Методическая статья

Создание мышиной модели фокальной демиелинизации с помощью двухточечной инъекции лизофосфатидилхолина

870 просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Pang, X., et al. Стабильно установленная двухточечная модель инъекции лизофосфатидилхолин-индуцированной фокальной демиелинизации мышам. J. Vis. Exp. (2022)

В этом видео демонстрируется создание мышиной модели фокальной демиелинизации с использованием двухточечной инъекции лизофосфатидилхолина (ЛПК). Обнажается череп мыши, находящейся под наркозом. Определяются координаты закачки, и просверливается отверстие для обеспечения возможности закачки LPC на целевых участках. LPC вызывает фокальную демиелинизацию нейронов через воспаление, в то время как двухточечная инъекция обеспечивает его устойчивость.

Протокол

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Приготовление раствора лизофосфатидилхолина (ЛПК)

  1. Растворите 25 мг порошка LPC (см. Таблицу материалов) с 250 μL смешанного раствора хлороформа и метанола (1:1) до получения 10% раствора LPC и переложите его в центрифужную пробирку объемом 500 μL.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Если LPC не растворен полностью, поместите центрифужную трубку в ультразвуковой очиститель и ультразвукируйте на частоте 40 кГц в течение ~1 часа, чтобы получить однородный раствор.
  2. Разделите раствор на 3 μл/пробирку и храните при температуре −80 °C.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Раствор можно хранить ~2 года.
  3. Перед операцией разбавьте раствор (шаг 1.2) 27 мкл 0,9% раствора хлорида натрия (NaCl) и подержите раствор на водяной бане постоянной температуры при температуре 37 °C.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Приготовьте раствор непосредственно перед началом инъекции.

2. Подготовка к операции

  1. Используйте иглу 32 G (2 дюйма) для подключения к шприцу объемом 5 мкл (см. Таблицу материалов). Следите за тем, чтобы микролитровый шприц не был заблокирован. Наберите 5 μл раствора LPC для приготовления инъекции.
  2. Обезболивайте мышь в индукционной камере, подключенной к изофлурановому вапорайзеру с 3% изофлураном, смешанным со 100% кислородом со скоростью около 0,3 л/мин.
  3. Подтвердите глубину анестезии отсутствием рефлекса пальцев ног, пока дыхание ровное.
  4. Выбрейте голову мыши между ушами с помощью электробритвы. Наносите смазывающие глазные капли, чтобы предотвратить сухость роговицы во время процедуры.
  5. Затем поместите мышь в стереотаксическую рамку (см. Таблицу материалов) тыльной стороной вверх и закрепите голову носовым конусом и зубным зажимом. Поддерживайте анестезию с помощью 1,2%-1,6% изофлурана через нос.
    заметка: Концентрацию изофлурана можно регулировать в зависимости от состояния дыхания мышей.

3. Хирургическая процедура

ПРИМЕЧАНИЕ: Животные размещаются на грелке во время всех процедур.

  1. Закрепите мышь на стереотаксическом аппарате с помощью двусторонних ушных вкладышей. Убедитесь, что ушные планки находятся на одном уровне, а голова находится горизонтально и устойчиво.
  2. Продезинфицируйте кожу на голове, протерев ее несколько раз йодофором с последующим обливанием спиртом круговыми движениями. Затем с помощью скальпеля вырезают небольшой разрез около 1,5 см по средней линии кожи головы, чтобы обнажить череп.
  3. Протрите череп ватным тампоном, смоченным в 1% перекиси водорода, пока не обнажатся брегма, лямбда и задний родничок. Поместите шприц на стереотаксический аппарат.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Используйте перекись водорода с осторожностью и избегайте прикосновения к окружающим тканям.
  4. Обеспечьте горизонтальное положение головы животного (как спереди и сзади, так и слева и справа).
    1. Отрегулируйте ручку оси Z стереотаксической рамы так, чтобы кончик иглы и череп просто соприкасались, не изгибаясь, затем измерьте координату оси Z. Проверьте Z-координаты брегмы и заднего родничка.
    2. Отрегулируйте ушную планку так, чтобы разница между Z-координатами брегмы и заднего родничка составляла не более 0,02 мм. Затем следуйте тому же методу для измерения Z-координат соответствующих позиций слева и справа от средней линии. Отрегулируйте ушную планку так, чтобы левая и правая панели находились на одном уровне.
  5. Найдите мозолистое тело. Установите начало координат XYZ в bregma.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Первое место инъекции находится на расстоянии 1,0 мм латеральнее брегмы, на 2,4 мм в глубину и на 1,1 мм впереди. Второе место инъекции находится на 1,0 мм латеральнее брегмы, на 2,1 мм в глубину и на 0,6 мм впереди. Например, координата брегмы равна (0,0,0). Измерьте координату Z соответствующего местоположения, отмеченного как (-1, 1.1, X) и (-1, 0.6, Y). Можно определить, что координата первого места инъекции мозолистого тела равна (-1, 1.1, −[X + 2.4]), а второго места инъекции равна (-1, 0.6, −[Y + 2.1]).
  6. Как только место инъекции будет определено, сделайте отметку стерильным маркером на черепе и запишите координаты.
  7. Аккуратно просверлите отмеченное место сверлом для черепа (см. Таблицу материалов). Следите за тем, чтобы избежать кровотечения.
  8. Медленно переместите иглу в заданные координаты и начните инъекцию. Для индуцирования демиелинизации мозолистого тела вводят 2 мкл раствора ЛПХ (шаг 1.2) в каждое место инъекции (шаг 3.5.) со скоростью 0,4 мкл/мин.
  9. После инъекции удерживайте иглу в каждом месте еще 10 мин.<бр/> ПРИМЕЧАНИЕ: Следите за тем, чтобы интервал двух инъекций составлял не более 20 минут.
  10. Наложите шов на кожу 4-0 и подождите, пока животное проснется в течение 10 мин. После операции вводите анальгетики в соответствии с правилами ухода за животными в учреждении.
    Примечание: Рекомендуемое время для эвтаназии может быть определено в зависимости от цели эксперимента.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
L-α-лизофосфатидилхолин из яичного желткаСигма-ОлдричЛ4129-25МГ
32ГАМИЛЬТОН7762-05
10 мкл шприцаГАМИЛЬТОН80014
Высокоскоростное сверло для черепаstrong,koreastrong204
ДрельHager & Meisinger, ГерманияREF 500 104 001 001 005
Matrx Аппарат искусственной вентиляции легких при анеатезии у животныхМИДМАРКVMR
Портативный стереотаксический прибор для мышиНаграда68507
МикрошприцНаградаКДС ЛЕГАТО 130
ИзофлуранВЕТИЗИ
ШовФУСУНФАРМА20152021225
Взрослые мыши-самцы C57BL/6 самцов и самокХунань SJA Laboratory Animal Co. Ltd
Игла калибра

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи