Эффективное использование Иммунопреципитация хроматина Ограничение количество биомассы

Summary

Мы описываем надежного метода иммунопреципитации хроматина с использованием первичных Т-клеток. Метод основан на стандартных подходов, но использует конкретный набор условий и реагентов, которые повышают эффективность для ограниченного количества клеток. Важно отметить, что подробное описание фазовый анализ Данные представлены.

Abstract

Иммунопреципитации хроматина (чип) является широко используемый метод определения взаимодействия различных белков с ДНК в хроматин живых клеток. Примеры включают последовательности конкретных ДНК-связывающий факторы транскрипции, гистонов и их различные состояния модификации, ферменты, такие как РНК-полимеразы и вспомогательные факторы, а также компоненты репарации ДНК. Несмотря на свою вездесущность, есть отсутствие соответствующий современным требованиям, подробные методологии и скамейки подготовке материалов и для точного анализа позволяет количественным показателям взаимодействия. Из-за этого недостатка информации, а также потому, что, как и любой иммунопреципитации условия должны быть повторно оптимизирован для новых наборов экспериментальных условий, чип анализа является восприимчивым к неточной или плохо количественные результаты.

Наш протокол, в конечном счете, полученных из семенной работы по транскрипционный фактор: ^1,2 взаимодействий ДНК, но включает в себя ряд улучшений сенсибилизацииВиты и воспроизводимость для трудных для получения типов клеток. Протокол успешно используется ^3,4, как с помощью количественной ПЦР количественно ДНК обогащения, или с использованием полуколичественного варианта ниже протокола.

Этот количественный анализ ПЦР усиленный материал выполняется вычислительно, и представляет собой ограничивающий фактор в анализе. Важные элементы управления и другие соображения включают в себя использование изотипу антител, а также оценки контрольной области геномной ДНК, таких как межгенной области предсказал не быть связанными белка в исследовании (или ожидается не показать изменения под экспериментальных условий). Кроме того, стандартная кривая исходного материала для каждого образца чип используется для получения абсолютных уровнях обогащения экспериментального материала. Использование стандартных кривых помогает принимать во внимание различия между наборов праймеров, независимо от того, насколько тщательно они предназначены, а также эффективностью отличаютсяences во всем диапазоне концентраций шаблон для одного набора праймеров. Наш протокол отличается от других, которые доступны в ^5-8, что мы широко охватывали спустя, фазовый анализ.

Protocol

1. Выделение мышью селезенки Наивные CD4 Т-клеток

1. Жертвоприношение мышь гуманным образом согласуется с Институциональные уходу и использованию животных комитета (IACUC) протоколов. Проанализируйте селезенки и поместить его в чашку Петри, содержащую 10 мл DMEM с 10% FBS.
2. Раздавить селезенки использованием матового концами двух предметных стекол, чтобы освободить спленоцитам. Передача клеточной суспензии в 15 мл коническую трубку.
3. Собирают клетки центрифугированием при 200 х г (~ 1200 оборотов в минуту на клинической центрифуге с типичным диаметром ротора) в течение 5 мин при 4 ° C.
4. Ресуспендируют клеток в 2 мл ACK буфера для лизиса эритроцитов, 1 мин при комнатной температуре (RT). Остановить реакцию добавлением 8 мл DMEM с FBS.
5. Собирают клетки центрифугированием при 200 х г в течение 5 мин при 4 ° С.
6. Ресуспендируют клеток в 5 мл DMEM содержащей FBS и проходят через 70 мкм сетчатый фильтр (BD Сокол, Cat # 352350). Граф клеток и перейтик изоляции наивных CD4 Т-клеток с использованием набора для выделения CD4 (Miltenyi, Cat # 130-095-248), следуя инструкциям производителя. Сбор наивным Т-клеток CD4 центрифугированием при 200 х г в течение 5 мин при 4 ° С. Ресуспендируют клеток в 10 мл среды DMEM с FBS.

