1. Подготовка кассеты
- Чистая передняя и задняя пластины использовали Invitrogen Nupage Novex minigel кассету или другие коммерческие кассеты minigel.
- Подготовка примерно 1-3 мл пластиковых эпоксидных и хорошо перемешать в соответствии с инструкциями производителя.
- Применение эпоксидных к внутренней кромке передней панели, где две тарелки будет вступать в контакт, когда кассета собирается.
- Вставьте кусок фильтровальной бумаги или картона через нижнюю щель задней панели при сборке кассеты для предотвращения чрезмерного эпоксидной от герметизации проема. Удалить фильтровальной бумаги, как только две пластины собираются.
- Установите зажимы по краям для уплотнения, а кассеты на ночь для эпоксидных, чтобы полностью вылечить.
- Печать щель в нижней части задней панели с помощью изоленты.
2. Заливка решения гель
- В 125 мл колбу рукой стороны, добавим следующее:2,25 мл Трис-4X базы Разрешая гель буфер рН 8,70, 3,50 мл 30,8% акриламид / бисакриламид, 3,25 мл реагента типа I класса вод (IRG-H 2 O) на общий объем 9 мл.
- Де-газ решение в течение 10 минут путем присоединения стороне руки колбу с вакуумным аппаратом, а также размещение перевернутую пробку в верхней части колбы.
- Передача 9 мл дегазированным решение 50 мл одноразовые трубки центрифуги полипропилена и добавить 30 мкл 10% ammounium персульфат (APS) и 6 мкл N, N, N ', N',-тетраметилэтилендиамина (TEMED) и смеси хорошо закрученного решение, чтобы избежать введения пузыри.
- Сразу залить раствор в кассету, что позволяет запускать вниз сторона кассеты для предотвращения пузырей между гелем пластин. Заполните кассеты примерно в 2 см от верхнего края передней (более короткой) пластины.
- Аккуратно добавить 0,5 мл 1-бутанола насыщенный 1X решения гель буфера и пусть гель полимеризуется в течение 1час.
3. Заливка концентрирующий гель
- Добавьте следующие строки в 125 мл колбу стороне руки: 0.75 мл Трис-4X базы Укладка рН гель буфер 6,80, 0,40 мл 30,8% акриламид / бисакриламид, 1,85 мл IRG-H 2 O на общий объем 3 мл.
- Де-газ решение в течение 10 мин, как описано в шаге 2.
- Несмотря на то, концентрирующий гель решение дегазации, слить 1-бутанол насыщенный 1X разрешающей гель буфер из верхней части решения геля. Промыть в верхней части решения гель один раз с IRG-H 2 O. Слейте воду и использовать впитывающий влагу или ватмана фильтровальную бумагу, чтобы поглотить оставшуюся жидкость.
- Удалить 3 мл дегазированной вашего решения и добавляют 9 мкл 10% АЭС и 2 мкл TEMED и хорошо перемешать.
- Быстро влейте раствор в кассету, что позволяет запускать вниз сторона кассеты, пока она находится вблизи верхнего края пластины геля короче передних.
- Вставьте чистый гребень гель в верхней части геля кассеты,разместить связующим клип на кассете на гребень, чтобы удерживать его на месте. Пусть концентрирующий гель полимеризуется в течение 1 часа ночи.
4. Хранение геля
- Когда гель полностью полимеризуется, удалите зажимы и положите кассету в жару закрывающийся пластиковый пакет или закрывающемся полиэтиленовом пакете.
- Налейте 20 мл 1X концентрирующий гель буфер, который содержит 0,1% азида натрия в сумке.
- Термосварки сумке в течение 5 секунд и убедиться в отсутствии течи в сумке.
- Храните гель при температуре 4 ° C.
5. Подготовка образцов
- В тонкостенных труб микроцентрифужных, добавить до 6,5 мкл образца белка, 7,5 мкл 2x Novex Трис-Глицин SDS образец буфера, 1 мкл 100 мМ ДТТ (DTT) и IRG-H 2 O (при необходимости) Общий объем 15 мкл.
- Смешать образца встряхивая, и кратко центрифуги образца привести содержимое в нижней части трубы.
- денатурации образцов при температуре 70 ° С в течение 10 мин.
6. Запуск гель
- Настройка аппарата Novex геля.
- Добавить 200 мл Трис-Глицин Running буфер, который содержит 500 мкл Nupage антиоксидант для внутренней камеры и 300 мл Трис-Глицин Запуск буфер внешней камеры.
- Загрузите денатурированные образцы белка (15 мкл) в лунки помощью геля загрузки пипетки.
- Запустите геля при 200 В на 60-70 мин.
7. Окрашивание геля
- Извлеките кассету из геля аппарат и сломать эпоксидной печатью любопытных две пластиковые пластины геля кроме ножом гель или жесткий шпатель. Осторожно отделите гель от тарелки, стараясь не оторвать геля.
- Промойте гель с IRG-H 2 O в три раза с нежным агитации.
- Пятно гель с Invitrogen SimplyBlue SafeStain в течение 1 часа с нежным агитации.
- Вылейте раствор и окрашиваниеdestain гель с IRG-H 2 O.
8. Очистка кассеты
- С помощью металлического шпателя, чтобы очистить или снимите все эпоксидной на кассетах, таким образом они могут быть использованы снова.
- Промыть каждую из пластиковых пластин гель с мягким моющим средством, и хорошо промыть водопроводной водой, затем дистиллированной водой.
9. Представитель Результаты
Поскольку эпоксидные образуют водонепроницаемое уплотнение (рис. 1), кассеты, не будет течь, когда акриламид раствор выливают в них. Кроме того, гель кассеты можно легко открыть, чтобы получить гель для окрашивания, а также эпоксидных может быть снята с кассет, чтобы их дальнейшего повторного использования. Как показано на рисунке 2, гель показывает четкое разделение белковых маркеров и образец полосы подходят для рутинных электрофорез белков.

Рисунок 1. Appliкатион эпоксидных, чтобы запечатать minigel кассет. тонкий слой эпоксидной применяется к краю одной из кассет до сборки. Чтобы выделить эпоксидную смолу, она была ложно-красного цвета в этот образ.

Рисунок 2. Разделение белков на SDS-Трис-глицин гель заливается использованием повторно использовать minigel кассет. SDS-PAGE проводили, как описано выше. После электрофореза гель был удален из minigel кассеты, окрашенные в SimplyBlue SafeStain в соответствии с инструкциями производителя, и сфотографировали использованием переданных белый свет. Лейн M содержит SeeBlue Plus2 предварительно окрашенных стандартам белка. Молекулярный вес белка в полосе М указаны на правой стороне гель кДа (кДа). Другие полосы показывают белки от разрешенного лизат из бактерий выражения глутатион-S-трансферазы (GST), помеченные белка. Белки представляют собой показатели, отмывали от гlutathione бисер перед элюирования GST с метками белка.