Методическая статья

Перепрограммирование соматических клеток человека в индуцированные плюрипотентные стволовые клетки (иПСК) Использование ретровирусных вектор с GFP

DOI:

10.3791/3804

3 апреля 2012 г.

В этой статье

Краткое содержание

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Метод для создания человеческих индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (иПСК) с помощью ретровируса, опосредованного эктопической экспрессии Oct4, Sox2, KLF4 и MYC описано. Практический способ определения человека IPSC колоний на основе выражения GFP также обсуждается.

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Человеческих эмбриональных стволовых клеток (ЭСК) являются плюрипотентные и бесценный сотовой источники в пробирке моделирования болезни и регенеративная медицина 1. Ранее было показано, что соматических клеток человека можно перепрограммировать на плюрипотентности по эктопической экспрессии четырех факторов транскрипции (Oct4, Sox2, Klf4 и Myc) и стать индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (иПСК) 2-4. Как и ЭСК, человеческие иПСК являются плюрипотентные и потенциальный источник аутологичных клеток. Здесь мы опишем протокол для перепрограммирования человеческих клеток фибробластов с помощью четырех факторов перепрограммирования клонировали в GFP-содержащих ретровирусных основа 4. Используя следующий протокол, мы получаем человека иПСК в течение 3-4 недель в человеческое состояние культуры ESC. Человека IPSC колонии напоминают ЭСК по морфологии и отображения потери флуоресценции GFP в результате антиретровирусной глушителей трансгена. IPSC колонии изолированы механически под флуоресцентным microscoPE себя аналогичным образом, как ЭСК. В этих клетках, мы обнаруживаем выражение нескольких генов плюрипотентности и поверхностных маркеров.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Перепрограммирование по ретровируса выражая Перепрограммирование факторы

  1. Фибробласты человека культивируют в фибробластов среды (10% FBS в DMEM с ручкой / Strep).
  2. За день до инфекции, пластина 1х10 5 фибробластов человека в одну и 6-луночного планшета.
  3. Аспирируйте среду, чтобы удалить мертвые клетки и добавьте 2 мл свежей среды фибробластов. Добавить протамина сульфата в конечной концентрации 5 мкг / мл.
  4. Аккуратно добавить соответствующее количество каждого выражения GFP-вируса соответствующие множественности заражения (МВД) 5 5.
  5. На следующий день после инфекции, вирусных удалить супернатант, вымыть три раза с 2 мл PBS, затем добавить 2 мл фибробластов среды.
  6. Через три дня после инфекции, проверить флуоресценции GFP и пополнения и с 2 средних фибробластов мл.
  7. Через четыре дня после заражения, пластины 1x10 4 / см 2 облученных мышиных эмбриональных фибробластов (MEFs) фидерных клеток фибробластов в среду на10 см, чашка Петри покрыты 0,1% желатина. Инкубировать при температуре 37 ° С в течение ночи.
  8. Через пять дней после заражения, отсоедините инфицированных фибробластов человека с 1 мл 0,05% typsin / ЭДТА в течение 5 минут при 37 ° С, а центрифуги в течение 5 минут при 200 гр. Аспирируйте среды и ресуспендирования клеток фибробластов 10 мл среды. Передача клеток в предварительно покрытых 10-см пластины.
  9. После 24 часов, замените носитель с чЭСК культуральной среде (20% Knock-out сыворотки замены DMEM/F12, 0,1 мл без незаменимых аминокислот, 4 нг / мл bFGF, ручка / Strep / глутамат, бета-merceptoethanol). Изменение средних ежедневно. ESC-колонии, как начнут появляться днем ​​20-27 после заражения.

2. Выделение и расширение иПСК

  1. Под флуоресцентным микроскопом, проверьте отсутствие флуоресценции GFP в колонии, которая показывает аналогичную морфологии ЭСК.
  2. С помощью пипетки 10 мкл, подобрать индивидуальный IPSC колоний и поместить их в одну лунку желатин и MEF-шаТед 12-луночного планшета и дополнены чЭСК среды. Изменение средних ежедневно.
  3. Для пассажей, помыть тарелку с 1 мл DMEM/F12, затем добавьте 0,5 мл коллагеназы и инкубировать 10 минут при 37 ° C.
  4. Промойте клетки дважды DMEM/F12.
  5. Добавить 2 мл свежей среды чЭСК. Использование сотового ручка, разбить колоний на мелкие кусочки и снять оставшиеся клетки от пластинки.
  6. Передача ресуспендированного части колоний в одну лунку желатин и MEF-покрытием 6-луночного планшета.

3. Иммунофлуоресценции анализа плюрипотентных маркеров

  1. Промойте клетки три раза PBS и закрепите с помощью 4% параформальдегида в течение 20 мин при комнатной температуре.
  2. Осторожно промыть клетки три раза PBS и permeabilize 0,2% Тритон Х-100 в PBS в течение 30 мин.
  3. Блок неспецифическое связывание путем инкубации клеток с 3% BSA в PBS в течение двух часов.
  4. Инкубируйте клетки с первичными антителами в течение ночи при 4 ° C.
  5. Промойте клетки три раза PBS и инкубировать клеток со специфическими вторичными антителами в течение одного часа при комнатной температуре, защищая от света.
  6. Промойте клетки три раза PBS и добавьте DAPI в течение последних мыть с последующей инкубацией при комнатной температуре в течение 5 минут.
  7. Обнаружение окраски флуоресцентного микроскопа.

4. Количественная ПЦР в реальном времени анализ на маркеры плюрипотентных

  1. Изолировать общей РНК из человеческих иПСК полученных из фибробластов человека RNeasy использованием комплекта Qiagen в.
  2. Обобщить первой цепи кДНК использованием Надстрочный II обратной транскриптазы.
  3. Выполните КПЦР для обнаружения генов плюрипотентности использованием праймеров сообщалось ранее 6.

5. Представитель Результаты

  1. Морфологические изменения при перепрограммировании
    Мы инфицированных фибробластов человека BJ1 и Детройта 551 коктейль из ретровирусов проведение Oct4, Sox2, KLF4 и MYC,и смогли обнаружить морфологических изменений при перепрограммировании (рис. 1). Двадцать один день после заражения, мы признаем, небольшие колонии IPSC их чЭСК морфологией. Кроме того, мы признаем, иПСК по флуоресценции GFP. Плюрипотентных стволовых клеток, таких, как стволовые клетки и иПСК, выражают молекулярные машины для подавления экспрессии генов провирусной 7-9. Наша уникальная ретровирусных вектор выражает GFP вместе с перепрограммирования генов ретровирусных LTR. Таким образом, клетки непрерывно выражения GFP считаются выразить без трансгенов провирусной глушителей гена. Искренне перепрограммировать IPSC колоний, которые приобретают плюрипотентности молекулярной сети показывают отсутствие GFP выражении (рис. 2) 10.
  2. Характеристика плюрипотентности человека иПСК
    Мы проанализировали колонии, полученные из Детройта-551 фибробластов с помощью иммуногистохимии с TRA-1-81, TRA-1-60, SSEA-4, SSEA-3, OCT4 и NANOG антитела ( (рис. 3А). Мы также проанализировали экспрессию генов с помощью количественной ПЦР-анализа. Мы заметили, что выражение Oct4, Sox2, KLF4, MYC и NANOG была значительно увеличена по сравнению с родительскими клетками фибробластов, но соразмерно у H9 ЭСК (рис. 3В).

figure-protocol-1
Рисунок 1. Морфологические изменения ретровирус-инфицированных фибробластов человека. (AD), Прогрессивная морфологические изменения в колониях из Детройта-551 фибробластов, инфицированных перепрограммирования факторов. День 5 (А), 10 день (B), 14-й день (C), 21-й день (D). Клетки показать чЭСК морфологией после 21 дней.