2. Подготовка хроматина

1. Добавить 37% формальдегида в конечной концентрации 1% к суспензии клеток в DMEM и осторожно встряхнуть при комнатной температуре (например, при помощи Nutator) в течение 15 мин к сшиванию ДНК-белковых комплексов.
2. Стоп сшивающего добавлением 1 М глицина в конечной концентрации 125 мМ. Продолжайте рок в течение 5 мин при комнатной температуре.
3. Собирают клетки центрифугированием при 200 х г в течение 5 мин при 4 ° С.
4. Вымойте клетки ресуспендированием в 5 мл ледяной PBS содержащих ингибиторы протеазы. Стирать в ледяной PBS содержащих ингибиторы протеазы 3 раза общего и собирать клетки центрифугированием при 4 ° С.
5. Ресуспендируют клеток в 1 млледяной лизиса клеток буфер, содержащий ингибиторы протеазы. Инкубируют на льду в течение 15 мин. Эффективность лизиса клеток может быть определена путем ресуспендирования небольшую аликвоту клеток в 0,4%-ного раствора трипанового синего (Sigma, Cat # T8154) и наблюдение с помощью микроскопа.
6. Собирают ядер центрифугированием при 200g (обычно ~ 1200 оборотов в минуту) в течение 5 мин при 4 ° C. Осторожно удалите супернатант.
7. Ресуспендируют ядер в 500 мкл буфера для лизиса ядерный содержащего ингибиторы протеаз. Инкубируют на льду в течение 15 мин.
8. Разрушать ультразвуком клеток с использованием Sonicator Misonix 3000, размер зонда 1,6 мм: Выходной уровень 4, 15 сек взрыв, 4 раза на льду. Каждый образец должен быть охлажден на льду в течение 1-2 мин, после обработки ультразвуком еще раз, чтобы избежать перегрева образцов. Перегрев может вызвать изменение поперечных связей.
9. Центрифуга ультразвуком хроматина при 16000 х г (~ 13200 оборотов в минуту в микроцентрифуге) в течение 5 мин при 4 ° C.
10. Возьмите 20 мкл аликвоты ясно supernatant, добавляют краситель ДНК загрузки и проверки ультразвуком ДНК с помощью электрофореза на 2% агарозном геле (идеальный размер ультразвуком ДНК для большинства применений составляет 200-500 п.н.).
11. Определение концентрации ДНК с помощью УФ спектрофотометра. Стриженый хроматина может быть использована немедленно создать хроматина реакции иммунопреципитацией или хранили при -80 ° C. Обычно мы получаем 7,5-10 мкг ДНК из 2-3 X 10 ⁶ очищенных CD4 Т-клеток на мышь.

3. Хроматина Иммунопреципитация (Все шаги должны осуществляться при температуре 0-4 ° C)

1. Развести ультразвуком хроматина с ДНК концентрации 5-10 мкг / мл (общий объем = 1 мл) на чипе буфером для разведения с ингибиторами протеазы.
2. Сохранить 100 мкл (10%) в качестве входных данных. Хранить на льду.
3. Алиготе 450 мкл каждого из двух 1,7 мл пробирок микроцентрифужную как изотипического контроля (мышь или кролика IgG) и интерес антитело. Если несколько антител того же изотипа использовании одного контр изотипаПР будет достаточно для выполнения такого анализа. Вам понадобится несколько элементов управления изотипом если антитела другого источника животного или изотипом используются.
4. Добавить 2-5 мкг антитела, в зависимости от специфичности антител использовали или изотипа контроль к соответствующей трубы.
5. Rock трубы использовании Nutator в течение ночи при 4 ° С, чтобы позволить формирование хроматин-антитело.
6. Добавить 25 мкл белка G магнитных шариков (1:1 суспензии взвешенных бусы) к вышеуказанной смеси и позволить, чтобы качаться в течение 2 ч при 4 ° С. Бусы из наших поставщиков может быть использован непосредственно.
7. Поместите микроцентрифужную труб на магнитную стойку и позволяют собирать бусы на намагниченной стороной.
8. Осторожно снимите решение стремлением не нарушая бисером.
9. Добавить 1 мл промывочного раствора низкой соли и позволяют осторожно встряхнуть течение 5 мин на Nutator. Соберите бусин с помощью магнитного подставке, и снимите промывочного раствора. Повторите еще раз.
10. Добавить 1 мл промывочного раствора высокой соли и позволяют качать течение 5 мин на Nutator. Соберите валиками магнитного подставке, и снимите промывочного раствора. Повторите еще раз.
11. Добавить 1 мл промывочного раствора лития хлорида и позволяют качать течение 5 мин на Nutator. Соберите валиками магнитного подставке, и снимите промывочного раствора. Повторите еще раз. Использование LiCl улучшает эффективное удаление неспецифического хроматина взаимодействия с шариками.
12. Добавьте 1 мл раствора ТЕ и позволяют качать течение 5 мин на Nutator. Соберите валиками магнитного подставке, и снимите промывочного раствора.
13. Элюции ДНК из гранул путем добавления 250 мкл буфера для элюции. Rock в течение 15 мин при комнатной температуре. Отбирают пипеткой элюата и сохраните этот материал в новой трубки микроцентрифужную 1,7 мл. Повторите еще раз, и объединить оба элюирований. Откажитесь от бисера.
14. Чтобы изменить сшивок добавляют 5 М NaCl до конечной концентрации 0,3 М и 1 мкл РНКазы А (20 м г / мл) в элюированной ДНК. Добавить 400 мкл буфера для элюции с входами сохранен на шаге 3.2 до объема 500 мкл. К входам добавить NaCl до 0,3 М, 1 мкл РНКазы А, 10 мкл 0,5 М ЭДТА, 20 мкл 1 М Трис-HCl, рН 6,5 и 1 мкл протеиназы К (20 мг / мл).
15. Инкубировать пробирки в течение ночи при 65 ° С в сухом нагревательный блок. Чтобы избежать испарения образцов, печати или разместить груз на трубы, чтобы удержать их от открытия. Гибридизации печи также может быть использован.
16. Пусть трубы охлаждаться до комнатной температуры. Добавляют 1 мл 100%-ного этанола и инкубируют 2 ч, в течение ночи при -80 ° С для осаждения ДНК.
17. Центрифуга труб при 16000 х г в течение 15 минут, чтобы осадить ДНК. Промойте осадок ДНК один раз 70% этанолом и воздушно-сухих гранул. Ресуспендируют осадок ДНК в 100 мкл дистиллированной воды автоклаве.
18. Очищают ДНК с использованием набора QIAquick центрифужных колонок и элюировали в общем объеме 50 мкл буфера для элюции. Эта ДНК готов к использованию для ПЦР.

