$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. Посев клетки
- Перед началом разминки культуральной среде, PBS 1X и трипсина в водяной бане при температуре 37 ˚ C
- Возьмите клеток из инкубатора и аспирата среды.
- Осторожно применять 5 мл ФСБ 1X на клетки, чтобы вымыть их.
- Аспирируйте PBS 1X и закапывать по 1 мл трипсина содержащие 0,025% ЭДТА.
- Плавно поворачивайте пластины имеют равномерное распределение трипсина.
- Место клеток в инкубаторе при температуре 37 ˚ С в течение 5-10 минут (в зависимости от типа клеток). Время от времени проверять, если клетки отделяются путем встряхивания пластины.
- Ресуспендируют клеток в 10-20 мл среды и собрать их в трубки 50 мл сокола.
- Граф клетки с помощью счетчика Beckman. Число клеток должно быть достаточно для обеспечения слияния около 60-70%.
- Пластина клеток и позволяют им семян в течение 6-8 часов.
2. Трансинфекцией
- До трансфекции, разогреть аликвоту бессывороточной среде в водяной бане при температуре 37 ˚ C.
- Принесите X-Treme Ген 9 до комнатной температуры.
- Внесите бессывороточной среде в 2 пробирки Эппендорф (1 труба = 1 трансфекции).
- Внесите X-Treme Ген 9 в бессывороточной среде обращают внимание, что чаевые не касается пластиковой стеной Эппендорф и инкубировать в течение 5 минут. В то же время подготовить два смесей ДНК: в одной из труб смешиваются плазмид для renilla, светлячков и пустой борьбе с переносчиками, в другой трубке renilla, светлячков и молекулярной провожатым.
- Добавить ДНК смеси для каждого Эппендорф содержащей сыворотки среде без + X-Treme Ген 9, вихревые и инкубировать при комнатной температуре в течение 20 минут.
- Добавить по каплям каждой смеси на каждую пластину и инкубировать в течение 24 часов при температуре 37 ° С и 5% CO 2
3. Разделение клетки
- 24 часов после трансфекции, trypsinize клетки, как описано в 1,4 - 1,6 и разбавить их окончательного слияния в пределах 60-70% в 6-луночный планшет.
- Подготовка одной пластины для не шокировало контроль и столько же пластинок время восстановления точек, которые должны быть проанализированы, как показана на рис. 2.
4. Тепловой удар
- Для теплового шока, предварительно теплой сыворотки, содержащей среды в водяной бане при температуре 37 ˚ C.
- Подготовка «теплового шока буфера" путем разбавления в сыворотку, содержащую циклогексимид средней конечной концентрации 20 мкг / мл и MOPS до 20 мм.
- Теперь достаньте пластины из инкубатора и аспирата среды.
- Добавить в каждую лунку по 1 мл 'Heat буфера шок », и инкубировать 30 минут при температуре 37 ˚ С и 5% СО 2 (включает также ссылки пластины в этом лечении). Это остановит заново синтеза белка.
- В то же время переключаться на водяной бане и установить тemperature при 45 ˚ C.
- После инкубации, печать крышка плиты с парафильмом ранее сокращение полос. Ссылка пластины (100% refolfed светлячка) остается в инкубаторе.
- Инкубируйте пластин при 45 ˚ С в течение 30 минут.
- Удалить плит из водяной бане, снимите парафильмом и поставить пластины обратно в инкубатор, чтобы восстановление.
- В каждый момент времени урожай клеток и мыть их в ФБС 1X центрифугированием при 2000Xg течение 1 минуты при 4 ˚ C.
5. Лизису клеток и люциферазы анализа
- Для эффективной лизис клетки, оснастки заморозить осадок клеток в жидком азоте.
- Добавить 200 мкл буфера для лизиса пассивной разбавленный 1:5 в бидистиллированной воды в стеклянной трубке.
- Добавить 30 мкл Клеточный лизат в 96 ячейках. Каждый образец имеет пипеткой в трех экземплярах.
- Только "не шокировало" эталонных образцов будет использоваться длячитать renilla активность люциферазы, так как этот шаг используется для проверки одинаковой эффективностью трансфекции.
- Подготовка решений для анализа. Для решения люциферин разбавленный люциферин до конечной концентрации 0,2 мМ в Gly-Gly буфера. Для реакции буфера разбавления DTT и АТФ в конечной концентрации 1 мМ в Gly-Gly буфера. Для coelenterazine буфера реакции, развести coelenterazine до конечной концентрации 0,2 мкМ в coelenterazine буфера. Хранить раствор люциферин и coelenterazine реакционного буфера защищенном от света.
- Теперь поместите 96-луночного планшета в люминометра и запустите программу "Wallac 1420 Workstation.
- Ввести Pump1 в трубку сокола содержащие coelenterazine решение. Закройте крышку так, без света могут вступать в контакт с трубкой.
- Выберите из меню "Диспенсер обслуживания" и отметьте опцию Pump1.
- Выберите опцию 'Fill'.
- Чтобы изменить расположение пластин выбрать опцию 'Исследуйте протокол и результаты "в меню. Выберите протокол и дважды щелкните по нему. Теперь выберите скважин для чтения.
- Возвращаемся к "Wallac менеджер" и нажмите кнопку "Пуск". Реакция между renilla люциферазы и его субстрата coelenterazine излучает свет с длиной волны пика в 482 нм.
- После чтения, идти на "Диспенсер обслуживания" и выберите "Пустые" и Pump1 освободить всех остаточных решение вернуться к трубе.
- Теперь переместите трубки к трубке сокола, содержащей воду и поставьте галочку "Флеш".
- После промывки шаг, пустые трубки, выбрав "пустой".
- Поместите пробирку с Pump1 в реакционную трубку буфера сокола и один из Pump2 в трубке люциферин сокола.
- Изменение пластины макета.
- Выберите 'Fill' для Pump1 и Pump2 из «ДиСпенсер обслуживания "меню.
- Выберите протокол и начать чтение. Реакция между люциферазы Светлячок и его субстрата люциферин излучает свет с максимальной длиной волны 560 нм.
- В конце чтения повторить процедуру Пустые-Flush пусто при Pump1 и Pump2.
- Результаты теперь доступны в "Wallac 1420 Explorer.
- Каждый эксперимент связан с анализа числа, имя пользователя, начинается и заканчивается день.
- Результаты теперь можно экспортировать в виде файла Excel.
- Для расчетов, клетки делятся на три группы: 1. не-шокированы контрольных образцов (установлен как 100% сложил люциферазы светляков), 2. клетки, не молекулярный шаперон и тепла шокированы, 3. клеток с молекулярным шаперона и тепла в шоке.
6. Представитель Результаты
Белки рефолдинг напрямую связано с временем восстановления Поэтому для проверки, если система работает про perly, анализ должен быть проведен сбор клеток в различные моменты времени. Прямая корреляция времени / процент рефолдинг указывает, что эксперимент был должным образом выполнены и, следовательно, представляет ограничивающим фактором. Однако следует всегда считали, что рефолдинг после теплового шока насыщения событие и, следовательно, надлежащий анализ учебного времени должно быть выполнено перед началом любого эксперимента.
Рисунок 1. Обзор эксперимента. В анализе рефолдинг естественных условиях требуется от 3 до 4 дней будет завершена. На 1-й день клетки высевают и трансфекции. Следующие клетки день разделен на меньшем формате и на 3 день они тепло в шоке. В этот момент можно выполнить люциферазы анализ сразу после уборки клетки или сохранить осадок клеток при -80 ° C и выполнять анализ в другой момент
_content ">
Рисунок 2. Сотовые расщепления. В день 2 клетки делятся на 6-луночный планшет. Каждый трансфекции будет разбавляться в хорошо для того, чтобы иметь все трансфекции на той же пластинке. Каждая пластина будет соответствовать определенное время восстановления плюс, не шокировало ссылкой пластины.
Рисунок 3. Представителю хороший результат. А. Процент рефолдинг непосредственно измеряется люциферазы светляков деятельности. Каждая гистограмма представляет собой процент рефолдинг в отсутствие (черные полосы) и в присутствии (красные столбики) молекулярного шаперона в различные моменты времени восстановления. Б. Корреляция между временем и рефолдинг в отсутствии (черная линия) и в присутствии (красная линия) провожатым. Г квадрат значения показывают хорошую корреляцию.
В Fig.3A показано репрезентативные результаты, где клетки были собраны 15, 30, 45, 60 и 120 минут после теплового шока в отсутствие (черные полосы) и в присутствии (красные столбики) молекулярных шаперонов. Процент сложил люциферазы увеличивается с длительным временем восстановления и трансфекции молекулярного шаперона. Корреляция между рефолдинг и время для контроля (рис. 3В, черная линия) и молекулярный шаперон-трансфекции клеток (рис. 3В, красная линия) показан.
Рисунок 4. Представителем плохой результат. А. Процент рефолдинг непосредственно измеряется активность люциферазы. Каждая гистограмма представляет собой процент рефолдинг в отсутствие (черные полосы) и в присутствии (красные столбики) молекулярного шаперона в различные моменты времени восстановления. Б. Корреляция между временем и рефолдинг в отсутствие и в присутствии (красная лНИС) из сопровождающих. Г квадрат значения указывают на плохую корреляцию.
На рисунке 4а. Показывает, представитель результат эксперимента не должным образом выполнены. Оба управления (черные полосы) и молекулярный шаперон-трансфекции клеток (красные столбики) не показали увеличение белка рефолдинг со временем. Кроме того, трансфекции молекулярного шаперона не привело к увеличению рефолдинг. Это слабая корреляция подтверждается на рис. 4B показывает т квадрат значения 0,6619 и 0,1882, соответственно, для контроля (черная линия) и молекулярный шаперон-трансфекции клеток (красная линия).