Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

На месте Прямая мышца живота Поперечная мышечно-кожный щитка: крысиной модели реперфузионных повреждений мышечно-кожный ишемии

13.1K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/50473

⸱

8 июня 2013 г.

 ,  , 
1Department of Surgery, Royal Infirmary of Edinburgh, 2Department of Nephrology, Royal Infirmary of Edinburgh

В этой статье

Краткое содержание

Бесплатный трансфер из ткани широко применяется в реконструктивной хирургии для восстановления формы и функции после резекции онкологических и травмы. Предварительная этой ткани до операции может улучшить результат. В этой статье описывается На месте Поперечной прямой мышцы живота мышечно-кожный лоскут (трамвай) у крыс в качестве средства для тестирования предварительная стратегий.

Аннотация

Бесплатный трансфер из ткани является золотым стандартом реконструктивной хирургии для восстановления сложные дефекты не поддаются местные варианты или те, которые требуют композитные ткани. Ишемией травмы (ИРИ) является известной причиной частичного отказа клапана бесплатно и не имеет эффективного лечения. Создание лабораторной модели этой травмы может оказаться дорогостоящим, как финансово, так как более крупных млекопитающих, обычно используемого и в экспертизе, требуемых технической сложности этих процедур обычно требует использования опытных микрохирурга. В этой публикации и видео демонстрации эффективности использования модели IRI у крыс, которые не требуют микрохирургических опыта. Эта процедура на месте модель поперечного мышечно-кожных живота (TRAM) заслонка где атравматических зажимы используются для воспроизведения ишемии-реперфузии, связанные с этой операцией. Лазерной доплеровской томография (LDI) сканера используется для оценки перфузии лоскута и обработки изображений SoftwaRe, изображения J оценить процент площади кожи выживание как основного исхода травмы.

Введение

Целью настоящего Протокола является демонстрация надежности и воспроизводимости модели ишемии-реперфузии наблюдается в тканях бесплатный трансфер чтобы интервенционных стратегий предстоит изучить.

Аэропорт ткани определяется как сосудистый отряда изолированный блок ткани с последующим аутологичной трансплантации этой ткани с анастомоз пересеченного сосуды лоскута на родном сосудов при получатель сайта. Эта процедура известна как ФОН и ткань передается называют свободного лоскута.

Бесплатный трансфер из ткани является золотым стандартом подход к коррекции сложных, составных дефектов, где местные варианты не подходят или не доступно. 1-4 ишемией травмы (ИРИ) не является неизбежным в бесплатный трансфер ткани, способствует лоскут неудачи 5,6 и не имеет эффективное лечение. Выборность бесплатных операций лоскута позволяет администрации фармакологическиеCAL агентов предпосылкой против ИРИ.

ИРИ ведет к ослаблению потока через микроциркуляции активации эндотелиальных и метаболические нарушения, 7 повышенной проницаемости капилляров и последующего интерстициального отека 7, приток воспалительных клеток, 8 высвобождение медиаторов воспаления, активные формы кислорода 9 и дополнения осаждения. 10 Этот сложный процесс гипоксии и последующее реперфузионное повреждение в конечном счете, приводит к гибели клеток. Модель позволяет мышечно-кожный IRI эффективность предварительной стратегии на клинические исходы в оценке. Недавние исследования подтвердили ценность животных моделях исследования IRI в качестве суррогата человеческой IRI путем сравнения молекулярные изменения, наблюдаемые у человека и имеющиеся данные по животным. 10,11

