Методическая статья

Матричная модель опухолевой инвазии с использованием кокультуры глиобластомы микроглии

898 просмотров

8 июля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Coniglio, S., et al. Кокультуральные анализы для изучения макрофагов и микроглии при инвазии глиобластомы. J. Vis. Exp. (2016)

В этом видео клетки глиобластомы и микроглии смешиваются с раствором полимерной матрицы и переносятся во вставку из пористой камеры, где образуется гель, встраивающий клетки. Микроглия стимулирует миграцию клеток глиобластомы через пористую вставку, имитируя инвазию опухолевых клеток в окружающие ткани, после чего клетки фиксируются и подготавливаются к дальнейшему анализу.

Протокол

1. Флуоресцентное мечение клеток

ПРИМЕЧАНИЕ: Помечайте клеточные линии глиобластомы и микроглию флуоресцентными красителями 9. В качестве альтернативы можно создать клеточные линии, которые конститутивно экспрессируют флуоресцентные белки, такие как GFP/RFP.

  1. Пластинчатые клетки на 6 лунках планшета таковы, что они будут сливаться на 70 - 80% в день окрашивания. Для клеточной линии мышиной глиобластомы GL261 и клеточной линии глиобластомы человека U87, пластину 1 x 106} и 1,5 x 106} клеток, соответственно, на чашке 6 см за 24 часа до окрашивания.
  2. Приготовьте флуоресцентный раствор красителя для клеток в ДМСО (диметилсульфоксиде) и добавьте 5 мкМ красителя в среду, либо в среду Мемориального института Розуэлл Парк (RPMI), либо в свободную среду с макрофагальной сывороткой (MSFM), в вихревую лунку.
  3. Инкубируйте клетки с красителем в течение 30 мин при 37 °C и 5% CO2.
  4. Удалите среду, содержащую краситель, и добавьте в клетки свежую среду (RPMI или MSFM).
  5. Инкубируйте клетки в течение 30 минут. Примечание: Теперь клетки окрашены и готовы к использованию в эксперименте.

2. Инвазионный анализ "3D"-встраивание глиомы и макрофагов/микроглии в матрицу

  1. Разморозьте матричную смесь при 4 °C на ночь. Все дальнейшие манипуляции выполняйте с помощью матрицы на льду в капоте.
  2. Приготовьте концентрацию матрицы 10 мг/мл в среде (MSFM или RPMI) с 0,3% BSA на льду.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Исходная концентрация матрицы обычно составляет около 15 мг/мл.
  3. Чтобы подготовить клетки (помеченные на шаге 1) к суспензии в матрице, удалите среды из клеток с помощью аспирации. Вымойте клетки на чашке с 2 мМ ЭДТА (этилендиамина тетрауксусной кислоты)/PBS (фосфатно-солевой буфер). Добавьте в клетки 500 мкл 2 мМ ЭДТА/ПБС и инкубируйте в течение 5 - 10 мин при 37 °C и 5% CO2.
  4. Ресуспендируйте клетки в 5 мл среды, содержащей 0,3% БСА.
  5. Центрифуга в течение 5 мин при 120 x g.
  6. Аспирируйте надосадочную жидкость из гранулы. Ресуспендируйте гранулы в среде/0,3% БСА таким образом, чтобы концентрация клеток была равна 1 x 106 клеток/мл. Используйте гемоцитометр для подсчета клеток.
  7. Добавьте 1,5 x 105 клеток GL261 (в 150 μл) + 5 x 104 клеток микроглии (в 50 μл) в пробирку с микрофугой объемом 1,5 мл. Добавьте 2 x 105 клеток GL261 (200 μl) в отдельную микропробирку объемом 1,5 мл.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Клетки GL261 сами по себе без микроглии служат контролем.
  8. Вращайте клетки в микрофуге в течение 5 мин при 120 x g.
  9. Ресуспендируйте клетки в холодной матрице объемом 200 мкл на льду.
  10. Нанесите пластину 50 мкл (50 000 ячеек) на центр верхнего отсека вставки с размером пор 8 мкМ.
  11. Инкубировать при 37 °C в течение 30 минут, чтобы произошла полимеризация.
  12. Добавьте 200 мкл бессывороточной среды в верхнюю камеру и 700 мкл сывороткосодержащей среды для роста клеток в нижнюю лунку.
  13. Инкубировать при 37 °C, 5% CO2 в течение 48 часов.
  14. После инкубации удалите клетки из верхней части камеры с помощью щадящей аспирации и зафиксируйте камеры, поместив их в 3,7% формальдегид в PBS. Дайте камерам оставаться в фиксаторе в течение 15 минут при комнатной температуре (или в течение ночи при 4 °C). Удалите фиксатор с помощью щадящей аспирации и замените на 500 мкл 1x PBS. Перейдите к разделу 4 для анализа изображений.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1
Рисунок 1: Схема двух различных протоколов анализа микроглии/макрофаг-стимулированной инвазии клеток глиобластомы. На верхней панели показан анализ инвазии в матричной камере с предварительно нанесенным покрытием. Нижняя панель иллюстрирует анализ инвазии 3D-матрицы.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Инвазионная камера Corning BioCoat Matrigel: с матрицей BD MatrigelКорнинг/Фишер СайентификКат: 354481
Свободная среда для макрофагальной сыворотки (MSFM) (500 мл)Технологии жизни12065-074
Краситель CellTracker Red CMTPXТехнологии жизни/Молекулярные зондыC34552
Зеленый краситель CellTracker CMFDAТехнологии жизни/Молекулярные зондыС2925
Клеточная линия GL261Национальный институт рака (NCI)
Клеточная линия THP-1Американская коллекция культур типов тканейATCC TIB-202
RPMI 1640 Medium (500 мл)Life Technologies/Gibco11875-093
Раствор формальдегидаСигма ОлдричФ1635
Вставки для клеточных культур Corning Transwell с поликарбонатной мембраной (8 мкМ пор) 48 в упаковке. КорнингCLS3422
Cultrex 3-D Culture Matrix Экстракт базальной мембраны с пониженным фактором роста, PathClearТревиген3445-005-01
Фетальная сыворотка теленка (FBS)Технологии жизниКот: 10500064
Бычий сывороточный альбумин, фракция V, обработанный от теплового шокаFisherscientificБП1600-100
0.5M EDTAThermoFisher Scientific15575-020

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи