Методическая статья

Масс-спектрометрического анализа гликосфинголипид Антигены

20.5K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/4224

⸱

16 апреля 2013 г.

 ,  , 
1Undergraduate Program, Rice University , 2Proteomics Facility, Department of Pathology, University of Texas MD Anderson Cancer Center , 3Department of Melanoma Medical Oncology, University of Texas MD Anderson Cancer Center , 4University of Texas Graduate School of Biological Sciences at Houston

В этой статье

Краткое содержание

Специфичным и чувствительным методом, чтобы разобраться в выражении профиль гликосфинголипид антигенов в органах иммунной системы и клеток описано. Метод использует масс-спектрометрии ионной ловушки позволяет поэтапно фрагментации молекулы гликосфинголипид для структурного анализа, по сравнению с химически синтезированными стандартам.

Аннотация

Гликосфинголипиды (ГСЛ) относятся к классу гликоконъюгатов — биомакромолекул, несущих структурную информацию о важнейших биологических процессах, таких как эмбриональное развитие, передача сигналов и распознавание иммунными рецепторами1-2. Они содержат сложные сахарные остатки в виде изомеров и липидные фрагменты, различающиеся по длине жирнокислотных цепей, степени ненасыщенности и гидроксилированию. Как углеводная, так и церамидная части могут иметь определяющее биологическое значение. Например, тригексозилкерамиды включают глоботриаозилцерамид (Galα4Galβ4Glcβ1Cer) и изоглоботриаозилцерамид (Galα3Galβ4Glcβ1Cer), которые имеют одинаковую молекулярную массу, но разные связи между сахарами в углеводном остатке, что обуславливает совершенно разные биологические функции3-4. В другом примере было показано, что модификация церамидной части альфа-галактозилкерамида, мощного агониста для инвариантных NKT-клеток, изменяет профили секреции цитокинов и функции этих клеток в моделях рака и аутоиммунных заболеваний на животных5. Трудности проведения структурного анализа изомеров в иммунных органах и клетках служат препятствием для определения многих биологических функций6.

В данном видео представлена визуализация метода относительно простого, быстрого и чувствительного анализа профилей гликосфинголипидов в иммунных клетках7-9. Этот метод основан на экстракции и химической модификации (перметилировании, см. ниже Рисунок 5A; в результате реакции перметилирования все OH-группы гексозы заменяются на MeO) гликосфинголипидов10-15 с последующим анализом с помощью матрично-активированной лазерной десорбции/ионизации с времяпролетной масс-спектрометрией (MALDI-TOF/MS) и масс-спектрометрии с ионной ловушкой. Для полного анализа данным методом требуется 50 миллионов иммунных клеток. Эксперименты могут быть завершены в течение одной недели. Относительное содержание различных гликосфинголипидов может быть определено путем сравнения с синтетическими стандартами. Чувствительность данного метода позволяет измерить 1% iGb3 среди изомеров Gb3 при наличии 2 fmol общей смеси iGb3/Gb39.

Масс-спектрометрия с ионной ловушкой может быть использована для анализа изомеров. Например, для анализа присутствия глоботриацилцерамида и изоглоботриацилцерамида в одном образце можно использовать фрагментацию молекул гликосфинголипидов для структурного разграничения этих двух соединений (см. Рисунок 5 ниже). Кроме того, химическая модификация сахарных остатков (путем реакции перметилирования) повышает эффективность ионизации и фрагментации для достижения более высокой чувствительности и специфичности, а также увеличивает стабильность остатков сиаловой кислоты. Экстракцию и химическую модификацию гликосфинголипидов можно проводить в стандартном сертифицированном вытяжном шкафу, а масс-спектрометрию — в центрах коллективного пользования, оснащенных приборами МС с ионной ловушкой.

Протокол

1. Лаборатория проблем безопасности

  1. Все органические растворители должны храниться в отдельных районах с четкой маркировки. См. этикетках производители типов огнетушителей требуется.
  2. Несколько реагентов, используемых являются потенциально канцерогенными, и может привести к депрессии. Эти реагенты должны быть обработаны в химической капот с вентиляционными (см. таблицу специфических реагентов и оборудования для специфики).
  3. Рекомендуется, чтобы при работе с органическими растворителями и клетки, средства индивидуальной защиты, такие как перчатки, лабораторный халат и защитные очки быть использован в любое время.