Крыса поперечной прямой мышцы живота мышечно-кожный (трамвай) лоскут был впервые описан в 1987 году на немецком языке и 12 в 1993 году13 на английском языке. Эта модель приобрела широкую популярность 13-25 как дешевая, надежная модель для изучения различных стратегий по снижению ИРИ, связанные с бесплатным трансфером ткани. 14,17-22 Большинство этих исследований были разработаны в качестве unipedicled закрылки трамвай на основе глубокого, уступает, . эпигастральной сосудистой ножке 15-18,20-22 Сравнение данных этих исследований осложняется использовании различных размеров острова кожный (10,5 - 30 см 2) и различной длины послеоперационном периоде (2 - 10 дней). Средний общий процент площади некроза лоскута в контрольной группе этих исследований составляет 69 ± 6,2% (среднее ± SEM). Следует отметить, что эти шесть документов всех специалистов, прямая мышца живота в качестве носителя для сосудистой ножке, но не подвергайте, разделяй и microanastomose или зажим сосудов. Чжан и др.. 23 описали правда, свободным лоскутом ТРАМВАЙ крысы на основе превосходной эпигастральной судов, в которых Fкругов были подняты, сосудов разделена и мышечно-кожный лоскут передаются и microanastomosed в пах сосудов. Это сложная техника требует микроанастомоза 0,45 - 0,5 мм калибра сосудов. Только пятнадцать были выполнены, и из этих 67% выжили. 23 модели, описанной Чжан и др.. 23 является отличной моделью для человека свободным лоскутом трамвайные остановки, а это действительно отражает травмы, полученной во время FTT. Других опубликованных моделей лоскута ТРАМВАЙ крысы более точно отражают травмы, полученные во время человека на питающей ножке трамвай, но не точно отражают ИРИ, поскольку эти лоскута не подвергаются ишемического периода с последующей реперфузией как сосудистая ножка никогда не зажаты или разделены и микроанастомоза выполнена. Этот протокол и видео описывают новую модель свободного агента ткани с помощью крысы Трамвай в которой IRI реплицируется использованием microclamps. Это более точно повторяет IRI, чем ножки предшественников трамвай, но технически проще, чем performiнг микроанастомоза. Microclamps широко используемых трансплантации исследователи воссоздать ИРИ, связанных с твердой трансплантации органов; 26-33 однако, это впервые было описано в клапане TRAM крысы.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Все операции проводят в соответствии с руководящими принципами, изложенными внутренних дел Соединенного Королевства и Университета Эдинбурга Департамента ветеринарии Services.

1. Хирургическая процедура установки Примечания

  1. Изменение в чистой хирургической скрабы, платья, шапки скраб и маска. Очистить все поверхности операционной включая оборудование с 2% раствор хлоргексидина в 70% изопропилового спирта.
  2. До операции автоклав все хирургические материалы и инструменты, которые будут использоваться в процедуре. Стерильные пакеты на операцию должны включать: 3 шторы, марля, аппликаторы хлопка наконечником, силиконовая пленка и хирургических инструментов, см. таблицу конкретных хирургических материалов и инструментов и на рисунке 1. Взвесьте крысы и отмерить соответствующий объем бупренорфин (0,04 мг / кг) можно вводить подкожно 1 час до завершения процедуры. Выложите, 3 х 1 мл шприца для подкожного введения жидкости во время SurgЭри, 2 х 6-0 викриловыми швы, 1 х 5-0 швов Ethilon, стерильные маркер с линейкой и 10-лопастная одноразовый скальпель, 4 - 5 пар стерильные перчатки и ручной прижигание блока.
  3. Место 4 х 10 мл стерильного 0,9% физиологического раствора флаконы на водяной бане нагревают до 37 ° С. Это будет использоваться для замены жидкости подкожный (1 мл / кг / ч) и промыть место операции. Настройка теплокровного одеяла, ректального датчика, инфракрасная лампа, операционного микроскопа и обезболивающие буровой установки. Включите лазер и его программного обеспечения, настройка другой установки анестетика и поместить тепла площадку под черный матовый, на котором животное будет лежать во время сканирования.
  4. Используйте мужчин, Льюис крыс весом 250-300 г. Дом крыс в течение 7 дней с едой и воду без ограничений с 12 часов свет-темнота циклов, прежде чем любая операция выполняется.

2. Анестезия и подготовки кожи

  1. Положите крысу в индукции камеры установки анестетика и администрирование 4% изофлурана с 1L/min O 2 для2-3 мин, чтобы вызвать анестезию. Снимите наркозом крыса из камеры и поместить его на спине на чистые, с подогревом мат. Поддерживать изофлурана на 1,5% при использовании носового конуса. Применить lacrilube или подобным средством для предотвращения роговицы во время процедуры. Выполните ноги-Pad щепотку испытание для обеспечения животного адекватно наркоз перед началом работы. Повторите это последний тест перед каждым важным шагом в порядке и отрегулировать концентрацию ингаляционного анестетика соответственно.
  2. Тесно брить передней брюшной использовании электрическая бритва, так что весь брюшную поверхность подвергается. Нанести крем для удаления волос в течение рекомендованных поставщиком. Снимите сливки и тщательно промыть кожу с подогреваемой стерильным физиологическим раствором, чтобы удалить все следы крема. Нанести 2% раствор хлоргексидина в 70% изопропилового спирта на кожу и дайте высохнуть, прежде чем продолжить. Это стандартная подготовка кожи в нашем отделении на основе имеющихся данных для хирургической инфекции. Пожалуйста D 34iscuss с Департаментом ветеринарии, что является стандартной процедурой в вашем подразделении До выборов протокол подготовки кожи.
  3. Место 2 шторы обе стороны от крыс и заботиться, чтобы держать их стерильными. Наденьте стерильные перчатки и с помощью помощника открыть стерильной упаковке. Поместите все инструменты на одном драпировку и швов, марля, хлопок аппликаторы, силиконовая пленка и стерильных маркером с правителем, с другой.
  4. Определить среднюю линию использованием мечевидного отростка и хвост в качестве ориентиров. Отметить средней линии. Измерьте 0,8 см ниже мечевидного отростка и отметьте эту точку. Нарисуйте линии, перпендикулярной к средней линии от этой точки. Принимая средней линии в качестве центра лоскута знак из 1 см и 2 см слева и справа от средней линии. Рисовать вертикальные линии, параллельные срединной линии из точек. Мера 4 см ниже горизонтальной линии оригинальной и взять еще одну параллельно ей. Следуя этим инструкциям 4 х 4 см лоскут разделить на 4 равные полоски очерчена(См. Рисунок 2).

3. Лазерная допплера

  1. Осторожно переместите крысы носовой конус второй буровой установки анестетика на сканере ЛДИ. Продолжить анестезией 1,5% изофлураном 1L/min O 2. Включите лазерный и следуйте инструкциям производителя, чтобы начать сканирование. После сохранения отсканированных файлов вернуть крысу обратно к первой буровой установки и вставьте ректального датчика из теплокровного одеяло использованием мягкого белого парафина в качестве смазки.

. 4 На месте лоскут трамвай - мышечно-кожный модели IRI

  1. Re-скраб руки и надеть стерильные перчатки свежим. Вырезать 5 см в диаметре круг в центре оставшейся стерильной драпировки и поместите над открытыми живота, чтобы создать драпированными стерильного поля.
  2. Сделать разрез вниз по левой боковой отмечены кромки (Фиг.3А и В). Гемостаза. Делайте аналогичные разрезы вниз горизонтальные линиислева от средней линии. Гемостаза.
  3. Жир, покрывающий левой нижней влагалища прямой мышцы живота должны быть видны. Использование щипцов и тонких ножниц Iris тщательно получить под этим жиром. Будьте осторожны, чтобы не повредить перфораторы, проходящий через левую, переднюю влагалища прямой мышцы живота. Самолет, открывающиеся при таком вскрытия является то, что непосредственно над передней брюшной фасции стене. Продолжить рассекает в этой плоскости вокруг огороженного поля. В левой подвздошной ямке лежит большой, поверхностный подвздошных сосудов циркумфлексом-они могут быть связаны или обезболивающий укол. Тогда расширить вскрытие медиально с осторожностью и только по мере латерального края левой прямой мышцы. Существует очевидное изменение цвета в этой точке от розового до почти белого (рис. 3в). Тщательно орошать площадь стерильным физиологическим раствором и убедитесь, что гемостаз был достигнут прежде, чем поместить влажной марлей над этим районом.
  4. Повторите процедуру на противоположной стороне, но на этот раз расширить тØ белой линии (средней линии). Позаботьтесь, чтобы определить и прижечь все мышечно перфораторы, возникающие в центре правой прямой мышцы живота (рис. 3D). Если это не будет сделано должным образом, это может привести к послеоперационной гематомы и ложным результатам. Аналогично гемостаза, орошение и поместить влажной марлей над поднятым клапаном.
  5. Вернуться на нижний край левой передней мышце (рис. 3E и F). Cauterize самых уступает перфоратора видел. Перейдите к вырезать небольшой (около 0,6 см х 0,6 см) окна в передней влагалища прямой мышцы живота использованием microscissors изогнутые и заостренные Греффе щипцов. Блант рассекать медленно вниз латерального края мышцы, пока мышцы не редеет, но перед задней оболочка нарушена. Затем поверните щипцами и тупые рассекать медиально, пока живот мышцы не на вершине изогнутый край пинцетом и советы бесплатно на медиального края. Кормить приблизительноеLY 6 см 5-0 Ethilon в пасть щипцов и галстук от нижней влагалища прямой мышцы живота. По завершении этого этапа мышечно-кожный лоскут изолирован на одной доминирующей судно-глубокая Улучшенный эпигастральной судов. Накрыть влажной марлей.
  6. Разрежьте силиконовой пленкой в овалы с гладкими углами, (рис. 3G). Они должны быть достаточно большими, чтобы покрыть большую часть области подвергается под fasciocutaneous части лоскута. Тем не менее, должны быть предприняты меры для того, чтобы края кожи могут быть закрыты без всякого напряжения и медиальной кривой овала, возможно, придется работать в паре обратно, чтобы предотвратить его ухудшая поток через оставшиеся перфораторы. Затем они пришивают в месте с 6-0 Vicryl (рис. 3Н). Накрыть влажной марлей.
  7. Используя простые Прерванная жизнь "подыхать" 5-0 Ethilon швов лоскут, чтобы уменьшить огонь и потери воды (рис. 3I). Накрыть влажной марлей.
  8. Расширение рану сверху слевамечевидного отростка (рис. 3I). Шовный этом в верхний левый квадрант для улучшения поля обзора.
  9. Срежьте жир любые вышележащих выявить начальника, левой, передней влагалища прямой мышцы живота. Отрежьте небольшой (0,6 см х 0,6 см) окно в этой оболочке (рис. 3J). Выдвигайте рану медиально До внесения изменений в мышечном волокне траектории с вертикальной на косые и последовательности из плотно упакованных фибрилл потерять видно.
  10. Вставьте изогнутых щипцов тщательно между этими двумя мышцами и открыть плоскости путем отслаивания. Аккуратно вырежьте вниз только постольку, поскольку преимущественный поверхности этих пинцетов, проходящем через живот левой прямой мышцы живота, чтобы выявить основные глубокие, Улучшенный эпигастральной артерии и вену (рис. 3K).
  11. Использование микро-инструментов и высокая мощность на операционный микроскоп, осторожно отделите артерию и вену и сдирать любой окружающий жир.
  12. Применить атравматическую зажимы Acland кrtery и вены (Б-1, "V" тип) и включите таймер обратного отсчета 30 мин ишемического периода. Промывать зажатой ножки и накрыть марлей. Мы не использовали судно расширители, такие как верапамил или pabavarine но должно судна спазм быть проблемой, эти препараты должны быть рассмотрены.
  13. Администрирование бупренорфин (0,04 мг / кг) и нагретого, стерильный физиологический раствор (1 мл / кг / час).
  14. Начиная с верхнего левого угла, шовный лоскут на место с 6-0 Vicryl подкожные швы остановки и связывая НА мечевидного отростка.
  15. Когда 30 мин ишемии закончена, аккуратно снимите зажимы и орошать ножки подогретым раствором. Убедитесь, что поток был восстановлен. Пожалуйста, обратите внимание, что это время ишемии было обусловлено Управления Управления Великобритании Home. Исследователи, работающие в других властей может быть в состоянии увеличить это время. Продление ишемии, вероятно, приведет к ухудшению клинических исходов.
  16. Шовный разреза края прямой мышцы на место с 6-0 Vicryl.Будьте осторожны, чтобы не применять слишком много напряжения, так как это может привести к перекручивание сосудов.
  17. Завершите ушивание подкожного заботясь, чтобы похоронить всех узлов под кожей (рис. 3K).
  18. Очистить рану области и дайте ему высохнуть. Перерисовать зон на клапане.
  19. Повторное сканирование животных, чтобы получить послеоперационные изображения.
  20. Повторно применять lacrilube в глаза животного и место в нагретом инкубатор (37 ° С) в течение 1 часа для восстановления перед возвращением в хозяйстве устройства.

Критические шаги в протоколе

Суть процедуры заключается в выявлении глубоких, Улучшенный эпигастральной судов. Это четко показано в прилагаемой пленкой. Короче говоря, окна режется в передних влагалища прямой мышцы живота, чтобы выставить основные мышечные волокна, которые будут продольно. Расширяя Поверхностное рассечение передней влагалища прямой мышцы живота медиально изменение траектории волокна мышц наблюдается FROM продольное косой. Вставьте тупыми концами, изогнутые, Греффе щипцы (или аналогичный) на пересечении этих двух пучков мышечных волокон. Блант рассекают поперечно. Сократите, с использованием микро ножницы, на верхней поверхности изогнутых щипцов, проведенных в этой плоскости между пучками мышечных волокон. После снятия Греффе щипцы глубокие, Улучшенный эпигастральной артерии и вены будет наблюдаться в середине мышцы живота прямая теле. Сдирать жир, покрывающий сосуды с использованием микро инструментами и применять зажимы.

Fasciocutaneous части лоскута ТРАМВАЙ крысы достаточно тонкие, чтобы разрешить лоскут взять в качестве полноправного кожного трансплантата толщины. Чтобы избежать этого и обеспечить, чтобы это истинная модель IRI тонкий, гибкий лист кремния находится под fasciocutaneous части лоскута. 35 Этот шаг был принят другими исследователями проведения модели крысы трамвае. 17,21,25

Крысы жевать ThrouGH узлов поэтому убедитесь, что все швы и все подкожные узлы похоронены. При проведении тщательной autocannabilism ушивание закрылков, как сообщали другие исследователи можно избежать. +24

После отправления бупренорфин снизить эксплуатационные анестезии до 1% Isoflurane (1L/min O 2).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Крысы модели более экономичны, чем более крупных животных моделях, 36 являются устойчивых к болезням в природе и могут быть генетически манипулировать. Свободные кожей животных, таких как грызуны, как считалось, различное расположение кожных кровоснабжение по сравнению с фиксированной кожей животных, таких как люди и свиньи. В свободной кожей животных, кожу подается в первую очередь по прямой кожных сосудов, проходящих через подкожный жир в вышележащих кожи (рис. 4) В отличие от этого, закреп...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Изменения и устранения неисправностей

Протокол, представленные здесь воспроизводит IRI видно на свободный перевод ткань в экспериментальной системы, позволяющей дальнейшего понимания этого процесса и обеспечивает возможность исследовать средство ослабления IRI и улучшения результата. Это может быть легко модифицирована для получения более серьезных травм его были основаны на недоминантную, глубоко, нижней эпигастральной ножке или если время ишемии были увеличены.

Огран...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

У нас нет раскрытий.

Благодарности

Эта работа финансировалась Советом медицинских исследований грант G1000299.

Соответствующий автор хотел бы поблагодарить Гэри Borthwick, Эдинбургский университет, для оказания помощи во время операции.

Авторы хотели бы выразить признательность советы от Хелен Дуглас и Иэн Маккей и позволяет нам наблюдать их глубокой нижней эпигастральной (DIEP) лоскутная процедура (Canniesburn пластической хирургии группы, Королевской больницы Глазго, 84 Castle Street, Глазго G4 0SF, Великобритания).

Авторы также хотели бы поблагодарить Гэри Блэки в Университете Эдинбурга за помощь в создании клипа на эту статью.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Лазерный доплеровский сканерhttp://gb.moor.co.uk/product/moorldi2-laser-doppler-imager/8
Полная гомеотермическая система одеяла с гибким зондом. Маленький. 230 В переменного тока, 50 Гц507221Fwww.harvardapparatus.com
Щипцы Graeffe 0,8 мм изогнутые11052-102, http://www.finescience.de
Acland зажимы00398 VБ-1 ’ V’ Шаблонные зажимы используются как на артерии, так и на вене. http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf
АппликаторCAF-4http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf
Gemini cautery unit726067www.harvardapparatus.com
Микрососуды расширители 11 см 0,3 мм наконечники 00124D-5a.2http://www.merciansurgical.com
Micro Jewellers Щипцы 11см угловые 00109JFA-5bhttp://www.merciansurgical.comMicro
Jewellers Щипцы 11 см прямые 00108JF-5http://www.merciansurgical.com
Acland Одинарные зажимы B-1V (пара)396http://www.merciansurgical.com
Микроножницы Круглые ручки 15 см Прямые67http://www.merciansurgical.comНожницы
для ирисов 11,5 см Кривые EASY-CUTEA7613-11http://www.merciansurgical.com
Mayo Ножницы 14 см с прямыми скошенными лезвиями EASY-CUTEA7652-14http://www.merciansurgical.com
Derf Иглодержатели 12 см TC703DE12http://www.merciansurgical.com
Ethilon 5-0W1618http://www.farlamedical.co.uk/
Vicryl rapide 6-0W9913http://www.millermedicalsupplies.com/
Instrapac - Зубчатые щипцы Адсона (очень тонкие)7973http://www.millermedicalsupplies.com/
Иглодержатели12565-14http://s-and-t.ne
Тепловая лампаhttp://www.chicken-house.co.uk
Силиконовая пленка 0,3 мм полупрозрачнаяhttp://www.silex.co.uk/
Image J softwarehttp://rsbweb.nih.gov/ij/
Zeiss OPMI picohttp://www.zeiss.co.uk/
Операционный микроскоп
Vet tech solution isofluorane righttp://www.vet-tech.co.uk/
Vet tech solution isofluorane righttp://www.vet-tech.co.uk/
Moor LD12 зажима Castroviejo

Ссылки

  1. Wang, X., et al. Free anterolateral thigh adipofascial flap for hemifacial atrophy. Ann. Plast. Surg. 55 (6), 617-622 (2005).
  2. Eckardt, A., Fokas, K. Microsurgical reconstruction in the head and neck region: An 18-year experience with 500 consecutive cases. J. Cranio. Maxill. Surg. 31 (4), 197-201 (2003).
  3. Yazar, S., et al. Safety and reliability of microsurgical free tissue transfers in paediatric head and neck reconstruction - a report of 72 cases. J. Plast. Reconstr. Aes. 61 (7), 767-771 (2008).
  4. Blondeel, P. N., Landuyt, K. H. V., Monstrey, S. J. Surgical-technical aspects of the free diep flap for breast reconstruction. Operat. Tech. Plast. Reconstr. Surg. 6 (1), 27-37 (1999).
  5. Siemonow, M., Arslan, E. Ischaemia/reperfusion injury: A review in relation to free tissue transfers. Microsurgery. 24, 468-475 (2004).
  6. Wang, W. Z. Investigation of reperfusion injury and ischaemic preconditioning in microsurgery. Microsurgery. 29, 72-79 (2009).
  7. Rucker, M., et al. Reduction of inflammatory response in composite flap transfer by local stress conditioning-induced heat-shock protein 32. Surgery. 129 (3), 292-301 (2001).
  8. Cetinkale, O., et al. Involvement of neutrophils in ischemia-reperfusion injury of inguinal island skin flaps in rats. Plast. Reconstr. Surg. 102 (1), 153-160 (1998).
  9. Korthuis, R. J., Granger, D. N., Townsley, M. I., Taylor, A. E. The role of oxygen-derived free radicals in ischemia-induced increases in canine skeletal muscle vascular permeability. Circ. Res. 57 (4), 599-609 (1985).
  10. Eisenhardt, S. U., et al. Monitoring molecular changes induced by ischemia/reperfusion in human free muscle flap tissue samples. Ann. Plast. Surg. 68 (2), 202-208 (2012).
  11. Dragu, A., et al. Gene expression analysis of ischaemia and reperfusion in human microsurgical free muscle tissue transfer. J. Cell. Mol. Med. 15 (4), 983-993 (2011).
  12. Tilgner, A., Herrberger, U. [myocutaneous flap models in the rat. Anatomy, histology and preparation technic of the myocutaneous rectus abdominis flap]. Z. Versuchstierkd. 29 (5-6), 231-236 (1987).
  13. Dunn, R. M., Huff, W., Mancoll, J. The rat rectus abdominis myocutaneous flap: A true myocutaneous flap model. Ann. Plast. Surg. 31 (4), 352-357 (1993).
  14. Clugston, P. A., Perry, L. C., Fisher, J., Maxwell, G. P. A rat transverse rectus abdominis musculocutaneous flap model: Effects of pharmacological manipulation. Ann. Plast. Surg. 34 (2), 154-161 (1995).
  15. Ozgentas, H. E., Shenaq, S., Spira, M. Development of a tram flap model in the rat and study of vascular dominance. Plast. Reconstr. Surg. 94 (7), 1012-1017 (1994).
  16. Doncatto, L. F., da Silva, J. B., da Silva, V. D., Martins, P. D. Cutaneous viability in a rat pedicled tram flap model. Plast. Reconstr. Surg. 119 (5), 1425-1430 (2007).
  17. Lineaweaver, W. C., et al. Vascular endothelium growth factor, surgical delay, and skin flap survival. Ann. Surg. 239 (6), 866-873 (2004).
  18. Rezende, F. C., et al. Electroporation of vascular endothelial growth factor gene in a unipedicle transverse rectus abdominis myocutaneous flap reduces necrosis. Ann. Plast. Surg. 64 (2), 242-246 (2010).
  19. Zacchigna, S., et al. Improved survival of ischemic cutaneous and musculocutaneous flaps after vascular endothelial growth factor gene transfer using adeno-associated virus vectors. Am. J. Pathol. 167 (4), 981-991 (2005).