figure-protocol-2
Рисунок 2. Представитель GFP флуоресцентные экспрессии в клетках проходит перепрограммирования. 4, и инкубировали в чЭСК среду в течение четырех недель. BJ фибробластов (A, B) и Detroit 551 (C, D) показывают, что аналогичные морфологические. С 21-й день, GFP негативных колоний начинают формироваться, которые представляют собой добросовестные иПСК 10. (E, F) показывают, превращается Детройта 551 клеток, которые не прошли надлежащей перепрограммирования. (A, C, E) колоний на этапе зрения контраста. (B, D), должным образом перепрограммировать клетки, которые показывают GFP глушителей. (F) яркое выражение GFP из трансформированных колоний.

figure-protocol-3
Рисунок 3. Характеристика человека индуцированных плюрипотентных стволовых клеток. (А) человека 551-IPS-K1 колонии клетки выразить маркеры, общие для плюрипотентных клеток. DAPI окрашивания указывает на общее содержание клеток на поле. (B) количественные реальном времени ПЦР (RT-КПЦР) для выражения Oct4, Sox2, KLF4, MYC в родительских еibroblast, 551-IPS-K1 иПСК и H9 человеческих эмбриональных стволовых клеток (ЭСК). Данные были нормированы к β-актина хозяйства генов и построены по сравнению с уровнем экспрессии в родительских клеток фибробластов 4.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Выражение из четырех транскрипционных факторов перепрограммирует фибробластов человека для иПСК. Многие были предприняты попытки создания человеческой иПСК с использованием не-интеграция или не-генетические подходы для получения клинически безопасной иПСК. До сих пор эти методы показывают крайне низкую эффективность и требуют дальнейшей оптимизации для улучшения воспроизводимости 11-14. Ретро-или лентивирусов методы легко использованы для получения и применения иПСК для человека в лабораторных моделе...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Нам нечего раскрывать.

Благодарности

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта работа финансировалась Йельской школы медицины и здоровья детей исследований награду Чарльза Hood Foundation.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
DMEM/F12Invitrogen1133005780%
Нокаут-заменитель сывороткиInvitrogen10828-02820%
L-глютамин (200 мМ)Invitrogen250300812 мМ
заменимые аминокислоты (10 мМ)Invitrogen111400500,1 мМ&
#946;-Mercapt– танол (14,3 М) или MTGInvitrogenM-62500,1 мМ
bFGF-2 10 μ г/млGIBCO, от Life TechnologiesGF003AF4 нг/мл
Пенициллин/СтрептомицинEMD Millipore15140-1221%
DMEMInvitrogen1196511890%
FBSInvitrogen1040702810%
Пенициллин/СтрептомицинEMD Millipore15140-1221%
Table 1. Культуральная среда
OCT4AbcamAb198571:500
SSEA3EMD MilliporeMAB43031:100
SSEA4BD BiosciencesBD5602181:100
Tra-1-81BD BiosciencesBD5601731:100
Tra-1-60BD BiosciencesBD5601741:100
NANOGAbcamab216241:500
Alexa-flur 488InvitrogenA110081:1000
Alexa-flur 555InvitrogenA214221:1000
DAPIInvitrogenD13061:5000
pMIG-OCT4Addgene17225
pMIG-SOX2Addgene17226
pMIG-KLF4Addgene17227
pMIG-MYCAddgene18119
Коллагеназа типа IVИнвитроген171040191 мг/мл
Желатин, свинаяСигма-ОлдричG 18900,1%
ТритонСигма-ОлдричX100-500 мл0,2%
ПараформальдегидСигма-Олдрич476084%
BSAАмериканский биоаналитическийAB018003%
MEF фидерные ячейкиEMD MilliporePMEF-N
Cell LifterCorning3008
Флуоресцентная микроскопия: инвертированный микроскоп с фильтром
Таблица 2. Реагенты и оборудование
GFP

