЛНеионогенное поверхностно-активное вещество
) »

Теги

DAPI