RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
Research Article
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Erratum Notice
Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice
Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
Здесь мы опишем эффективным методом исследования динамики апоптоза клетки оформление
Надлежащего устранения нежелательных или аберрантных клеток путем апоптоза и последующего фагоцитоза (апоптоза оформления ячейки) имеет решающее значение для нормального развития во всех многоклеточных организмов. Апоптотическая оформления ячейки весьма динамичный процесс тесно связан с гибелью клеток; unengulfed апоптоза клеток почти не видели в естественных условиях при нормальных условиях. Для того чтобы понять различные этапы оформления апоптоза клеток и сравнить "профессионального" фагоциты - макрофаги и дендритные клетки на "непрофессиональной" - ткани-резидент соседние клетки, в естественных условиях живого изображения процесса является чрезвычайно ценным. Здесь мы опишем протокол для изучения апоптоза оформления ячейки в живых эмбрионов дрозофилы. Чтобы проследить динамику различных этапов фагоцитоза мы используем для специфических маркеров апоптоза клеток и фагоцитов. Кроме того, мы можем контролировать два фагоцитов систем параллельно: "профессиональных" макрофагах и "полу-Professional 'глии в развитие центральной нервной системы (ЦНС). Метод, описанный здесь использует эмбриона дрозофилы как отличную модель для исследования реальных время апоптоза оформление клетки.
Надлежащего устранения нежелательных или аберрантных клеток путем апоптоза и последующего фагоцитоза имеет решающее значение для эмбрионального развития, а также для тканевого гомеостаза у взрослых. Фагоцитоз апоптоза клеток или апоптоз оформления ячейки весьма динамичный процесс, который продолжается в четыре этапа: (1) набор фагоцитов апоптоза клетки ("находят меня '), (2) признания ячейки в качестве мишени для фагоцитоза ( 'есть-меня') и (3) охвате, а затем (4) фагосома созревания и деградации апоптоза частиц 1-5. Есть два типа фагоцитов: «профессиональный» макрофагов и незрелых дендритных клеток, и "непрофессиональной" ткани-резидент соседних клеток, которые имеют решающее значение для оформления апоптоза клеток во время развития многоклеточных 6,7.
В развитии дрозофилы, устранение лишних клеток путем апоптоза происходит в три мАйн этапа, первый в середине-конце эмбриона, а затем в середине куколки, а затем в начале взрослой. Во время эмбриогенеза апоптоз частицы удаляются "профессионального" фагоциты, макрофаги, а к "непрофессиональной" эктодермы и глии 8,9.
В нашей предыдущей работе мы определили фагоцитарного рецептора, шести-микрон-под (SIMU), которая выражается исключительно в фагоцитирующих клеток во время эмбриогенеза. Использование промоутер сима мы получили специфический маркер фагоцитарной клеточных популяций (симу-cytGFP), который позволяет нам отслеживать макрофаги, эктодермы и глии одновременно в живом развивающемся эмбрионе 8. Кроме того, с помощью специальных маркеров апоптоза клеток на разных стадиях апоптоза, мы можем проследить динамику апоптоза оформление клетки в живом организме.
Чтобы проследить динамику апоптоза оформление клетки в естественных условиях две популяции клеток должны быть помечены: фагоциты и апоптоза клеток.
Чтобы отметить фагоцитарной клеточных популяций мы используем линии Drosophila содержащие симу-cytGFP маркер, который называет исключительно фагоциты в зародыше: макрофаги, глии и эктодермы 8. Можно использовать различные маркеры для фагоцитов, включая строки, содержащие форменные элементы крови конкретного Gal4 драйвера (CRQ-Gal4) или глии конкретных Gal4 драйвера (РЕПО-Gal4) и генетически закодированы под люминесцентные репортер управления БАС (UAS-GFP).
Для контроля апоптоза клеток в процессе апоптоза клетка оформления мы используем различные апоптоза / фагоцитоза маркеров. Аннексина V (Molecular Probes) служит в качестве раннего маркера апоптоза клеток 10; Phiphilux (OncoImmunin) представляет собой флуорогенный каспазы-3 субстрате, который используется в качестве позже апоптозSIS маркером, и Lysotracker (молекулярные зонды) работает как фагосома маркер. Мы вводим эти реагенты помощью микроинъекции системы PicoPump PV 820.
