Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Иммунофлуоресцентное окрашивание инфицированной фиброваскулярной ткани пациента, полученной от геля

876 просмотров

28 апреля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Gucciardo, E., et. al., Модель культуры тканей ex vivo для фиброваскулярных осложнений при пролиферативной диабетической ретинопатии. J. Vis. Exp. (2019)

В этом видео подробно описан протокол иммуноокрашивания для культур фиброваскулярной ткани ex vivo, встроенных в фибриновый гель. Это позволяет детально визуализировать сосудистые изменения, связанные с пролиферативной диабетической ретинопатией

Протокол

Все процедуры, связанные со сбором образцов, были выполнены в соответствии с рекомендациями института IRB.

1. Иммунофлуоресцентное окрашивание по всему монтированию

ПРИМЕЧАНИЕ: Этот протокол длится 5 дней и может быть прерван при ночной инкубации, если это показано. Ни в коем случае не допускайте высыхания фибриновых гелей. Все действия выполняются в RT, если не указано иное.

  1. Приготовьте следующие растворы перед началом протокола окрашивания.
    1. Раствор после фиксации: приготовьте раствор ацетона:метанола в соотношении 50:50, смешав равные количества ацетона и метанола (, например, 50 мл). Хранить при температуре -20 °C. Готовьте этот раствор не позднее чем за день до окрашивания. Этот раствор можно хранить при температуре -20 °C и использовать для последующих окрашиваний.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Приготовьте этот раствор в вытяжном шкафу, так как ацетон и метанол легко воспламеняются и опасны для здоровья.
    2. Блокирующий раствор: приготовить 15% фетальную бычью сыворотку (FBS), 0,3% раствор этоксилата октилфенолфета в PBS путем предварительного добавления 15% FBS в PBS. Добавьте октилфенолэтоксилат и перемешайте до растворения. Хранить при температуре 4 °C.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Этот раствор можно заранее приготовить в больших количествах, хранить в 15 мл аликвот при -20 °C и размораживать перед использованием в день начала окрашивания. Используйте свежеприготовленные или только что размороженные аликвоты для каждого протокола окрашивания.
    3. Моющий раствор: Приготовьте 1 л PBS с добавлением 0,45% октилфенолэтоксилата, добавив 4,5 мл октилфенолэтоксилата к 995,5 мл PBS. Перемешайте до полного растворения. Храните в RT.
  2. Осторожно снимите капли с пластины с помощью шпателя из нержавеющей стали с квадратными краями. Сначала отделите каплю от краев, прежде чем поднимать центр, и переложите в лунку из 12-луночного планшета, содержащую 1 мл PBS.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Выполняйте шаги после фиксации, промывки и блокировки в этом формате пластины.
  3. После этого зафиксируйте капли 1 мл ледяного раствора ацетона:метанола 50:50 на ~1 минуту (граница капель станет белой).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Выполняйте этот этап в вытяжном шкафу, так как ацетон и метанол опасны для здоровья.
  4. Ополосните 3–5 раз в 2 мл PBS (капли утонут в растворе PBS после завершения регидратации).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Избегайте прикосновения к каплям наконечником пипетки, так как после фиксации они прилипают к пластику. На протяжении всего протокола избегайте аспирации постфикса, антител, блокирующих и моющих растворов путем отсасывания, так как это может повредить или полностью уничтожить капли. Вместо этого наклоните планшет и осторожно удалите растворы с помощью пипетки объемом 500-5 000 мкл.
  5. Центрифугируйте блокирующий раствор в течение 15 минут при 21 000 x g и 4 °C для удаления мусора.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Раствор может быть аликвотирован в пробирках объемом 1,5 мл для центрифугирования. Неиспользованный раствор можно хранить при температуре 4 °C и использовать для всех последующих этапов.
  6. Инкубируйте капли в блокирующем растворе объемом 500 мкл в течение 2 ч при RT.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Чтобы уменьшить объем используемого блокирующего раствора, планшет можно наклонить на подставку и использовать всего 300 мкл раствора/капли.
  7. Приготовьте первичную смесь антител (не менее 30 мкл/капля) при соответствующем разведении в блокирующем растворе и центрифугируйте в течение 15 мин при 21 000 x g и 4 °C.