Ссылки

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Murry, C. E., Keller, G. Differentiation of embryonic stem cells to clinically relevant populations: lessons from embryonic development. Cell. 132, 661-680 (2008).
  2. Takahashi, K., Tanabe, K., Ohnuki, M., Narita, M., Ichisaka, T., Tomoda, K., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131, 861-872 (2007).
  3. Yu, J., Vodyanik, M. A., Smuga-Otto, K., Antosiewicz-Bourget, J., Frane, J. L., Tian, S., Nie, J., Jonsdottir, G. A., Ruotti, V., Stewart, R. Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells. Science. 318, 1917-1920 (2007).
  4. Park, I. H., Zhao, R., West, J. A., Yabuuchi, A., Huo, H., Ince, T. A., Lerou, P. H., Lensch, M. W., Daley, G. Q. Reprogramming of human somatic cells to pluripotency with defined factors. Nature. 451, 141-146 (2008).
  5. Park, I. H., Lerou, P. H., Zhao, R., Huo, H., Daley, G. Q. Generation of human-induced pluripotent stem cells. Nature Protocols. 3, 1180-1186 (2008).
  6. Park, I. H., Zhao, R., West, J. A., Yabuuchi, A., Huo, H., Ince, T. A., Lerou, P. H., Lensch, M. W., Daley, G. Q. Reprogramming of human somatic cells to pluripotency with defined factors. Nature. 451, 141-146 (2008).
  7. Hotta, A., Ellis, J. Retroviral vector silencing during iPS cell induction: an epigenetic beacon that signals distinct pluripotent states. Journal of Cellular Biochemistry. 105, 940-948 (2008).
  8. Matsui, T., Leung, D., Miyashita, H., Maksakova, I. A., Miyachi, H., Kimura, H., Tachibana, M., Lorincz, M. C., Shinkai, Y. Proviral silencing in embryonic stem cells requires the histone methyltransferase ESET. Nature. 464, 927-931 (2010).
  9. Wolf, D., Goff, S. P. Embryonic stem cells use ZFP809 to silence retroviral DNAs. Nature. 458, 1201-1204 (2009).
  10. Chan, E. M., Ratanasirintrawoot, S., Park, I. H., Manos, P. D., Loh, Y. H., Huo, H., Miller, J. D., Hartung, O., Rho, J., Ince, T. A. Live cell imaging distinguishes bona fide human iPS cells from partially reprogrammed cells. Nat. Biotechnol. 27, 1033-1037 (2009).
  11. Yu, J., Hu, K., Smuga-Otto, K., Tian, S., Stewart, R., Slukvin,, Thomson, J. A. Human induced pluripotent stem cells free of vector and transgene sequences. Science. 324, 797-801 (2009).
  12. Kim, D., Kim, C. H., Moon, J. I., Chung, Y. G., Chang, M. Y., Han, B. S., Ko, S., Yang, E., Cha, K. Y., Lanza, R. Generation of human induced pluripotent stem cells by direct delivery of reprogramming proteins. Cell Stem Cell. 4, 472-476 (2009).
  13. Warren, L., Manos, P. D., Ahfeldt, T., Loh, Y. H., Li, H., Lau, F., Ebina, W., Mandal, P. K., Smith, Z. D., Meissner, A. Highly efficient reprogramming to pluripotency and directed differentiation of human cells with synthetic modified mRNA. Cell Stem Cell. 7, 618-630 (2010).
  14. Ban, H., Nishishita, N., Fusaki, N., Tabata, T., Saeki, K., Shikamura, M., Takada, N., Inoue, M., Hasegawa, M., Kawamata, S. Efficient generation of transgene-free human induced pluripotent stem cells (iPSCs) by temperature-sensitive Sendai virus vectors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108, 14234-14239 (2011).
  15. Wolf, D., Goff, S. P. TRIM28 mediates primer binding site-targeted silencing of murine leukemia virus in embryonic cells. Cell. 131, 46-57 (2007).
  16. Park, I. H., Arora, N., Huo, H., Maherali, N., Ahfeldt, T., Shimamura, A., Lensch, M. W., Cowan, C., Hochedlinger, K., Daley, G. Q. Disease-specific induced pluripotent stem cells. Cell. 134, 877-886 (2008).
  17. Kim, K. Y., Hysolli, E., Park, I. H. Neuronal maturation defect in induced pluripotent stem cells from patients with Rett syndrome. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108, 14169-14174 (2011).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

GFP

Похожие статьи