2. Добыча гликосфинголипиды из клеток лейкемии крыс

  1. Магазин RBL крыс клетки лейкемии 8 (10 млн. до 100 млн.) в 16x100 мм трубы стекло под -80 ° C условиями. Клетки подсчитываются гемоцитометр после окрашивания трипановым синим. Жизнеспособность клеток должна быть выше 95%.
  2. Извлечение липидов с помощью широкого sonicatиона в четыре раза в течение 1-2 часов каждый со смешанными растворителями полярности. Используйте 6 мл хлороформ-метанол 1:1 (объем / объем) в качестве первого и последнего растворителя. Шесть мл изопропанола: гексан: H 2 O 55:25:20 (V / V / V, снимите верхнюю фазу стремлением перед использованием) может быть использован в качестве второго и третьего растворителя. Этот растворитель получают путем смешивания изопропанол: гексан: H 2 O в соотношении 55:25:20, пожимая ее энергично, и позволяет верхней фазе появляются, которая будет удалена. Держите нижнюю фазу для использования.
  3. Следите ультразвуком с центрифугирования для осаждения нерастворимого материала. Бассейн супернатантах. Высушите их в Speedvac в течение 4 часов. Поток азота или роторного испарителя может использоваться, если Speedvac недоступен. Используйте хороший холодной ловушки провести выпаривают органических растворителей. Загрязнение органического растворителя в вакууме масляного насоса приведет к ухудшению эффективности работы вакуумного насоса.
  4. Выполните предварительный анализ с использованием высокой производительности тонкослойной хроматографии (ВЭТСХ). Для количественной оценки гликолипидов, Подготовиться 0,2% орцинола в 50% раствор серной кислоты (100 мг в 50 мл) и галактоза стандартные (40 мг в 100 мл раствора). Подготовка в 30 мкл реакционного объема серию разведений для использования в качестве стандартной кривой (от 0 г / л до 20 г / л). Добавить 20 мкл метанола для каждого разведения образца серии. Растворите каждый гликолипид образца в 200 мкл метанола, разрушать ультразвуком, а также использовать 20 мкл для измерения количества гликолипидов. В 1,5 мл пробирок Эппендорф с резьбовыми крышками (Sarstedt, 72.692.005), добавить 0,4 мл 0,2% орцинола в 50% раствор серной кислоты в каждом образце, с серией Галактоза-H 2 O-метанол решения, которые служат для стандартной кривой . Кипятить в течение 5 мин в нагревательный блок при температуре 100 ° C. Читайте оптической плотности цветной реакции при 440 нм с использованием Восход Tecan Считыватель микропланшетов. Для выполнения ВЭТСХ, использовать хлороформ: метанол: H 2 O 60:35:8 (об / об / об) в качестве растворителя для нейтральных липидов обрабатывают хлороформ-метанол 1:1 (объем / объем). Используйте изопропанол: гексан: H 2 O 55:25:20 (об / об / об)растворитель для кислот липидов (ганглиозиды). Изолированной нейтралью GSLs растворяют в 200 мл растворителя хлороформ: метанол 1:1 (объем / объем) и наносили на Merck силикагеле тонкие пластины хроматографии на Drummond Microcaps. Планшеты работают в растворитель хлороформ: метанол: H 2 O 60:35:8 (V / V / V) и сушат. Гликосфинголипиды были визуализированы с помощью орцинола-серной кислотой при 300 ° C.
  5. Для того, чтобы выделить нейтральные липиды от кислых липидов, часть из нейтральных и кислых липидов анионообменной хроматографии на маленькой колонке DEAE Sephadex-25 [DEAE Sephadex A25 смолы могут быть получены путем замачивания Sephadex-25 смолы порошка в хлороформ: метанол: H 2 O 30:60:8 (V / V / V) в течение ночи. Аспирируйте супернатанта до смолой Sephadex A25 это все, что осталось. Добавить свежие хлороформ: метанол: H 2 O 30:60:8 (об / об / об), чтобы вымыть смолу. Повторите три раза для удаления отрицательно заряженных остатков смолы Sephadex A25].
  6. Растворяться, Разрушать ультразвуком (не более 10 мин), и ресуспендируют липидов, начиная с шага 2.1 в хлороформ: метанол: H 2 O 30:60:8 (V / V / V) при необходимости.
  7. Подготовьте небольшую DEAE Sephadex A25 (Cl форма) столбца с помощью стекловаты и 9 "пипетки Пастера. Упакуйте стекловаты так тщательно, что смола порошок не проходит через колонку. Добавить DEAE Sephadex A25 (Cl форма) смолы" шея "на 9" пипетки Пастера, не давая колонке сухой. Убедитесь, что вы не видите смолы в элюента. Образцы растворяли в смеси хлороформ: метанол: H 2 O 30:60:8 (V / V / V) были распущены. Нейтральной фракции липидов потока через дробь.
  8. Элюируйте кислой фракции липидов (привязан к смолы) с 8 мл ацетата натрия в метаноле. Высушите как нейтральной и кислой фракции, опреснения их путем диализа, высушить их, Speedvac и анализировать их ВЭТСХ.

