Все процедуры, связанные с животными моделями, были рассмотрены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным советом JoVE.
1. Конструкция микроинжектора для стимуляции и записи (Рисунок 1a)
- Измерьте длину канюли и зонда (в данном примере это наносенсор). Щуп должен быть длиннее канюли на длину, которую он должен выступать из кончика канюли (в зависимости от конструкции щупа), плюс примерно 2 см.
- Под лупой или микроскопом (~10-кратное увеличение) загрузите зонд в канюлю; по возможности предпочтительно использовать обратную загрузку для защиты наконечника зонда.
ПРИМЕЧАНИЕ: Этот шаг, выполняемый вручную, является сложным. Рекомендуется потренироваться с микроэлектродом под лупой, прежде чем пытаться использовать реальный экспериментальный зонд. - Пропустите канюлю (содержащую зонд) через верхний наконечник, Т-образный и нижний наконечники.
- Если щуп представляет собой просто один провод без каких-либо креплений, загрузите его обратно в канюлю и вставьте сборку в Т-образный соединитель с нижнего наконечника. Верхняя часть канюли (сторона с плоским концом) должна быть расположена в середине Т-образного соединения, в нижней части, но не в верхнем наконечнике. Экспериментальный зонд или биосенсор должен выступать над верхней частью наконечника.
ПРИМЕЧАНИЕ: Изготовленные по индивидуальному заказу наконечники также могут быть изготовлены путем сверления отверстия в пробках наконечника с помощью микросверла, размер отверстия зависит от диаметра, необходимого для затяжки канюли к Т-образному соединению.
- С помощью наконечника затяните наконечники в верхней и нижней части Т-образного соединения. Не затягивайте слишком сильно. Можно добавить небольшой кусок трубки для усиления опоры электрода в верхнем наконечнике.
- Припаяйте золотые контакты к каждой из клемм щупа (сигнальная, заземляющая и т.д.), в соответствии со спецификациями щупа.
- Отрегулируйте взаимное расположение зонда и канюли. Измерьте расстояние, на которое щуп выступает из канюли при увеличении, и отрегулируйте вручную с верхнего конца (щуп может свободно скользить в наконечниках).
- Добавьте эпоксидный клей между золотыми штифтами и верхним наконечником, чтобы прикрепить щуп к наконечнику.
- Открутите верхний наконечник, чтобы втянуть щуп внутрь канюли. Визуально подтвердите, что зонд полностью находится внутри канюли при увеличении.
- Подсоедините инжектор к микроприводу.
2. Конструкция микроинжектора для инфузии лекарственных препаратов (Рисунок 1b)
- Прикрепите «нескошенный» или плоский конец канюли к нижней части Т-образного соединения с помощью наконечника. С помощью гаечного ключа с наконечником затяните наконечник.
- Прикрепите небольшой кусочек капиллярной трубки (~1,5 см) к верхней части Т-образного соединения, пропустив его через стандартный наконечник. Затяните с помощью гаечного ключа с наконечником.
- Загрузите микроэлектрод обратно через капиллярную трубку, Т-образный переход, канюлю и соответствующие наконечники.
- Убедитесь, что задний конец электрода выступает менее чем на 1 см от задней части капиллярной трубки, а кончик электрода выступает из канюли на нужном расстоянии с нижней стороны. Положение электродов можно регулировать вручную сверху.
- Припаяйте золотой штифт к клемме микроэлектрода.
- Добавьте эпоксидный клей между золотым штифтом и верхним наконечником, чтобы прикрепить микроэлектрод к наконечнику.
- Открутите верхний наконечник, чтобы втянуть щуп внутрь канюли. Визуально подтвердить, что микроэлектрод полностью втянут в канюлю.
3. Построение микрофлюидного контура (Рисунок 2)
- Поместите макетную плату на устойчивую поверхность. Расположите два трехходовых клапана параллельно самой длинной стороне макетной платы, примерно на 6 дюймов. Отдельно друг от друга, одним портом (тем, который всегда открыт) обращен друг к другу. С помощью винтов закрепите клапаны на макетной плате.
- Поставьте рядом с клапанами линейку (для измерения и отслеживания движения жидкостей внутри капиллярной трубки).
- Загрузите смесь масла низкой вязкости 1:1 и пищевого красителя (маркера) в газонепроницаемый шприц и поместите в насос для маркеров. Отрежьте один кусок капиллярной трубки и с помощью стандартных наконечников и разъемов Luer-lock подсоедините шприц к одному из портов входного клапана. Это и есть «маркерная линия».
- Отрежьте короткий кусок капиллярной трубки для «линии линейки». Используйте стандартные наконечники для затяжки к торцевым отверстиям клапанов.
- Отрежьте два более длинных куска капиллярной трубки, чтобы соединить выходной клапан с микроинжектором, а насос для лекарств — с входным клапаном (используйте стандартные наконечники).