  8. Перенесите капли в 96-луночный планшет с круглым (U)-дном с помощью шпателя с закругленными краями и инкубируйте с не менее чем 30 мкл/каплей первичной смеси антител в течение ночи при 4 °C. {{TAG_ 99}}
  9. На следующий день переложите капли в 12-луночный планшет, содержащий 2 мл моющего раствора/лунку, промойте сначала тремя 5-минутными промывками, а затем девятью 30-минутными промывками. Оставьте последнюю стирку (2 мл) на ночь при температуре 4 °C.
  10. На следующий день трижды промойте PBS и переложите капли в круглую (U)-дно-96-луночную пластину.
  11. Во время промывки приготовьте соответствующую смесь вторичных антител, конъюгированную с фторофором (разбавленную 1:500, не менее 30 мкл/капля) в блокирующем растворе и центрифугируйте в течение 15 мин при 21 000 x g и 4 °C.
  12. } Перенесите капли в 96-луночный планшет с круглым (U)-дном с помощью шпателя с закругленными краями и инкубируйте с не менее чем 30 мкл смеси вторичных антител, в течение 4 ч по RT, защищен от света.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Выполняйте все последующие этапы инкубации и промывки в защищенном от света месте.
  13. Переложите капли в 12-луночную пластину, содержащую 2 мл моющего раствора/лунку, с помощью шпателя с закругленными краями, промойте сначала тремя 5-минутными промывками, а затем четырьмя 30-минутными промывками. Оставьте последнюю стирку (2 мл) на ночь при температуре 4 °C.
  14. На следующий день смойте гели пятью 30-минутными стирками, а затем три раза PBS. Оставьте последнюю промывку (2 мл) на ночь при температуре 4 °C.
  15. На следующий день переложите капли в 96-луночный планшет с круглым (U)-дном с помощью шпателя с закругленными краями и ядра с противозакругленным краем путем инкубации с ядерным красителем Хёхста 10 мкг/мл (не менее 30 мкл/капля) в течение 30 минут в RT.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В качестве альтернативы можно использовать монтажную среду с добавлением 4',6-диамидино-2-фенилиндола (DAPI) для окрашивания ядер. В этом случае этот шаг и шаг 1.16 пропускаются, переходя непосредственно к шагу 1.17.
  16. Переложите капли в 12-луночный планшет, содержащий 2 мл PBS/лунку, с помощью шпателя с закругленным краем и трижды промойте PBS.
  17. Установите капли на предметное стекло микроскопа следующим образом:
    1. Нанесите тонкий слой быстротвердеющего монтажного материала на края квадратного покровного стекла размером 22 мм x 22 мм и дайте высохнуть ~1 минуте. Выполняйте этот шаг для каждой капли отдельно, чтобы избежать чрезмерного затвердевания монтажной среды.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Выполните этот шаг в вытяжном шкафу, так как быстрозатвердевающая монтажная среда опасна для здоровья.
    2. Промойте каплю, опустив в лунку 12-луночный планшет, содержащий 2 мл деионизированной воды, и перенесите на предметное стекло микроскопа, используя шпатель с закругленными краями. Удалите лишнюю воду с помощью небольшого кусочка впитывающей бумаги.
    3. Нанесите на каплю 15 μл незатвердевающей монтажной среды, предотвращающей выцветание.
      ПРИМЕЧАНИЕ: В качестве альтернативы, если ядерное окрашивание Hoechst не использовалось, можно использовать монтажную среду, содержащую 4',6-диамидино-2-фенилиндол (DAPI).
    4. Аккуратно расположите защитное стекло быстрозатвердевающим монтажным материалом к микроскопическому предметному стеклу над каплей и дайте ей осесть.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Быстротвердеющая среда прилипнет к микроскопическому предметному стеклу и удержит каплю на месте.
  18. Повторите шаг 1.17 для всех капель. Закрепите по две капли на каждом предметном стекле микроскопа.
  19. Дайте предметным стеклам высохнуть на воздухе при температуре RT в течение ~2 часов и храните при температуре 4 °C в течение ночи. Убедитесь, что горки расположены горизонтально и защищены от света.
  20. Визуализируйте окрашенные нативные или конечные культуры FT ex vivo с помощью конфокального микроскопа или вертикального эпифлуоресцентного микроскопа, оснащенного функцией оптического среза и объективом 20x или 40x. Используйте функцию плитки, чтобы захватить большую площадь ткани за один раз.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Material <
Greiner Bio-One392-0019Используется для иммунофлуоресценции
Круглые/плоские шпатели, нержавеющая сталь<82027-528Используется для иммунофлуоресценции всего крепления