Кислая фракция содержит ганглиозиды, которые могут быть диализу на шаге 3 Реакция напрямую.Нейтральная фракция содержит не только нейтральные гликосфинголипиды, но и фосфолипидов (фосфатидилхолина и сфингомиелина), которые должны быть удалены реакции ацетилирования.

По нашему опыту, метод диализа кассеты, является более эффективным и удобным, чем трубка диализа или обратная фаза C18 колоночной хроматографии.

  1. Следующим шагом является удаление фосфолипидов из нейтральных гликосфинголипиды путем ацетилирования и peracetylation реакции. Высушите DEAE Sephadex-25 сквозного фракции в Speedvac (при охлаждении) в течение 4 часов. После того, как образцы сухой, положите их обратно в Speedvac и сухой в течение еще 4 часа. Убедитесь, что эти образцы являются полностью сухими, как и любой остаточной воды будет препятствовать peracetylation реакции.
  2. Peracetylate образцов с 1 мл пиридина и 0,5 мл уксусного ангидрида в темном месте при комнатной температуре или 37 ° C в течение ночи. Это количество ангидрида уксусной пиридина и собственно на срок додо 200 мкг гликосфинголипидов. Эта реакция может быть осуществлена ​​при 37 ° C, а GSLs имеют лучшую растворимость.
  3. Высушите перацетилированной материала Speedvac в течение 3 часов, с добавлением 1 мл толуола 3x (coevaporation) для обеспечения полного испарения. Если образцы все еще не полностью сухое, Speedvac до полного высыхания.
  4. Подготовка Florisil (Sigma-Aldrich) колонки (30-60 меш, 10 × 80 мм) в пипетку Пастера с стекловаты, используя Florisil бисера. Florisil бисера должны быть полностью высушены перед использованием, путем инкубации в 110 ° C духовке. Заполните бусины в пипетку Пастера до шеи, и равновесие в 1,2-дихлорэтан-гексан, 4:1 (объем / объем).

Элюирования из колонки Florisil очень быстро. Быстрое волатильности растворителей может привести к колонке сушки. Таким образом, все смеси растворителей должны быть подготовлены перед запуском столбца, поскольку это не возможно, чтобы остановить колонки во время элюирования.

  1. Применить peracetylated образца в 1 мл 1,2-дихлорэтана-гексан, 4:1 (объем / объем) и промыть колонку с 6 мл тем же растворителем, а затем 10 мл 1,2-дихлорэтана. Элюировать нейтральной перацетилированной GSLs с 6 мл 1,2-дихлорэтана-ацетон 1:1 (объем / объем). Этот шаг снимает перацетилированной фосфолипидов из гликосфинголипиды, потому что перацетилированной гликосфинголипиды связываться с Florisil колонку, в то время как перацетилированной фосфолипидов нет.
  2. Высушите фракций Speedvac в течение 2 часов и deacetylate с 2 мл 0,5 М метилата натрия [Sigma-Aldrich, 403067] в 2 мл метанола в течение 3 часов при комнатной температуре.
  3. Нейтрализовать смеси с 3 мл метанольного уксусной кислоты [уксусная кислота / метанол 15/85 V / V], сухая Speedvac, опреснения путем диализа [Растворите сухие продукты в 3 мл воды, и ввести в слайд-A-анализатора Диализ кассеты, диализ против воды в течение 24 часов. Меняйте воду по крайней мере дважды]. Высушите диализованной GSLs (в водном растворе) по Speedvac, пока образцы полностью высохли.