  20. Zhang, F., et al. Improvement of skin paddle survival by application of vascular endothelial growth factor in a rat tram flap model. Ann. Plast. Surg. 46, 314-319 (2010).
  21. Hijjawi, J., et al. Platelet-derived growth factor β, but not fibroblast growth factor 2, plasmid DNA improves survival of ischemic myocutaneous flaps. Arch. Surg. 139 (2), 142-147 (2004).
  22. Wong, M. S., et al. Basic fibroblast growth factor expression following surgical delay of rat transverse rectus abdominis myocutaneous flaps. Plast. Reconstr. Surg. 113 (7), 2030-2036 (2004).
  23. Zhang, F., et al. Microvascular transfer of the rectus abdominis muscle and myocutaneous flap in rats. Microsurgery. 14 (6), 420-423 (1993).
  24. Hallock, G. G., Rice, D. C. Comparison of tram and diep flap physiology in a rat model. Plast Reconstr Surg. 114 (5), 1179-1184 (2004).
  25. Qiao, Q., et al. Patterns of flap loss related to arterial and venous insufficiency in the rat pedicled tram flap. Annals of Plastic Surgery. 43 (2), 171(1999).
  26. Persy, V. P., Verhulst, A., Ysebaert, D. K., De Greef, K. E., De Broe, M. E. Reduced postischemic macrophage infiltration and interstitial fibrosis in osteopontin knockout mice. Kidney Int. 63 (2), 543-553 (2003).
  27. Li, Y., et al. Overexpression of cgmp-dependent protein kinase i (pkg-i) attenuates ischemia-reperfusion-induced kidney injury. Am. J. Physiol. Ren. Physiol. 302 (5), 561-570 (2012).
  28. Hunter, J. P., et al. Effects of hydrogen sulphide in an experimental model of renal ischaemia-reperfusion injury. Brit. J. Surg. 99 (12), 1665-1671 (2012).
  29. Hamada, T., Fondevila, C., Busuttil, R. W., Coito, A. J. Metalloproteinase-9 deficiency protects against hepatic ischemia/reperfusion injury. Hepatology. 47 (1), 186-198 (2008).
  30. Duarte, S., Hamada, T., Kuriyama, N., Busuttil, R. W., Coito, A. J. Timp-1 deficiency leads to lethal partial hepatic ischemia and reperfusion injury. Hepatology. 56 (3), 1074-1085 (2012).
  31. Shen, X. D., et al. Cd154-cd40 t-cell costimulation pathway is required in the mechanism of hepatic ischemia/reperfusion injury, and its blockade facilitates and depends on heme oxygenase-1 mediated cytoprotection. Transplantation. 74 (3), 315-319 (2002).
  32. Liu, J., et al. Endoplasmic reticulum stress modulates liver inflammatory immune response in the pathogenesis of liver ischemia and reperfusion injury. Transplantation. 94 (3), 211-217 (2012).
  33. Pan, G. Z., et al. Bone marrow mesenchymal stem cells ameliorate hepatic ischemia/reperfusion injuries via inactivation of the mek/erk signaling pathway in rats. J. Surg. Res. 178 (2), 935-948 (2012).
  34. Darouiche, R. O., et al. Chlorhexidine-alcohol versus povidone-iodine for surgical-site antisepsis. New. Engl. J. Med. 362 (1), 18-26 (2010).
  35. Fukui, A., Inada, Y., Murata, K., Tamai, S. Plasmatic imbibition" in the rabbit flow-through venus flap, using horseradish peroxidase and fluoroscein. J. Reconstr. Mirosurg. 11, 255-264 (1995).
  36. Dunn, R. M., Mancoll, J. Flap models in the rat: A review and and reappraisal. Plast. Reconstr. Surg. 90 (2), 319-328 (1992).
  37. Taylor, G., Minabe, T. The angiosomes of the mammals and other vertebrates. Plast. Reconstr. Surg. 89 (2), 181-215 (1992).