"> 4. Приготовление реакционной ПЦР (Все шаги должны быть выполнены на льду)

1. Соберите все образцы ДНК из чипа и соответствующего входных отсчетов. Кроме того, собирать всех реагентов для ПЦР и праймеров для целевого региона, а также управления региона. Используйте "горячего старта" Taq ДНК-полимеразы. Мы будем использовать SYBR Green основе анализа для количественной амплификации ДНК в этой процедуре, но количественной ПЦР Mastermix наборы могут быть использованы, если это необходимо.
2. Сделать серийные разбавления вход ДНК для получения стандартной кривой в анализе количественной ПЦР: например, 10%, 1%, 0,1% и 0,01% в элюирующего буфера (от спин QIAquick столбцов на этапе 3.18). Диапазон концентрации и приращение этой стандартный набор шаблонов кривой может меняться в зависимости от ожидаемого уровня чип обогащения, и т.д. Распределить 10 мкл входных выборок ДНК в соответствующие лунки 96-луночного планшета (Genemate, кошка # T-3182-1 ), в двух экземплярах.
3. Внесите 10 мл ChIP ДНК из изотипом контроля, а также специфических антител в соответствующихскважин, в трех экземплярах.
4. Сделать "мастер смеси", содержащей либо мишень праймеров или контроль праймеры (0,1 мкМ конечную концентрацию каждого праймера) и обойтись 10 мкл в соответствующие лунки. Например, в шаблоне ниже обойтись мастер-микс содержащие целевые праймеров в колодцы отмечены зеленым и обойтись мастер-микс с управлением праймеров в колодцы отмечены красным.
5. Крышка ПЦР планшет с оптической пленкой герметизации и центрифугируют при 500 х г в клинической центрифуге (~ 1200 оборотов в минуту) в течение 1 мин при комнатной температуре, чтобы собрать все в нижней части скважины.
6. Начало реакции ПЦР. Мы будем использовать LightCycler 480 II (Roche) операционной LightCycler 480SW 1.5 программного обеспечения для запуска кПЦР в этом примере.

Преинкубация: 1 цикл: 95 ° C / 5 мин.

Усиление: 40-45 циклов: 94 ° C / 5 сек, 60 ° С / 5 сек, 72 ° C/10 сек (температура отжига должна быть на 2-3 ° С ниже, чем температура плавления температуре праймеров).

Кривая плавления: 1 цикл.

Охлаждение: 1 цикл.