3. Химическая модификация (Permethylation) гликосфинголипидов 13

  1. Представьте GSLs (1-20 мкг) в стеклянную трубку с винтовой крышкой и тефлоновым вкладышем, а также добавить диметилсульфоксид (150 мкл) без использования специальных условий сушки или атмосфере инертного газа.
  2. Подготовка порошкообразного гидроксида натрия (40-60 мг) из частиц гидроксида натрия путем измельчения их в химический раствор с пестиком. Убедитесь, что для хранения порошков в очень сухой среде и быть осторожными, чтобы сделать измельчение в химической капот, чтобы избегать вдыхания порошка.
  3. Затем добавьте порошок гидроксида натрия в растворе образца с помощью шпателя. Добавить йодметан (80 мкл) с 100 мкл Halmilton шприц, [или 100 мкл VWR калиброванные пипетки связано с шприцом через резиновую трубку можно использовать], и встряхните смесь при комнатной температуре в течение 1 часа.
  4. Quench метилирования реакцию с водой (2 мл). Извлечение permethylated продуктов 3 разаКроме того дихлорметан (2 мл) [гликолипидов в дихлорметане фазу, которая является нижней фазе, так верхней фазы могут быть перенесены на новую стеклянную трубку, и снова экстрагируют дихлорметаном].
  5. Промойте комбинированный дихлорметан извлекает 3 раза с 2 мл воды [верхнюю фазу, которая является воду, затем могут быть утилизированы]. После последней промывки, передавать образцы новой трубы, и вытереть их насухо Speedvac.
  6. Образцы могут быть растворены в 100 до 200 мкл метанола для ESI-MS анализа.

4. MALDI-TOF анализа Permethylated Gycosphingolipids

  1. Выполните MALDI-TOF-MS и MALDI-TOF/TOF-MS/MS эксперименты на MALDI TOF-TOF масс-спектрометр (Applied Biosystems 4700, Foster City, CA). Подготовка матрицы путем смешивания 50% объема 10 мг / мл диоксибензойной кислоты (DHB) в ацетонитриле и 50% объема 0,1% трифторуксусной кислоты (ТФК) в воде.
  2. Матрица DHB может быть выставлен на MALDI маленький круглый щитT (1 мкл), затем 1 мкл (содержащий 100 нг GSLs) местная образца растворяют в метаноле. Применить медленно и дайте ему высохнуть перед анализом.

5. Ion Trap MS Анализ Permethylated гликосфинголипиды

  1. Провести масс-спектрометрии на линейной ионной ловушки масс-спектрометр (КТЛ, ThermoScientific, San Jose, CA) с использованием nanoelectrospray источника, 0,30 мкл / мин расход при 230 ° C капиллярной температура в режиме положительных ионов с 30-50% энергии столкновения. Установить энергий столкновения, чтобы оставить минимальную остаточную обилие предшественника ионов. Обнаружение всех ионов, как натрий аддуктов.
  2. Определить iGb3 (Galα3Galβ4Glcβ1Cer) в изобарном смесь Gb3 (Galα4Galβ4Glcβ1Cer) и iGb3 (Galα3Galβ4Glcβ1Cer) стандартов путем сравнения различных моделей MS 4 ионы продукт от sodiated молекулярных ионов через фрагмент гликана м / з 667 и терминал дисахарид 1 - ен ионных м / з 445 (т.е.X → 667 → 445 →, X означает, что молекулярный ион обнаружен в MS 1) чистой permethylated iGb3 (Galα3Galβ4Glcβ1Cer) стандартов с помощью ESI-ЛИТ-MS с теми permethylated Gb3 (Galα3Galβ4Glcβ1Cer).

