1. Посев эндотелиальных клеток
1. Получите первичные культуры RBMEC от взрослых крыс Sprague Dawley (или получите их в коммерческих целях).
2. Культивируйте RBMECs в чашках Петри, покрытых 100 см фибронектином (50 мкг/мл), используя среду для роста эндотелиальных клеток мозга крысы. Меняйте среду каждые два дня до тех пор, пока не будет достигнуто слияние.
3. По достижении 80-90% конфлюенции аккуратно промойте клетки в 5 мл фосфатно-солевого буфера (PBS) путем перемешивания. Затем клетки отделяют путем воздействия на них 1 мл теплого 0,25% раствора трипсин-этилендиаминтетрауксусной кислоты (ЭДТА), уравновешенного до 37 °C.
4. Инкубируйте клетки при температуре 37 °C в течение 2-5 минут, пока клетки не отделятся и не рассеются. ПРИМЕЧАНИЕ: Постучите по чашке для культивирования, чтобы отделить клетки. Рассмотрите клетки под микроскопом, чтобы убедиться в полном отрыве клеток от поверхности чашки.
5. Добавьте 5 мл готового средства в чашку Петри для того, чтобы нейтрализовать трипсин. Выведите пипетку из среды, содержащей отделенные клетки, и соберите ее в центрифужную пробирку объемом 15 мл.
6. Центрифугируйте среду, содержащую эндотелиальные клетки, при 220 x g в течение 5 мин.
7. Аспирируйте надосадочную жидкость и сохраняйте гранулы, содержащие клетки. Суспензируйте гранулу в 3-5 мл свежей среды для роста эндотелиальных клеток мозга крысы, осторожно перемешивая ее вверх и вниз пипеткой. Затем клетки будут подсчитаны с помощью автоматического счетчика клеток или гемоцитометра.
8. Перенесите клеточную суспензию в предварительно покрытую фибронектином (50 мкг/мл) 8-луночную стерильную камерную систему предметного стекла, 0,7 кв. см/лунку с плотностью затравки в пределах 10 000-15 000 клеток на лунку. Выращивайте клетки при температуре 37 °C до тех пор, пока не будет достигнуто слияние ПРИМЕЧАНИЕ: Для проведения вестерн-блоттинга или других экспериментов клетки могут быть выращены в 10-сантиметровых чашках для клеточных культур или специальных чашках в соответствии с требованиями эксперимента.
2. Кислородная и глюкозная депривация-реоксигенация в модели in vitro
1. Используйте систему культивирования клеток гипоксии для изучения влияния OGD-R на RBMEC (см. Рисунок 1). Настройте и откалибруйте систему культивирования клеток гипоксии перед началом эксперимента в соответствии с инструкциями производителя.
2. Снимите предметные стекла сливающейся камеры (шаг 1.8) с инкубатора при температуре 37 °C. Замените всю среду в предметном стекле камеры на дезоксигенированную, не содержащую глюкозы, модифицированную среду Дульбекко (DMEM) и поместите ее в камеру гипоксии с 95% азотом и 5% углекислым газом на 2 часа при 37 °C, чтобы представить состояние OGD.
3. Переместите клетки обратно в инкубатор с 95% кислорода, 5% углекислого газа при температуре 37 °C и со свежей средой для эндотелиальных клеток мозга крысы и инкубируйте еще 1 час при температуре 37 °C.
ПРИМЕЧАНИЕ: Этот шаг представляет собой ситуацию реоксигенации.