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

10% Входное

10% Входное

Изотипом

Конкретный

B

1% Входной

1% Входной

Изотипом

Конкретный

C

0,1% Входной

0,1% Входной

Изотипом

Конкретный

Ре

0,01% Входная

0,01% Входная

Ми

10% Входное

10% Входное

Изотипом

Конкретный

Фа

1% Входной

1% Входной

Изотипом

Конкретный

Соль

0,1% Входной

0,1% Входной

Изотипом

Конкретный

H

0,01% Входная

0,01% Входная

Зеленый: Используйте целевые праймеров региона.

Красный: используйте праймеры управления региона.

5. Анализ

1. Программа кПЦР программного обеспечения для количественного определения абсолютного количества ДНК. Важно отметить, что использование стандартной кривой для интерполяции ДНК количествах в конкретных неизвестных и изотипа образцов позволяет оценить и соответствующие качества и эффективности всех наборов праймеров в диапазоне концентраций найдены в образцах. Кроме того, она также обеспечивает морэлектронной надежный метод для преобразования Cq (C _Т или С _р) до конечного значения относительного раза результаты, чем usingΔΔCq обогащения и связанных с ними методов.
2. К образцу редактор и отметить лунках, содержащих входные выборки из различных разведениях (10%, 1%, 0,1% и 0,01%) и их стандартные значения кривой. Также маркировать скважин с неизвестными образцами чип, точно так, как пластины ПЦР выложено. В эквивалентной программного обеспечения, используемого в других машинах кПЦР, назначать множеств, соответствующих реакций для каждой пары праймеров, стандартные значения кривой и экспериментальной и контрольной пробы изотипом соответственно.
3. В программном обеспечении LightCycler, перейдите на подмножества редактор и отметьте подмножества включая скважины с входных отсчетов, а также неизвестных образцов чипа. Неизвестные образцы будут количественно с использованием стандартной кривой, полученной с известными концентрациями входных выборок для анализа. В эквивалентной программного обеспечения, используемого в других машинах кПЦР назначают подмножества соотвonding для всех реакций для каждой пары праймеров.
4. После ПЦР-амплификации завершения выполнения анализа с "АБС Quant/2nd Производные Max" и выберите подмножество для анализа и нажмите ОК. В эквивалентной программного обеспечения, используемого в других машинах кПЦР, конвертировать Cq значение количество ДНК в каждом подмножестве.
5. Нажмите кнопку "Рассчитать", которая сгенерирует стандартную кривую с использованием известных концентраций входных отсчетов и будет отображать абсолютное количество ДНК, присутствующей в неизвестных образцов.
6. Если качество фрагментированной ДНК хорошо, и если праймеры специфически связываются с целевой области, ПЦР эффективность должна быть близкой к 2.
7. Выполнить анализ кривых плавления с "ТМ Calling" за тот же подмножество, если таковые имеются. Единственный пик указывает, что только один конкретный продукт амплифицировали. Амплификация специфической ДНК также может быть проверена путем электрофореза ПЦР-продукта вместе с лэддер ДНК через гель агарозы.
8. Экспорт данных в виде вкладки-текстового файла с разделителями, который может быть открыт в Microsoft Excel для дальнейшего анализа.
9. С помощью Microsoft Excel, разделите количество ДНК для специфических антител с контрольным изотипом для целевых праймеров. Повторите этот шаг для праймеров управления региона. Если несколько антител того же изотипа используются для различных иммунопреципитации, нормализуют каждую из этих со значениями из того же изотипа управления. Кроме того, если несколько целевых пар праймеров использовании количества ДНК из одного набора пары праймеров управления должна быть использована для нормализации каждой цели (фиг. 1 и 2). Выход значения представляют собой антитела иммунопреципитация кратное обогащение в каждой точке относительно неспецифического иммунопреципитации фон антителом.
10. Разделите кратное обогащение (до изотипом контроль) для целевых праймеров с кратное обогащение (до изотипический контроль) для праймеров контрольной области для получения относительно обогащениянесвязанные области управления (рис. 1). Важно отметить, отметим, что из-за генерации стандартных кривых с общей ДНК ввод для каждого образца, каждая из вышеуказанных значений иммунопреципитации интерполированных из стандартных кривых уже нормализованы к и выражали как доля вход на машине программного обеспечения.
11. Если жесткость буферов, используемых для иммунопреципитации или стиральные слишком высока, то возможно, что надежный усиления из образцов иммунопреципитации с использованием специфических антител будет наблюдаться, в то время как усиление от контроля изотипа иммунопреципитации образцы не будут соблюдены. В таком случае, лучше, чтобы вычесть сумму Изотип чип управления с конкретным антителом чип для целевой области и несвязанный регионе. Относительное обогащение может быть рассчитана путем деления разности для целевого региона разница для несвязанных области (рис. 3).