Результаты

Пример анализа MALDI MS из гликосфинголипиды от лейкемии крыс линии клеток RBL (антигенпрезентирующих тип клеток, который представляет гликосфинголипид антигенов NKT клеток) показано на рисунке 3. Ионы могут быть отнесены к конкретным гликосфинголипид структуры (рис. 3А). В RBL клетки, обработанные по NB-DGJ 16, препарат, который ингибирует синтез гликосфинголипид, значительное сокращение всех гликосфинголипиды наблюдалось (рис. 3В). Структурные изомеры не могут быть выделены. MS / MS мощности Applied Biosystems 4700 позволяет фрагментации ионов MS1 MS 2-фрагменты, позволяющие ограниченной структурной информации, которые будут созданы. Тем не менее, MS2 анализа часто не достаточно, чтобы различать олигосахарид изомеров.

Ионно-Trap MS анализа гликосфинголипиды позволяет изучать изомеры, такие как iGb3 (Galα3Galβ4Glcβ1Cer) и Gb3 (Galα4Galβ4Glcβ1Cer), которые могут существовать в виде trihexosylceramide ионы обнаружены в 3А. Чтобы обнаружить такие изомеры, стандартный iGb3 и Gb3 были проанализированы несколько раундов фрагментации, пока не было обнаружено различий (рис. 4а и 4б). В примере, представленные здесь (рис. 5С) iGb3 и Gb3 может подвергаться дискриминации по сравнению с стандартными iGb3 и Gb3.

figure-results-1
Рисунок 1. Блок-схема процедуры гликосфинголипид добычи и химической модификации гликосфинголипиды (permethylation). Гликосфинголипиды были извлечены из клеток органическими растворителями. Для удаления не гликосфинголипиды, липиды могут быть перацетилированной и деацетилированного. Во-вторых, гликосфинголипиды были химически модифицированы permethylation реакции, что повышает чувствительность и специфичность MS detectioн. Наконец, гликосфинголипид профилей определяется с помощью MALDI-TOF масс-спектрометрии ионной ловушки и масс-спектрометрии.

figure-results-2
Рисунок 2. Гликосфинголипид Количественное по орцинола Серная кислота метод: Количественное гликосфинголипиды использовании 0,2% орцинола в 50% растворе серной кислоты и глюкозы в стандартной кривой.

figure-results-3
Рисунок 3. Glycosphingolipidomics клеток лейкемии крыс A. представитель MALDI масс-спектра;. Каждого иона представляет собой специфическую структуру гликосфинголипид, структурных изомеров не могут быть выделены B. NB-DGJ, препарат, который ингибирует синтез гликосфинголипид, с.ignificantly сводит все гликосфинголипиды производится в RBL клеток.

figure-results-4
Рисунок 4. Тандемной масс-спектрометрии изомеров гликосфинголипиды. А. Характеристика пути разложения для положительного режиме ионной ловушки масс-спектрометрии permethylated GSLs GB 3 Cer и IGB 3 Cer. Gb 3 и IGB 3, четко отделены от их образцы фрагментации. Различия в связи отражены в MS 4 продукта ионов в соответствии с изобарической м / з 445 прекурсоров. B. Представитель результаты, показывающие, iGB3 может быть измерена в смеси iGb3/Gb3 изомеров. Звезды указывают диагностических ионов для iGb3 только. Нажмите здесь, чтобыувеличить фигуру.

figure-results-5
Рисунок 5. Ионной ловушкой MS позволяет провести анализ изомеров гликосфинголипиды. А. Стандартные iGb3 и Gb3 показать разницу фрагментации профиль после 4 туров фрагментации в ионной ловушке спектрометра LTQ массы. B. Характеристика MS 4 профиля ионы, полученные из iGb3 или Gb3. C. Trihexosyleramides являются смесями iGb3 и Gb3 изомеры, которые могут быть идентифицированы по ионной ловушкой MS методом (рисунок на Dapeng Zhou). Нажмите, чтобы увеличить показатель .

Обсуждение

Glycome, термин, введенный по аналогии с геномом и протеома, относится ко всем сахарида структур организма. Чтобы в полной мере понять многообразие функций гликозилирования требуют комплексного подхода, включая функциональные и структурные glycomics исследований. Оба осложняется не-управляемых с помощью шаблонов характер гликана биосинтеза, в результате сложность и многообразие структур гликанов, частое участие агликона структуры в модуляции гликана лиганд-рецепторных взаимодействий на молекулярном уровне, и функциональное значение низкого лигандов изобилия.

