$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Все процедуры, связанные с образцами животных, были рассмотрены и одобрены соответствующей экспертизой по этике животных.
1. Приготовление реагентов
- Буфер для пищеварения (1 мл на полушарие): Растворите стандартизированную смесь очищенных пищеварительных ферментов, например, либеразы с низкой концентрацией термолизина (TL) до концентрации 2U/мл в сбалансированном солевом растворе Hanks Balanced Salt Solution (HBSS), содержащем кальций (Ca) и магний (Mg).
- Промывочный буфер с ДНКазой: Растворите ДНКазу I до концентрации 666 ЕД/мл в свободном HBSS (Ca/Mg (кальций/магний)), содержащем 10% эмбриональной сыворотки теленка (FCS).
- Промывочный буфер без ДНКазы: HBSS (Ca/Mg free), содержащий 10% FCS.
- Среда с градиентом плотности (5 мл на полусферу): приготовить исходную изотоническую среду с градиентом плотности (SIP; 100%) путем смешивания девяти частей среды градиента плотности с одной частью 1,5 М хлорида натрия. Разбавьте SIP до 25% плотности путем добавления соответствующего объема HBSS (без Ca/Mg), содержащего 3% FCS.
2. Диссоциация мозговой ткани на одиночные клеточные суспензии
- Аккуратно удалите ствол мозга и мозжечок чистым лезвием бритвы. Используйте чистое лезвие бритвы, чтобы обеспечить кровоизлияние мозга и разрежьте каждое полушарие вдоль корональной плоскости на три части примерно одинакового размера.
- Измельчите рассеченную ткань каждого полушария через клеточное фильтр 100 мкм с помощью плунжера шприца объемом 5 мл. Непрерывно промывайте сетчатое фильтр ледяным HBSS (+Ca/Mg). Гомогенизированные образцы хранят на льду.
- Центрифугируйте при температуре 286 x g и 4°C в течение 5 минут, осторожно выбросьте надосадочную жидкость. Повторно суспендируйте гранулу в 1 мл буфера для разложения и переложите суспензию в пробирку объемом 2 мл. Инкубировать суспензию при медленном непрерывном вращении при температуре 37 °C в течение 1 часа.
- Просейте клеточную суспензию через клеточное ситечко 70 мкм и тщательно промойте 3 мл промывочного буфера, содержащего ДНКазу, а затем 15 мл промывочного буфера, не содержащего ДНКазы. Центрифугируйте при температуре 286 x g и 18 °C в течение 5 минут и выбросьте надосадочную жидкость. заметка: Использование ДНКазы устраняет ДНК-слизь, вызванную лизисом клеток, что может привести к агрегации клеток, ставя под угрозу выживание клеток.
3. Центрифугирование с градиентом плотности для удаления миелина и клеточного мусора
- Повторно суспендируйте клеточную гранулу в 5 мл среды с градиентом плотности 25% и пипеткой поместите суспензию в пробирку объемом 15 мл. Тщательно перемешайте с помощью повторяющегося и осторожного пипетирования, не допуская образования пузырьков. заметка: Для предотвращения комкования клеток следует использовать среду с градиентом плотности.
- Центрифугируйте при 521 x g и 18 °C в течение 20 мин. Используйте самый низкий профиль ускорения ротора и дайте ротору остановиться без тормоза. Аккуратно извлеките пробирки из центрифуги, не встряхивая. Осторожно аспирируйте миелиновую оболочку и надосадочную жидкость, сохраняя клеточную гранулу на дне пробирки. заметка: Обязательно удалите всю миелиновую оболочку, так как любые остатки нарушят анализ проточной цитометрии.
- Повторно суспендируйте гранулу в 10 мл промывочного буфера без ДНКазы и поместите суспензию пипеткой в новую пробирку объемом 15 мл. заметка: Этот этап промывки имеет решающее значение, поскольку достаточное удаление градиентной среды значительно влияет на количество и качество конечного образца клетки.
- Снова центрифугируйте при 286 x g и 10 °C в течение 5 минут и выбросьте надосадочную жидкость. Ресуспендируйте клетки в 100 мкл холодного промывочного буфера и определите количество и жизнеспособность клеток путем исключения трипанового синего в гемоцитометре. Храните образцы при температуре 4 °C и в дальнейшем быстро обрабатывайте их.