Антитела окрашивание Drosophila Куколки могут повысить генетический анализ взрослых брюшной развития генетики. Представляем вашему вниманию протокол вскрытия, фиксации и окрашивания антител постановочных Drosophila Куколки живота.
Методическая статья
Антитела окрашивание Drosophila Куколки могут повысить генетический анализ взрослых брюшной развития генетики. Представляем вашему вниманию протокол вскрытия, фиксации и окрашивания антител постановочных Drosophila Куколки живота.
Живот дрозофилы куколки является признанным модельной системы для изучения морфогенеза эпителиальных и развитие половой диморфизм морфологии 1-3. Во время окукливания, который охватывает около 96 часов (при 25 ° С), пролиферирующие популяций имагинальных клетки заменить личиночной эпидермиса генерировать взрослых брюшных сегментов. Эти имагинальных клеток, родившихся в период эмбриогенеза, существует как боковые пары histoblast гнезда в каждом брюшной сегмент личинок. Четыре пары histoblast гнезда приводят к взрослой спинной кутикулы (передний и задний спинной гнезда), вентральной кутикулы (вентральной гнезда) и дыхальца, связанные с каждым сегментом (дыхало гнезда) 4. По puparation, эти диплоидных клеток (отличить по размеру от больших полиплоидных личиночных клеток эпидермиса-МИК) начинают стереотипных процесс пролиферации, миграции и замена МИК. Различные молекулярные и генетические инструменты могут быть использованы для исследования вклада генетических путей, участвующих в морфогенезе взрослых живота. Окончательный фенотипы взрослых, как правило, проанализированы следующие вскрытия брюшной взрослого кутикулу. Тем не менее, исследование основных молекулярных процессов требует иммуногистохимического анализа куколки эпителия, которые представляют уникальные проблемы. Временно динамического формообразования и взаимодействия двух различных популяций эпителия (личиночные и имагинальные) порождают хрупкой ткани склонны к чрезмерной потере клетки во время вскрытия и последующей обработки. Мы разработали методы вскрытия, фиксации, монтажа и визуализации abdominem дрозофилы куколки эпителия для иммуногистохимического исследования, которые создают постоянное высокое качество образцов подходит для конфокальной или стандартной флуоресцентной микроскопии.
1. День 1
Прежде чем вы начнете:
Здоровой популяции мух следует поддерживать с помощью стандартных протоколов культивирования: удалите взрослых из бутылок или флаконов после 3-4 дней яйцо лежало и позволит продолжить развитие при постоянной температуре до блуждающих 3-го возраста личинки инициировать pupariation. Личиночной / куколки переход отмечен образованием предкуколок (считается 0 часов после пупария образование-ФПА). Неподвижные куколки отличаются от старых куколки их белую окраску и из личинки, которые еще не начали pupariation их продолговатые, округлые формы и выпячивание передней дыхальца.
Вам понадобятся:
Коллекция, культивирования и постановка куколки
2. День 2: Dissection, фиксация и первичный инкубации антитела
Прежде чем вы начнете:
Вам понадобятся:
Рассечение
Уборка, фиксация и первичный инкубации антитела
3. День 3: Среднее инкубации антитела, монтажа и обработки изображений
Прежде чем вы начнете:
Вам понадобятся:
Вторичные инкубации антитела и монтаж:
4. Представитель результаты:
Образцы, приготовленные с помощью этого протокола сохраняют валового морфологии взрослых живота. Изображение стеки могут проецироваться для создания двумерного изображения или 3-D рендеринга могут быть применены для исследования брюшной полости топологии.

Рисунок 1. Сегментация продуктов генов у дрозофилы куколки Wingless белка и Engrailed выражение (En-GAL4: UAS-GFP). Визуализировались в 26 час после пупария образования (НПФ) с помощью мыши анти-Wg (4D4: Айова Гибридома банк) и анти-GFP. 10-кратным увеличением, передняя остается и спинной вверх. Nucleii были контрастно с DAPI.
Стеки около 50 изображений (ΔZ между среза 2,5 мкм) были спроектированы.
Методы, представленные в этом видео можно использовать для подготовки дрозофилы куколки из различных временных точках развития. Куколки обрабатываются в течение 24 часов APF до 32 часов АПФ наиболее подвержены потерю клеток из эпителия. Использования моющих средств (например, тритон Х-100 и Твин-20) во время длительного инкубационного шаги увеличивает вероятность потерю клеток, и поэтому не рекомендуется. Скорее, deoxycholic кислота используется в качестве моющего средства на первоначальном этапе фиксации. Все последующие шаги выполняются в 1X PBS без моющего средства. Кроме того, покачиваясь образцов при длительном шаги инкубации увеличивает потерю клеток и их следует избегать.
Образцы могут быть отображены с помощью конфокальной микроскопии. Тем не менее, дрозофилы куколки обрабатывается, как описано может также быть отображены с помощью структурированной системы микроскопии освещения уступая качество изображения сравнимо с конфокальной техники.
Нет конфликта интересов объявлены.
Эта работа была поддержана грантом Национального научного фонда.