Покровные стекла 22x22 мм стиль #1Menzel/Fisher15727582Используется для монтажа
Microscope slidesFisherKindler K102Используется для монтажа
Впитывающая бумагаVWR115-0202Используется для монтажа
PBS tabletsMedicago09-9400-100Используется для подготовки 1x PBS
AcetoneSigma-Aldrich32201-2.5L-MИспользуется для приготовления раствора после фиксации. ВРЕД: носите защитные перчатки и/или одежду. Используйте в вытяжном шкафу.
MethanolSigma-Aldrich32213Используется для приготовления раствора после фиксации. ТОКСИЧНОСТЬ: надевайте защитные перчатки и/или одежду. Используйте в вытяжном шкафу.
Triton X-100 (октилфенолэтоксилат)Sigma-AldrichT9284Используется для иммунофлуоресценции всего монтирования. ВРЕД: носите защитные перчатки и/или одежду.
Hoechst 33342, 20mM<62249Для противозакрашивания ядер. ВРЕД: надевайте защитные перчатки и/или одежду, а также средства защиты глаз и/или лица.
VECTASHIELD Antifade Mounting MediumVector LaboratoriesH-1000Наденьте защитные перчатки и/или одежду, а также защиту глаз. Используйте в вытяжном шкафу.
VECTASHIELD Antifade Mounting Medium with DAPIVector LaboratoriesH-1200Монтажная среда с противозакрашиванием ядер. Надевайте защитные перчатки и/или одежду, а также средства защиты глаз. Используйте в вытяжном шкафу.
Eukitt Быстрозатвердевающий монтажный mediumSigma-Aldrich03989-100mlTOXIC: Носите защитные перчатки и/или одежду, а также защиту глаз. Используйте в вытяжном шкафу.
Рекомбинантный человек VEGFAR&D Systems293-VE-01050 нг/ мл конечная концентрация
Рекомбинантный человеческий VEGFCR&D Systems752-VC-025200 нг/ мл конечная концентрация
Рекомбинантный человеческий TGFβMilliporeGF3461 нг/ мл конечная концентрация
Рекомбинантный человек bFGFMillipore01-10650 нг/ мл конечная концентрация
CD31 (JC70A)DakoM0823Используется при разведении 1:100, Donkey anti Mouse Alexa 488 Secondary Ab
CD34 (QBEND10)DakoM716501-2Используется при разведении 1:100, Donkey anti Mouse Alexa 488 Secondary Ab
CD45 (2B11+PD7/26)DakoM070129-2Используется при разведении 1:100, Donkey anti Mouse Alexa 488 Secondary Ab
CD68ImmunoWayRLM3161Используется при разведении 1:100, Donkey anti Mouse Alexa 488 Secondary Ab
Craced caspase-3 (5A1E)Cell Signalling9664Используется при разведении 1:200, Goat anti Rabbit Alexa 594 Secondary Ab
ERG (EP111)DakoM731429-2Используется при разведении 1:100, Goat anti Rabbit Alexa 594 Secondary Ab
GFAPDakoZ0334Использовано при разведении 1:100, Goat anti Rabbit Alexa 594 Secondary Ab
Ki67Leica MicrosystemsNCL-Ki67pИспользовано при разведении 1:1500, Goat anti Rabbit Alexa 594 Secondary Ab
Lyve1R&D SystemsAF2089Использовано при разведении 1:100, Donkey anti Goat Alexa 568 Secondary Ab
NG2MilliporeAB5320Использовано при разведении 1:100, Goat anti Rabbit Alexa 594 Secondary Ab
Prox1ReliaTech102-PA32Использовано при разведении 1:200, Goat anti Rabbit Alexa 568 Secondary Ab
Prox1R&D SystemsAF2727Использовано при разведении 1:40, Chicken anti Goat Alexa 594 Secondary Ab
VEGFR3 (9D9F9)MilliporeMAB3757Использовано при разведении 1:100, Donkey Anti Mouse Alexa 488 Secondary Ab
α-SMA (1A4) style='width:174pt;'>SigmaC6198Использовано при разведении 1:400, Cy3 conjugated
Alexa Fluor488 Donkey Anti-Mouse IgGLife TechnologiesA-21202Использовано при разведении
Alexa Fluor594 Goat Anti-Rabbit IgGInvitrogenA-11012Использовано при разбавлени<и
Thermo ScientificA-11057Использовано на 1:500 dilution
Alexa Fluor568 Goat anti-Rabbit IgGThermo ScientificA-11036Использовано при разведении
Alexa Fluor594 Курица против козы IgGМолекулярные зондыA-21468Использовано на 1:500 dilution
NameCompanyНомер каталогаComments
Microscopes
Инвертированный эпифлуоресцентный микроскоп Axiovert 200Zeiss Для визуализации свежего и встроенного в фибрин FT
AxioImager.Z1 вертикального эпифлуоресцентного микроскопа с ApotomeZeiss Для визуализации полностью окрашенного иммунофлуоресцентного микроскопа
td style='height:26.5pt;width:165pt;'>Пластины для клеточных культур, 96-well, U-bottom всего крепленияtd style='width:174pt;'>VWRtd style='width:174pt;'>Life Technologies 1:500 1:500 td style='height:15.75pt;width:165pt;'>Alexa Fluor568 Donkey Anti-Goat IgG 1:500

Теги

Тканьполученная от пациентавстраивание в фибриновый гельинкубация с первичными антителамиокрашивание вторичными антителамиокрашивание ядерным красителемэпифлуоресцентная микроскопияобработка блокирующим растворомнанесение среды для заключения препаратов