Принято считать, что масс-спектрометрии (МС) является незаменимым методом для структурных исследований glycomics, особенно для идентификации и характеристике низкой лигандов изобилия. Для наблюдения гликанов или гликоконъюгатов в качестве молекулярных видов, мы часто используем высокую эффективность, низкую энергию ионизации метод, называемый ионизации электрораспылением (ESI). Для получения дополнительной Detбеспокоило характеристику структуры гликанов, она имеет важное значение для выбора отдельных видов молекул и сломать гликанов на более мелкие куски. Обычно это делается при столкновении вызванной диссоциации, которая включает в себя активацию гликанов через столкновение с молекул инертного газа. Увеличение энергии вызывает разрыва связей, и систематический анализ полученных фрагментов предоставляет информацию о молекулярной структуре гликана. Часто, "подпись" фрагменты могут быть созданы, которые являются диагностическими для конкретного гликана структурные особенности. Вместе с молекулярной массой, эти фрагменты могут иногда быть достаточным для идентификации гликаны, но в прошлом гораздо больше информации, было необходимо, чтобы полностью охарактеризовать их, особенно если структура романа. Эти методы включают сахара анализа состава, газовой хроматографии масс-спектрометрии анализа частично метилированные alditol ацетаты для анализа сцепления, а также конкретные пищеварения гликозидазой 17.

Как показала за последние десять лет 18-19, несколько раундов низкой фрагментации энергии, которая может быть эффективно осуществлены в ионной ловушки масс-спектрометр (IT-MS), значительно улучшает информации выходом из гликана масс-спектрального анализа . С четырех или пяти раундов фрагментации (которая не может быть сделано с другими документами MS), можно различить изомерные гликанов, которые содержат те же компоненты, сахар, расположенных в различных связей сахар, даже если они находятся вместе в смеси компонентов с теми же Молекулярная масса (изобары). Для этого анализа гликанов были производные, заменой всех свободных гидроксильных групп с использованием метильных групп permethylation. В то время как структурное назначение гликанов возможно без permethylation, permethylation повышает чувствительность 17.

Levery и Чжоу, объединили все потенциальные преимущества IT-MS методологии, включая обнаружение изомерных STRUctures использования сигнатурных диагностических ионов, наблюдается только в MS 4 и MS 5 спектров для высокочувствительных идентификации и количественного определения гликосфинголипиды присутствует в виде нескольких изобарических смеси 7-9. В теории, мы можем быть в состоянии идентифицировать каждую существующую структуру гликолипидов, до предоставления стандартных гликолипиды, которые могут быть химически синтезированы.

Важных шагов этого анализа являются скорость восстановления GSLs из биологических образцов. Обычно 80 мкг GSL могут быть восстановлены со 100 млн. опухолевых клеток, таких как RBL. Для создания достаточной молекулярных ионов для нескольких раундов фрагментации в ионной ловушки масс-спектрометры, по меньшей мере 10 микрограмм опухоли GSLs не требуется. Низкая доходность GSLs во время очистки приведет к низкой численности ионов, которые не могут быть подвергнуты дальнейшей фрагментации. Успех анализа зависит от количества GSLs, которые выздоровели. Как правило, конечная концентрацияentration из permethylated GSLs должна достигать 1 мг / мл, растворяют в метаноле, перед проанализированы на нано-электрораспылением источник. Предел для тщательного анализа MS п зависит от обилия конкретных ионов в MS 1 анкету. Типичный E 7 ионный изобилия, необходимую для тщательного анализа MS 5. Низкий выход GSLs во время очистки может быть вызвано потерей GSLs во время peracetylation шаг (который удаляет фосфолипидов), когда за ацетилированный GSLs должен быть привязан к Florisil колоночной хроматографии смолы, промывают, а затем элюировали. Чтобы обеспечить связывание за ацетилированный GSLs на силикагеле, образцы должны быть перегружены в два раза к колоночной хроматографии после прохождения через.

Раскрытие информации

DZ является консультантом Biotex, Хьюстон, штат Техас, и изобретатель, участвующих в патентов, связанных с технологиями, упомянутые в этой статье, выданные или в приложении.

