1. Удаление половых путей
- Усыпить мыши с использованием утвержденных принципов. Сделать низкой средней линии разреза и убрать кожу.
- Изолировать и удалять целые половых путей, из яйцевода в вагинальное отверстие.
- Открыть весь тракт продольно с ножницами.
- Вырезать половых путей с мелкими хирургическими ножницами на мелкие кусочки (примерно <1 мм) в чашку Петри с полной RPMI-10/EDTA (см. формулу ниже) и перемешать ткани в 125 мл колбу при комнатной температуре на магнитной мешалки установлен для 15 мин. Эта процедура повторяется дважды, а затем супернатант, который содержит эпителия и другого мусора, отбрасывается.
- Вылейте содержимое колбы через ячейки сетчатого фильтра (40 мкм). Смойте остатки EDTA с полной среде.
Полное RPMI/10: 500 мл RPMI (Gibco), 10% эмбриональной телячьей сыворотки (FBS), инактивированной нагреванием, 5 мл пенициллина / стрептомицина, 5 мл 1М HEPES.
Полное RPMI-10/EDTA: 10% RPMI (см. выше) с 5 мкм EDTA
2. Дайджест ткани гениталий тракта
- Передача части ткани в новую колбу с 20 мл свежего RPMI-10/collagenase (см. рецепт ниже) и переваривать ткань при 37 ° С в течение 1 ч на магнитной мешалки установлен энергично размешать ткани.
Полное RPMI-10/collagenase: Прямо перед использованием, восстановить коллагеназы типа VIII (Sigma; хранить при -20 ° C, или в соответствии с инструкциями производителя.), Добавить в полном RPMI/10 до конечной концентрации 450-500U/ml. - После первого пищеварения, собирают супернатанты через сито 100 мкм клетки, удерживает клетки на льду.
- Передача непереваренной ткани в новую колбу и повторите шаг 2,1 еще два раза с использованием свежих полных RPMI-10/collagenase на общую сумму 3 отдельных пищеварения. На данный момент, никаких видимых частей ткани должны быть в растворе.
- Бассейн все супернатанты вместе с образца и собираем через сито 100 мкм клетки. Побочные слоктя вниз. Сотовые гранулы будут разделены с использованием Percoll градиентов.
3. Разделение половых клеток путей использования Percoll градиентов
- Подготовка каждой концентрации Percoll перед использованием:
- 100% изотонический Percoll: смешайте 9:01 складе Percoll (Pharmacia Biotch) по сравнению с 10-кратным PBS. рН его до 7,4 использовании HCL.
- 40% Percoll решение: смешать 40 мл 100% изотонический Percoll и 60 мл полной RPMI.
- 70% Percoll решение: смешать 70 мл 100% изотонический Percoll с 30 мл полной RPMI.
- Ресуспендируют каждой ячейки гранул, начиная с шага 6 в 40% решений Percoll. Равном объеме 70% Percoll будет использоваться, чтобы сделать градиентов. Есть два способа создать градиент труб:
- Под слоем: добавить клеточной суспензии с 40% Percoll в градиенте трубки, а затем осторожно под слоем 70% Percoll.
- За слоя: добавить 70% Percoll в трубку, а затем осторожно и медленно загружается 40% Percoll содержащие клетки насверху.
- Градиент образцы будут центрифугировали при 900 х г при комнатной температуре в течение 20 мин с тормозом прочь.
- Лимфоцитов будет на уровне интерфейса между 40% и 70% слоев Percoll. Осторожно собрать интерфейс слой, промывают RPMI 1:3 и спином вниз на 740 мкг. Лимфоцитов будет в осадок клеток и готовы к дальнейшему использованию.
4. Представитель Результаты
Пример выделения лимфоцитов мыши половых путей и проточной цитометрии (FACS) анализ показано на рисунке 1. Генитальный тракт был отстранен от хламидий muridarum интравагинально инфицированных мышей 7 дней после заражения. Два половых путей были объединены вместе для того, чтобы иметь достаточно лимфоцитов для функционального и фенотип рассмотрение FACS. Расчлененный ткани были обработаны пищеварения и выделения шаги, как описано выше. Суспензии отдельных клеток окрашивали для различных флуорохромом сопряженныхмоноклональных антител против CD3 мыши, CD4 и CD8. На рисунке 1 показан сюжет точка-презентация CD4 + Т-клеток CD8 сравнению с положительным Т-клеток CD3 закрытого на положительные Т-лимфоциты. Наша процедура может исследовать лимфоциты изолированы из половых путей различных моделей болезней для оценки различных иммунных клеток, функциональные и фенотипические характеристики при различных заболеваниях в мышиной модели. Они включают в себя разнообразные иммунные клетки, такие как дендритные клетки, нейтрофилы, макрофаги, NK, NKT, Т-клетки (Ag-специфических Т-клеток), В-клетки и т.д. 3-10.

Рисунок 1. Лимфоциты выделяли из половых путей мышей, зараженных Chlamydia muridarum, используя метод, представленный здесь. После полной процедуры разделения, лимфоциты были окрашены флуорохромом сопряженных CD3, CD4 и CD8. Квадрант данные были закрытом на CD3 + лимфоцитов,показывающие CD4 + CD8 + по сравнению с и процент закрытых ячеек.