Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Количественная оценка сомах ганглиозных клеток сетчатки после глазной гипертензии, вызванной прижиганием

623 просмотров

28 апреля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Lani-Louzada, R., et al. Полное прижигание лимбального сосудистого сплетения при хирургически индуцированной глаукоме у грызунов. J. Vis. Exp. (2022).

В этом видео демонстрируется количественная оценка ганглиозных клеток сетчатки из химически фиксированной сетчатки крысы, подвергнутой полному круговому прижиганию лимбального сосудистого сплетения. Процесс включает в себя пермеабилизацию, окрашивание антител и ядерное контрокрашивание с последующей визуализацией под эпифлуоресцентным микроскопом для оценки влияния повышенного внутриглазного давления на жизнеспособность ганглиозных клеток сетчатки.

Протокол

Все процедуры, связанные с образцами животных, были рассмотрены и одобрены соответствующим комитетом по этической экспертизе животных.

1. Количественная оценка сомы ганглиозных клеток сетчатки

ПРИМЕЧАНИЕ: Следующая процедура предназначена для количественного определения ром RGC, основанной на иммуногистохимическом окрашивании плоских массивов сетчатки антителом против белка 3A (Brn3a), специфичного для мозга гомеобокса/домена POU.

  1. Перенесите изолированную сетчатку в 24-луночный культуральный планшет (по одной сетчатке на лунку), содержащий 1 мл 1x PBS, и держите внутреннюю сетчатку обращенной вверх.
  2. Промывайте ткань 3 раза в течение 10 минут неионогенным поверхностно-активным веществом 0,5%, разведенным в 1x PBS (0,3 мл). Затем осторожно встряхните ткань в 5% бычьем сывороточном альбумине (BSA) в неионогенном поверхностно-активном веществе 2% и 1x PBS (блокирующий раствор; 0,25 мл) в течение 60 минут при комнатной температуре.
  3. На этапе 1.2 приготовьте раствор первичного антитела Brn3a, разбавив 1:200 в неионогенном поверхностно-активном веществе 0,5% и 1x PBS плюс 5% BSA, и храните его при температуре 4 °C.
  4. После 60 мин блокировки тканей инкубируйте сетчатку в 0,2 мл раствора первичного антитела при 4 °C в течение 72 ч с легким встряхиванием.
  5. Промойте ткань 3 раза в течение 10 минут с помощью 1x PBS, затем инкубируйте ткань в течение 2 часов при комнатной температуре в 0,2 мл раствора вторичного антитела, разведенного 1:750 в 1x PBS плюс 5% BSA.
  6. Далее инкубируют ткань в течение 10 мин в ядерном растворе противокрасителя для окрашивания флуоресцентных ядер. Завершите иммуногистохимическое исследование заключительным этапом промывания 1x PBS (0,3 мл), повторенным 3x.
  7. Перенесите сетчатку с помощью двух маленьких кистей на предметные стекла для стеклянного микроскопа, сохраняя стекловидную сторону вверх. Расположите дорсальный квадрант сетчатки вверх на предметных стеклах микроскопа. Сделайте еще два радиальных разреза по направлению к диску зрительного нерва, чтобы разграничить остальные 3 квадранта (носовой, вентральный и височный).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Размеры разреза не фиксированы. Они не должны быть слишком короткими, что препятствует эффективному уплощению сетчатки на предметном стекле, и не должны быть слишком длинными, чтобы они достигали отверстия зрительного нерва и полностью отделяли отграниченный сектор сетчатки от остальной ткани.
  8. Наконец, нанесите 0,2 мл антивыцветающего монтажного средства на стеклянную покровную крышку и поместите ее на плоскую сетчатку для микроскопического анализа тканей. Чтобы оценить плотность RGC, исследуйте плоские крепления под конфокальным эпифлуоресцентным микроскопом с объективом 40x/1.3.
  9. Для каждого квадранта сетчатки сделайте восемь фотографий: две из центральной сетчатки (~0,9 мм от диска зрительного нерва), три из средней части сетчатки (~2,0 мм от диска зрительного нерва) и три из периферической сетчатки (~3,7 мм от диска зрительного нерва), всего 32 фотографии на сетчатку. Используйте программное обеспечение FIJI для подсчета Brn3a-положительных клеток и оценки средней плотности клеток.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

style='border-left-style:none;border-top-style:none;width:323pt;'>Конфокальная эпифлуоресценция microscope
Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Dako North AmericaS3023Antifade mounting medium
LSM 510 MetaCarl Zeiss<
Моноклональная мышь IgG1 anti-Brn3aMilliporeSigmaMAB-1585Brn3a первичный раствор
TO-PRO-3Thermo Fisher ScientificT3605Far red-fluorescent nuclear counterstain; излучение на длине волны 661 нм
Triton X-100Sigma-Aldrich9036-19-5Non-ion-surfactant
IgG-ослиное антитело против мыши + Alexa Fluor 555Thermo Fisher ScientificA31570Вторичный раствор
DAPIThermo Fisher Scientific28718-90-3diamidino-2-phenylindole; синее флуоресцентное ядерное противопятно; излучение при 452±3 нм
<td style='border-top-style:none;height:15.5pt;width:171pt;'>DAKOtd style='border-left-style:none;border-top-style:none;width:113pt;'>-антитела антител

Теги

лимбальное сосудистое сплетениевнутриглазное давлениераствор для пермеабилизациипервичные антителавторичные антителаконтрастирование ядерэпифлуоресцентный микроскопколичественный анализ сетчатки