Благодарности

DZ поддерживают MD Anderson Cancer Center и гранты NIH AI079232. MD Anderson Cancer Center будет частично поддержана NIH грант CA16672.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
1,2-Дихлор–этанSigma-Aldrich34872Канцерогенный
Уксусная кислотаVMRJT9524-0
Уксусный ангидридFluka45830
АцетонFischerA18P-4
ХлороформFischerC606-1Канцерогенный
DEAE Sephadex A25 (Cl-форма)GE Healthcare BiosciencesAB 17—170-01100 г
Декан (безводный):Sigma-Aldrich457116100 мл
Дихлоруксусная кислотаSigmaD54702Канцерогенная
Диализная кассетаFischer(Pierce)66110Slide-A-Lyzer, 3500 MWCO, 3-12 мл
ДМСОThermo Scientific20684
ЭтилацетатFischerUN1173
ФлоризилFluka46384для заполнения хроматографической колонки
ГексаныEMDHX0290-6
ЙодметанRiedel de Haen, Germany03810стабилизирован серебряной фольгой, канцерогенный
МетанолVWR/EMDMXO475-1
Нейтральный гликосфинголипидный QualmixMatreya1505
Смесь моносиалганглиозидовMatreya1508
Смесь дисиалганглиозидовMatreya1509
Лактозилкерамид и сиалозильные производныеMatreya1510
Ганглиотетраозилкерамид и сиалозильные производныеMatreya1511
Пипетки ПастераFischer13-678-6A9"''
Пиридин:Sigma270407
Гидроксид натрия:BDH0292500 г
Метилоксид натрияSigma4043670.5 M раствор в метаноле
ТолуолJ.T. Baker9351-034 л
Пипетки ПастераFischer13-678-6A9"''
Стекловолокно (стекловата)Corning Incorporated3950стекло Pyrex 9989
Стеклянные пробирки 12x75 ммFischer14-962-10B
Калиброванные пипетки (100 мкл)VMR53432-921
Одноразовые боросиликатные пробирки 16x100 мм x1,000Fischer14-961-29С завинчивающимися крышками
Крышки для стеклянных пробирокKimble40566Cразмер/13-415
Тсх-пластинки MerckSigmaZ 29, 301-6
Стеклянная камера для ТСХSigmaZ 12,619-5
Микрокапилляры DrummondDrummond scientific company1-000-010010 μl, для нанесения проб на ТСХ
Спектрофотометр для микропланшетов SunriseTecanA-5082
Хроматографическая бумага WhatmanFischer05-716-3E18 см x 34 см, для ТСХ-камеры
Реагент для распыления на основе орцинола и хлорида железа (III)SigmaO7875Для детектирования гликосфинголипидов на ТСХ-пластинках
Устройство для распыления PrevelSigmaZ 36,555-6
Зонд-соникаторFischerFS20
ЦентрифугаSorvallLegend RT
Вакуум-концентратор SpeedvacSavantAS160С химической ловушкой для органических растворителей
Масс-спектрометр MALDI TOF-TOFApplied BiosystemsProteomics 4700
Ионно-ловушечный масс-спектрометрThermoLTQ

