Все процедуры, связанные с образцами животных, были рассмотрены и одобрены соответствующим комитетом по этической экспертизе животных.
1. Визуализация АТФ на основе FRET (Рисунок 1)
- } Перед экспериментом приготовьте E-ACSF и добавьте в него 95% O2/5% CO2 в течение не менее 30 минут, чтобы получить pH 7,4. Включите источник флуоресцентного света (ксеноновую лампу) монохроматора (Рисунок 1). Запускайте перфузию непосредственно перед тем, как вынуть срез из инкубатора.
ПРИМЕЧАНИЕ: Держите физиологический раствор пузырчатым с 95% O2 и 5% CO2} в течение всего эксперимента. - Перенесите срез в экспериментальную камеру, которая постоянно перфузируется свежекарбогенированным E-ACSF с помощью перистальтического насоса (Рисунок 1). Затем зафиксируйте срез сеткой. Поместите камеру на предметный столик микроскопа и подключите систему перфузии. Для перфузии рекомендуется использовать газонепроницаемые лабораторные трубки.
ПРИМЕЧАНИЕ: Эксперименты могут проводиться при комнатной температуре или при температуре, близкой к физиологической, в зависимости от плана эксперимента. Проверьте стабильность и надежность перфузионного потока, чтобы избежать изменений фокуса, вызванных движением ткани и/или изменениями напряжения сдвига. Стандартные скорости перфузии для работы со срезами, используемые нами и многими другими лабораториями, составляют 1,5-2,5 мл/мин. - }Сфокусируйте культивированный срез с помощью просвечивающего света. Определите область, в которой будут проводиться эксперименты (например, область CA1 гиппокампа). Прежде чем начинать эксперименты с визуализацией, подождите не менее 15 минут, чтобы срезы адаптировались к солевым условиям. Конфигурацию экспериментальной установки см. на рисунке Рисунок 1.
- Включите камеру и программное обеспечение для обработки изображений. Затем выберите подходящий куб фильтра.
- Возбуждайте донорский флуоресцентный белок (eCFP) на длине волны 435/17 нм (~435 нм). Установите время экспозиции от 40 до 90 мс.
ПРИМЕЧАНИЕ: Сильное воздействие флуоресцентного света на срезы может привести к фототоксическим эффектам. - Возбуждение на длине волны 435 нм приводит к излучению как на длине волны 475 нм (eCFP; донор), так и на длине волны 527 нм (Венера; акцептор). Разделите флуоресцентное излучение на длине волны 500 нм с помощью разделителя изображения излучения и используйте полосовые фильтры на длинах 483/32 и 542/27 для дальнейшей изоляции донорной и акцепторной флуоресценции. Сильная экспрессия может привести к насыщению детекторов. В этом случае вы можете использовать фильтр нейтральной плотности для снижения интенсивности возбуждения.
- Выберите область интереса (ROI), по-видимому, лишенную клеточной флуоресценции, для вычитания фона. Затем создайте ROI, описывающие тела клеток.
- Установите частоту получения изображения и общее время записи. Для длительных (>30 мин) экспериментов рекомендуется использовать частоту регистрации 0,2-0,5 Гц для предотвращения фототоксичности.
- Запустите запись. Рекомендуется записывать не менее 5 минут в исходных условиях, чтобы обеспечить стабильность препарата.
ПРИМЕЧАНИЕ: При необходимости отрегулируйте фокус ячейки во время записи.