1. Готовимся
2. Подготовка эмбрионов
3. Эмбрион инъекций
4. Изображениями
Мы изображения эмбрионов на перевернутом конфокальной микроскопии с 40X или 100X цели. Мы ищем красиво расположены эмбриона с ЦНС в середине, который показывает сильное выражение GFP и хороший маркировке апоптоза клеток после инъекции.
Для длительной записи живых эмбрионов мы обычно выбираем 5 или 6 конфокальной ломтиками (толщиной 2 мкм каждый). После этого, мы делаем проекцию 3 ломтика (6 мкм толщиной), чтобы наблюдать целые клетки.
Мы используем маркеров апоптоза клеток, которые являются стабильными и не отбеливать легко. Чтобы избежать GFP отбеливания мы делать записи с интервалом в 60 сек.
В некоторых случаях эмбрионы могут начнет растиво время записи видео. Таким образом, мы взглянем раз в то время на записи для того, чтобы остановиться и начать все сначала, если это необходимо.
Представитель кадров из видеозаписи, в котором апоптотических клеток помечены аннексина V и глии, эктодермы и макрофагов помечены симу-cytGFP показаны на рисунке 2. Каждый кадр является проекцией 3 ломтика 2 мкм каждый.
Эмбриона 15 ступени правильно расположен показывающие эмбриональных ЦНС в середине с хорошо помечены глии (г). Макрофагов (м), которые являются в основном за пределами ЦНС, показать сильные цитоплазматической экспрессии GFP. Эктодермальная клетки также помечены с цитоплазматическими GFP (е). Многие аннексина V позитивные клетки видны внутри, так и вне центральной нервной системы. Чтобы следовать охвату событий не так просто. Мы подчеркивали одно событие с белым прямоугольником, где глиальные клетки захлестывает апоптоза частицы. Обратите внимание на поведение зондирования глиальные клетки: Прикосновение к апоптозу частицы несколько раз без охватили его, а затем в конечном итоге с поглощением из Аннексин V помечены апоптоза клетки (рис. 2
Дополнительные маркеры для различных стадий апоптоза могут быть использованы с той же процедуре.

Рисунок 1. Схематическое изображение эмбриона подготовки к микроинъекции. А. предметное стекло содержащие кусок агара, на которой эмбрионы переносятся после dechorionation. Примерно 20 эмбрионов находились на одной линии, близко к краю кусок агара, с их брюшной стороне, для работы с изображениями ЦНС. B. покровное содержащий полосу гептан клей в середине. С. покровное от B с эмбрионами прикреплены к гептан полосы клея.

Рисунок 2. Динамический анализ апоптоза оформление клетки. Записи со сжатием временис апоптотического оформление клетки в стадии эмбриона 15. Глии (G), макрофагов (M) и эктодермы (E) помечены симу-cytGFP (зеленый). Апоптотическая помеченных флуоресцентными Аннексин V (красный). А. Отдельные кадры из фильма представителя показаны. Глиальные клетки охватили апоптоза клетка изображается прямоугольником. B. Закройте вид на выделенный прямоугольник.
Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих финансовых интересов.
Здесь мы опишем эффективным методом исследования динамики апоптоза клетки оформление
Эта работа была поддержана Марии Кюри реинтеграции Грант (IRG249084). Мы благодарим всех членов Kurant лаборатории.
| Reagent | |||
| Annexin V | Молекулярные зонды | A35108 | |
| PhiPhiLux G2D2 | OncoImmunin | A304R2G-5 | |
| LysoTracker | Молекулярные зонды | L-7528 | |
| Галокарбоновое масло 700 | Sigma | H8898 | |
| < прочный>Материалпрочный> | |||
| капиллярный трубка | FHC | 30-30-0 | |
| Сетчатый фильтр | SPL | 93100 | |
| Кисть | |||