  38. Taylor, G., Corlett, R., Boyd, J. The versatile deep inferior epigastric (inferior rectus abdominis) flap. Brit. J. Plast. Surg. 37 (3), 330-350 (1984).
  39. Taylor, G., Corlett, R., Boyd, J. The extended deep inferior epigastric flap: A clinical technique. Plast. Reconstr. Surg. 72 (6), 751-765 (1983).
  40. Tai, Y., Hasegawa, H. A tranverse abdominal flap for reconstruction after radical operations for recurrent breast cancer. Plast. Reconstr. Surg. 53 (1), 52-54 (1974).
  41. Scheflan, M., Dinner, M. I. The transverse abdominal island flap: Part i. Indications, contraindications, results, and complications. Ann. Plast. Surg. 10, 24-35 (1983).
  42. Tindholdt, T. T., Saidian, S., Pripp, A. H., Tonseth, K. A. Monitoring microcirculatory changes in the deep inferior epigastric artery perforator flap with laser doppler perfusion imaging. Ann. Plast. Surg. 67 (2), 139-142 (2011).
  43. Tindholdt, T. T., Saidian, S., Tonseth, K. A. Microcirculatory evaluation of deep inferior epigastric artery perforator flaps with laser doppler perfusion imaging in breast reconstruction. J. Plast. Surg. Hand. Surg. 45 (3), 143-147 (2011).
  44. Booi, D. I., Debats, I. B. J. G., Boeckx, W. D., van der Hulsi, R. R. W. J. A study of perfusion of the distal free-tram flap using laser doppler flowmetry. J. Plast. Reconstr. Aes. 61, 282-288 (2008).
  45. Hallock, G. G. Physiological studies using laser doppler flowmetry to compare blood flow to the zones of the free tram flap. Ann. Plast .Surg. 47 (3), 229-233 (2001).
  46. Collin, T. Image j for microscopy. Biotechniques. Suppl. 43 (1), 25-30 (2007).
  47. Hallock, G., Rice, D. Physiologic superiority of the anatomic dominant pedicle of the tram flap in a rat model. Plast. Reconstr. Surg. 96, 111-118 (1995).
  48. Ozmen, S., Ayhan, S., Demir, Y., Siemionow, M., Atabay, K. Impact of gradual blood flow increase on ischaemia-reperfusion injury in the rat cremaster microcirculation model. J. Plast. Reconstr. Aes. 61 (8), 939-948 (2008).
  49. Rucker, M., Vollmar, B., Roesken, F., Spitzer, W. J., Menger, M. D. Microvascular transfer-related abrogation of capillary flow motion in critically reperfused composite flaps. Brit. J. Plast Surg. 55 (2), 129-135 (2002).
  50. Rucker, M., Kadirogullari, B., Vollmar, B., Spitzer, W. J., Menger, M. D. Improvement of nutritive perfusion after free tissue transfer by local heat shock-priming-induced preservation of capillary flowmotion. J. Surg. Res. 123, 102-108 (2005).
  51. Rucker, M., et al. New model for in vivo quantification of microvascular embolization, thrombus formation, and recanalization in composite flaps. J. Surg. Res. 108 (1), 129-137 (2002).
  52. Wang, W. Z., Baynosa, R. C., Zamboni, W. A. Update on ischemia-reperfusion injury for the plastic surgeon. Plast. Reconstr. Surg. 128 (6), 685e-692e (2011).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Лазер-допплеровская визуализацияанализ в Image Jатравматичные зажимыоценка перфузии лоскутаизмерение выживаемости кожихирургическая процедура
На месте Прямая мышца живота Поперечная мышечно-кожный щитка: крысиной модели реперфузионных повреждений мышечно-кожный ишемии
Связаться с нами
Порекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия использования

Политики

© 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.