Results

Иммунопреципитация хроматина (чип) Протокол, представленные здесь, позволяет обеспечить учет различий, если таковые имеются, в количестве ДНК, используемые в ПЦР за счет использования пара праймеров, которая усиливает несвязанные области генома, таким образом, выступающей в качестве "управления загрузкой". В примере, показанном на рисунке 3, мы использовали кодирующей области гена мыши ACTB как область несвязанный нашим интерес белка и NFAT связывания фактора транскрипции участок на мышь Il...

Discussion

Протокол выше, обеспечивает надежный метод точного количественного ДНК обогащения из первичных лимфоцитов использованием чипа. Одна из главных причин устойчивости в данном протоколе, является включение биологических повторяет. Приведенные выше протокол использует трех повторов, обогащение, для которых вычисляется независимо. Выходы затем усредняются, чтобы обеспечить степень обогащения и стандартные отклонения рассчитаны, чтобы обеспечить меру изменчивости. Для каждого образца, три технических воспроизводит также выполн...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
Формальдегид	Sigma	F-8775	хранить в RT
Фосфатный буферный физиологический раствор	Hyclone	SH30256.01	Хранить при 4 ° C
Ингибитор протеазы таблетки	Рош	04693116001	хранить при 4 градусах;
C Protein G магнитные бусины	Active Motif	101945	хранить при 4 °deg;
С-РНКаза А (20 мг/мл)	EMD Millipore	556746	хранить при -20 °°; C
Proteinase K (20 мг/мл)	Roche	03115879001	растворить в 50 мМ Tris-HCl, 10 мМ CaCl2, pH 8,0
Platinum Taq DNA Polymerase	Invitrogen	10966-034	Хранить при -20 °°; C
SYBR Green I	Invitrogen	S7567	хранить при -20 °°; C
1 М Глицин			Хранить в
буфере для лизиса RT Cell (5 мМ трубок, pH 8,0; 85 мМ KCl; 0,5% NP-40)			Хранить при 4 ° C
Буфер для ядерного лизиса (50 мМ Трис, pH 8,1; 10 мМ ЭДТА; 1% SDS)			Хранить в
буфере для разбавления RT ChIP (0,01% SDS; 1,1% Triton X-100; 1,2 мМ ЭДТА; 16,7 мМ Трис pH 8,1; 190 мМ NaCl)			Хранить при 4 &�; C
Буфер для промывки с низким содержанием солей (0,1% SDS; 1% Triton X-100; 2 mM EDTA; 20 mM Tris pH 8,1; 150 mM NaCl)			Хранить при 4 ° C
Буфер для промывки с высоким содержанием солей (0,1% SDS; 1% Triton X-100; 2 mM EDTA; 20 mM Tris pH 8,1; 600 mM NaCl)			Хранить при температуре 4 ° Буфер для
промывки C LiCl (0,25 М LiCl; 1% NP-40; 1% дезоксихолат натрия, 1 мМ ЭДТА; 10 мМ Tris pH 8,0)			Хранить при 4 °°; Буфер C
TE (10 мМ Трис, pH 7,4, 1 мМ ЭДТА)			Хранить при температуре 4 °°; C
Элюирующий буфер (1% SDS; 0,1 M NaHCO3)			Готовьте свежие
5 M NaCl			Храните в RT
0,5 M EDTA			Храните в RT
1 M Tris-HCl, pH 6,5			Храните в RT
Таблица специфических реагентов
Clay Adams Brand Nutator	Becton Dickinson	Модель: 421105
Магнитный стенд	Promega	Z5342
Qiaquick Набор для очистки ПЦР	Qiagen	28106
Masonix Sonicator 3000	QSonica	Модель: S3000
УФ-спектрофотометр	NanoDrop Technologies	ND-1000
Нагревательный блок	VWR	13259-030
Rotator	VWR	80085-692
Настольная центрифуга с охлаждением	Beckman Coulter	Модель: Allegra X-12R
Микроцентрифуга	Eppendorf	5415 D
Таблица оборудования