Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Визуализация внутриклеточной динамики АТФ с помощью сенсоров на основе FRET в органотипическом срезе гиппокампа мыши

734 просмотров

28 апреля 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Lerchundi, R., et. al. Визуализация внутриклеточной АТФ в органотипических срезах тканей мозга мыши с помощью сенсора ATeam1.03YEMK на основе FRET. J. Vis. Exp. (2019)

Это видео демонстрирует использование датчиков на основе FRET (Fluorescence Resonance Energy Transfer) для измерения внутриклеточных уровней АТФ в органотипических срезах гиппокампа мышей, что позволяет визуализировать динамику АТФ в нейронах и астроцитах в режиме реального времени в физиологических и экспериментальных условиях.

Протокол

Все процедуры, связанные с образцами животных, были рассмотрены и одобрены соответствующим комитетом по этической экспертизе животных.

1. Визуализация АТФ на основе FRET (Рисунок 1)

  1. } Перед экспериментом приготовьте E-ACSF и добавьте в него 95% O2/5% CO2 в течение не менее 30 минут, чтобы получить pH 7,4. Включите источник флуоресцентного света (ксеноновую лампу) монохроматора (Рисунок 1). Запускайте перфузию непосредственно перед тем, как вынуть срез из инкубатора.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Держите физиологический раствор пузырчатым с 95% O2 и 5% CO2} в течение всего эксперимента.
  2. Перенесите срез в экспериментальную камеру, которая постоянно перфузируется свежекарбогенированным E-ACSF с помощью перистальтического насоса (Рисунок 1). Затем зафиксируйте срез сеткой. Поместите камеру на предметный столик микроскопа и подключите систему перфузии. Для перфузии рекомендуется использовать газонепроницаемые лабораторные трубки.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Эксперименты могут проводиться при комнатной температуре или при температуре, близкой к физиологической, в зависимости от плана эксперимента. Проверьте стабильность и надежность перфузионного потока, чтобы избежать изменений фокуса, вызванных движением ткани и/или изменениями напряжения сдвига. Стандартные скорости перфузии для работы со срезами, используемые нами и многими другими лабораториями, составляют 1,5-2,5 мл/мин.
  3. }Сфокусируйте культивированный срез с помощью просвечивающего света. Определите область, в которой будут проводиться эксперименты (например, область CA1 гиппокампа). Прежде чем начинать эксперименты с визуализацией, подождите не менее 15 минут, чтобы срезы адаптировались к солевым условиям. Конфигурацию экспериментальной установки см. на рисунке Рисунок 1.
  4. Включите камеру и программное обеспечение для обработки изображений. Затем выберите подходящий куб фильтра.
  5. Возбуждайте донорский флуоресцентный белок (eCFP) на длине волны 435/17 нм (~435 нм). Установите время экспозиции от 40 до 90 мс.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Сильное воздействие флуоресцентного света на срезы может привести к фототоксическим эффектам.
  6. Возбуждение на длине волны 435 нм приводит к излучению как на длине волны 475 нм (eCFP; донор), так и на длине волны 527 нм (Венера; акцептор). Разделите флуоресцентное излучение на длине волны 500 нм с помощью разделителя изображения излучения и используйте полосовые фильтры на длинах 483/32 и 542/27 для дальнейшей изоляции донорной и акцепторной флуоресценции. Сильная экспрессия может привести к насыщению детекторов. В этом случае вы можете использовать фильтр нейтральной плотности для снижения интенсивности возбуждения.
  7. Выберите область интереса (ROI), по-видимому, лишенную клеточной флуоресценции, для вычитания фона. Затем создайте ROI, описывающие тела клеток.
  8. Установите частоту получения изображения и общее время записи. Для длительных (>30 мин) экспериментов рекомендуется использовать частоту регистрации 0,2-0,5 Гц для предотвращения фототоксичности.
  9. Запустите запись. Рекомендуется записывать не менее 5 минут в исходных условиях, чтобы обеспечить стабильность препарата.
    ПРИМЕЧАНИЕ: При необходимости отрегулируйте фокус ячейки во время записи.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1

Рисунок 1: Конфигурация настройки образа FRET. (A) Схематическое изображение различных компонентов и их пространственного расположения, необходимых для установки визуализации FRET...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
2-deoxyglucoseAlfa AesarL07338Неметаболизируемый аналог
Фильтры полосового пропускания 483/32AHF Analysentechnik AG Совместимый с разделителем фильтр
Фильтры полосового пропускания 542/27AHF Analysentechnik AG Совместимый с разделителем фильтр излучения
Светоделитель T 455 LPAHF Analysentechnik AG <
Светоделитель T 505 LPXRAHF Analysentechnik AG <
Data processing Origin Pro 9.0.0 (64- bit)OriginLab corporation Научное программное обеспечение для
D-глюкоза моногидратCaelo2580-1KG<
GIBCO/Life14190250Фосфатно-солевой буфер
Eclipse E 600FN вертикальный микроскопNikon Microscope Solutions
Eclipse FN1 вертикальный микроскопNikon Microscope Solutions
Экспериментальная камераcustom build Перфузионная камера для визуализации
Hanks' Balanced Salt solutionSigma-AldrichH9394С феноловым красным для мониторинга
Minimum Essential Medium EagleSigma-AldrichM7278Synthetic cell culture media
Monochromator Polychrome VThermo Scientific/FEI Ультрабыстрый switching monochromator
Nikon Fluor 40x / 0.80 W DIC M ∞/0 WD 2.0Nikon Microscope Solutions Water Immersion Microscope Objective
NIS Elements 4.50 advanced ResearchNikon Microscope Solutions Программное обеспечение для обработки изображений. Обновленная версия для создания образа
ORCA-Flash4.0Hamamatsu Photonics Digital CMOS camera
Perfusion tubingPro Liquid GmbH трубка Tygon, 1.52 x 322 мм (Wd: 0.85)
Photoshop CS 6 Version 13.0Adobe Image processing software
ssAAV-2/2-hSyn1-ATeam1.03YEMK-WPRE-hGHp(A)ETH Zürichv244Одноцепочечный вектор AAV, который индуцирует экспрессию ATeam1.03YEMK под контролем фрагмента промотора 1 синапсина человека hSyn1.
ssAAV-5/2-hGFAP-hHBbI/E-ATeam1.03YEMK-WPRE-bGHp(A)ETH Zürichv307Одноцепочечный вектор AAV, который индуцирует экспрессию ATeam1.03YEMK под контролем фрагмента промотора глиального фибриллярного кислого белка человека ABC1D.
глюкозы. излученияtd style='width:318pt;'>Возбуждение дихроичного зеркалаtd style='width:318pt;'>Splitter dichroic построения графиков и анализа данныхtd style='width:318pt;'> <td style='height:14.5pt;width:204pt;'>DPBS Dulbecco живых клеток pH на ладах

Теги

ATeam1 03YEMK