Ссылки

  1. Schnaar, R. L., Suzuki, A., Stanley, P. Chapter 10 Glycosphingolipids. Essentials of Glycobiology. Varki, A., Cummings, R. D., Esko, J. D., Freeze, H. H., Stanley, P., Bertozzi, C. R., Hart, G. W., Etzler, M. E. , 2nd edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor, N.Y. (2009).
  2. Bendelac, A. Chapter 17 NKT cells and other Innate-like T and B lineages. Fundamental Immunology. Paul, W. E. , 6th edition, Lippincott Williams & Wilkins. (2011).
  3. Jacewicz, M., Clausen, H., Nudelman, E., Donohue-Rolfe, A., Keusch, G. T. Pathogenesis of shigella diarrhea. XI. Isolation of a shigella toxin-binding glycolipid from rabbit jejunum and HeLa cells and its identification as globotriaosylceramide. J. Exp. Med. 163 (6), 1391-1404 (1986).
  4. Zhou, D. The immunological function of iGb3. Curr. Protein Pept. Sci. 7 (4), 325-333 (2006).
  5. Miyamoto, K., Miyake, S., Yamamura, T. A synthetic glycolipid prevents autoimmune encephalomyelitis by inducing TH2 bias of natural killer T cells. Nature. 413 (6855), 531-534 (2001).
  6. Zhou, D., Levery, S. B., Hsu, F. F., Wang, P. G., Teneberg, S., Almeida, I. C., Li, Y., Xu, H., Wang, L. X., Xia, C., Ibrahim, N. K., Michael, K. Immunologic mapping of glycomes: implications for cancer diagnosis and therapy. Frontiers in Bioscience. S3, 1520-1532 (2011).
  7. Li, Y., Thapa, P., Hawke, D., Kondo, Y., Furukawa, K., Furukawa, K., Hsu, F. F., Adlercreutz, D., Weadge, J., Palcic, M. M., Wang, P. G., Levery, S. B., Zhou, D. Immunologic glycosphingolipidomics and NKT cell development in mouse thymus. J. Proteome Res. 8 (6), 2740-2751 (2009).
  8. Li, Y., Zhou, D., Xia, C., Wang, P. G., Levery, S. B. Sensitive quantitation of isoglobotriaosylceramide in the presence of isobaric components using electrospray ionization-ion trap mass spectrometry. Glycobiology. 18 (2), 166-176 (2008).
  9. Li, Y., Teneberg, S., Thapa, P., Bendelac, A., Levery, S. B., Zhou, D. Sensitive detection of isoglobo and globo series tetraglycosylceramides in human thymus by ion trap mass spectrometry. Glycobiology. 18 (2), 158-165 (2008).
  10. Hakomori, S. I. A rapid permethylation of glycolipid, and polysaccharide catalyzed by methylsulfonyl carbanion in dimethyl sulfoxide. J. Biochem. (Tokyo). 55, 205(1964).
  11. Ciucanu, I., Kerek, F. Rapid and simultaneous methylation of fatty and hydroxy fatty acids for gas-liquid chromatographic analysis. Carbohydr. Res. 131, 209(1984).
  12. Kang, P., Mechref, Y., Klouckova, I., Novotny, M. V. Rapid Commun Mass Spectrom. 19 (23), 3421-3428 (2005).
  13. Levery, S. B., Hakomori, S. Microscale methylation analysis of glycolipids using capillary gas chromatography-chemical ionization mass fragmentography with selected ion monitoring. Methods Enzymol. 138, 13-25 (1987).
  14. Spooncer, E., Fukuda, M., Klock, J. C., Oates, J. E., Dell, A. Isolation and characterization of polyfucosylated lactosaminoglycan from human granulocytes. J. Biol. Chem. 259 (8), 4792-4801 (1984).
  15. Ciucanu, I., Costello, C. E. Elimination of oxidative degradation during the per-O-methylation of carbohydrates. J. Am. Chem. Soc. 125, 16213(2003).
  16. Platt, F. M., Neises, G. R., Karlsson, G. B., Dwek, R. A., Butters, T. D. N-butyldeoxygalactonojirimycin inhibits glycolipid biosynthesis but does not affect N-linked oligosaccharide processing. J. Biol. Chem. 269 (43), 27108-27114 (1994).
  17. Mulloy, B., Hart, G. W., Stanley, P. Chapter 47 Structural Analysis of Glycans. Essentials of Glycobiology. Varki, A., Cummings, R. D., Esko, J. D., Freeze, H. H., Stanley, P., Bertozzi, C. R., Hart, G. W., Etzler, M. E. , 2nd edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor, N.Y. (2009).
  18. Ashline, D., Singh, S., Hanneman, A., Reinhold, V. Congruent strategies for carbohydrate sequencing. 1. Mining structural details by MSn. Anal. Chem. 77 (19), 6250-6262 (2005).
  19. Zhang, H., Singh, S., Reinhold, V. N. Congruent strategies for carbohydrate sequencing. 2. FragLib: an MSn spectral library. Anal. Chem. 77 (19), 6263-6270 (2005).

Перепечатки и разрешения

Теги

Анализ гликосфинголипидовмасс-спектрометрияMALDI-TOF/MSмасс-спектрометрия с ионной ловушкойэкстракция липидовреакция перметилированияанионно-обменная хроматографиятонкослойная хроматографияразличение изомеровиммунные клетки
Масс-спектрометрического анализа гликосфинголипид Антигены
Связаться с нами
Порекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия использования

Политики

© 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.