ПРИМЕЧАНИЕ: Длина этих двух линий зависит от экспериментальной установки, одна должна быть достаточно длинной, чтобы добраться от инфузионного аппарата к животному, а другая — от фармацевтического насоса до входного клапана. С помощью раскалывающего камня разрежьте капиллярную трубку.
4. Установка микроинжектора на микропривод (Рисунок 3)
- Перед установкой убедитесь, что микроэлектрод/экспериментальный зонд втянут в канюлю.
ПРИМЕЧАНИЕ: Направляющая трубка должна находиться в положении микропривода. - Прикрепите к микроинжектору изготовленный на заказ адаптер.
- Сверху загрузите микроинжектор через направляющую трубку и закрепите его на адаптере с помощью винтов.
- Измерьте положение (глубину) микропривода, в котором микроинжектор выступает из направляющей трубки, затем втяните его на ~1 см, чтобы подготовиться к введению.
- Для экспериментов с микроинфузией подключите «мозговую линию» к неиспользуемому Т-образному отверстию микроэлектрода. Используйте стандартный наконечник и затяните его с помощью гаечного ключа.
5. Промывка и подготовка микрофлюидной системы
- Расположите микропривод с микроинжектором над стаканом для отходов.
- Загрузите хлоргексидин (например, нолвасан, растворенный при концентрации 20 г/л) в газонепроницаемый шприц объемом 1 мл и поместите его в насос для лекарств. Поверните направление потока клапанов таким образом, чтобы жидкость шла от насоса через клапан к клапанной линии и выходила из «мозговой линии».
- Промойте контур хлоргексидином с низким расходом (50-200 мкл/мин) в течение минимум 10 мин. Повторите шаги с 5.2 по 5.3 стерильным физиологическим раствором, а затем продуйте воздух.
ПРИМЕЧАНИЕ: На этом этапе важно проверить наличие утечек. Аккуратно нанесите безворсовые салфетки на места соединений, чтобы выявить любые утечки жидкости через наконечники. - Загрузите препарат в газоплотный шприц объемом 500 μл, сожмите воздух, а затем поместите в насос для лекарств. Расходуйте со скоростью 50 мкл/мин до тех пор, пока несколько капель не вытекут из микроинжектода.
- Замочите направляющую трубку в хлоргексидине (растворенном при 20 г/л) на 15 минут.
- Поверните направление выходного клапана в сторону «линии промывки». Продвигайте насос Маркер до тех пор, пока на линии линейки не будет виден четкий край цвета и масла. Следите за тем, чтобы между препаратом и цветом всегда было масло, чтобы не смешать два водорастворимых материала и не потерять острую грань между ними. Отметьте начальное положение этой линии масла/красителя (с помощью скотча или маркера).
- Поверните направление выходного клапана в сторону мозговой линии.
6. Проведение записи или эксперимента по инфузии
ПРИМЕЧАНИЕ: Этапы работы с животными будут варьироваться в зависимости от лаборатории и эксперимента. Следующие шаги должны быть выполнены после необходимой хирургической установки и подготовки к обнажению твердой мозговой оболочки. После эксперимента все необходимые постпроцедурные действия должны быть выполнены в соответствии с утвержденными в учреждении протоколами.
- Подключите микродисковод к камере записи. Опустите направляющую трубку, чтобы проникнуть в твердую мозговую оболочку.
ПРИМЕЧАНИЕ: Направляющая трубка не должна проникать дальше твердой мозговой оболочки, чтобы не повредить кору головного мозга. - Опустите микроинжектор примерно на 2 мм над местом записи/инъекции в мозг.
- Затяните верхний наконечник (выступающий микроэлектрод/биосенсор) и подключите золотые контакты к записывающей системе. Продолжайте продвигать микроинжектор к целевому участку.
ПРИМЕЧАНИЕ: Не забудьте включить в расчеты расстояние, на которое микроэлектрод выходит за пределы канюли. - Для экспериментов с инфузией используйте ручной микрошприцевой насос, чтобы перемещать столб масла на 1 см каждые 3 минуты (~60 нл/мин). После того, как желаемый объем будет залит, переключите выходной клапан в сторону линии промывки.
ПРИМЕЧАНИЕ: Объем ввода будет варьироваться в зависимости от модели вида и целевой области мозга. Более высокая скорость потока может повредить нервную ткань. - Когда эксперименты будут завершены, втяните микроинжектор внутрь направляющей трубки (оставьте зонд выпяченным). Затем снимите микропривод для промывки. Промойте микрофлюидную систему, чтобы подготовить ее к повторному использованию. заметка: По нашему опыту, микроинжектор прослужит несколько использований при правильном уходе. Качество электрофизиологической записи падает быстрее, чем возможность инъекции.