Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Одноклеточный Микроинъекция для анализа сотовой связи

10.3K просмотров

DOI:

10.3791/50836

26 февраля 2017 г.

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

Здесь мы опишем, как выполнить одноклеточного микроинъекции Lucifer Yellow для визуализации сотовой связи через гэп-переходов в живых клетках, а также обеспечить некоторые полезные советы. Мы ожидаем, что эта статья поможет всем оценить степень сотовой связью за счет функциональных щелевых контактов. Все, что описано здесь, может быть, в принципе, адаптированы к другим флуоресцентных красителей с молекулярной массой менее 1000 дальтон.

Аннотация

Щелевые соединения — это межклеточные каналы, которые обеспечивают связь соседних клеток. Эта коммуникация зависит от вклада гемиканала каждой соседней клетки в формирование щелевого соединения. В клетках млекопитающих гемиканал образован шестью коннексинами, мономерами с четырьмя трансмембранными доменами и окончанием C и N в цитоплазме. Щелевые соединения обеспечивают обмен ионами, вторыми мессенджерами и малыми метаболитами. Кроме того, они играют важную роль во многих формах клеточной коммуникации в рамках физиологических процессов, таких как синаптическая передача, сокращение сердца, рост и дифференцировка клеток. Мы подробно описываем, как выполнить микроинъекцию желтого люцифера в одну клетку для визуализации клеточной коммуникации через щелевые соединения в живых клетках. Ожидается, что в функциональных щелевых соединениях краситель будет диффундировать от загруженного элемента к соединенным элементам. Это очень полезный метод для изучения щелевых переходов, поскольку вы можете оценить диффузию флуоресценции в режиме реального времени. Мы обсудим, как подготовить клетки и микропипетку, как использовать микроманипулятор и ввести низкомолекулярный флуоресцентный краситель в эпителиальную клеточную линию.

Введение

Щелевые соединения являются межклеточные каналы , которые позволяют междуэтажной среди соседних ячеек 1. Эта связь соединяет два или более соседних ячеек, где каждый из них вносит свой вклад с коннексон или hemichannel, чтобы сформировать межклеточный канал. В клетках млекопитающих коннексон образован шестью коннексинами, мономеров с четырьмя трансмембранными доменами и С и N терминала в цитоплазме 2. Щелевые контакты не только позволяют поток ионов, вторичных мессенджеров и малых метаболитов, а также способствуют многие формы сотовой связи во многих физиологических процессах, таких как синаптической передачи, сердечных сокращений, роста и дифференцировки 3, 4, 5, 6 клеток, 7, 8. Кроме того щелевые соединения были связаны смногие заболевания , включая рак 9, 10, 11 , мышечной атрофии, некоторых генетических заболеваний и демиелинизирующих заболеваний 12.

Этот тип межклеточного перекрестных помех может быть оценена несколькими способами 13, 14, 15, 16. В этой статье мы покажем, как выполнить одноклеточного микроинъекции Lucifer Yellow для визуализации сотовой связи через гэп-переходов в живых клетках. Мы обсудим, как подготовить клетки и микропипетки, использование микроманипулятора и инъекцию Люцифера желтого красителя в вилочковой эпителиальной клеточной линии. Как правило, эта экспериментальная процедура может быть проанализирована с помощью среднего связанных клеток к клетке, нагруженной красителем. Кроме того, этот способ может быть использован с другими флуоресцентными красителями, с молекулярной массой ниже зазораперекрестки отсечение, который составляет примерно 1000 Дальтон.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

1. Получение клеток

  1. Поддерживать культуру вилочковой эпителиальной клеточной линии (IT76M1) или клетки должны быть испытаны в инкубаторе (37 ° C / 5% CO 2).
  2. Вымойте клеток с PBS 1x (повторить этот пункт 3x).
  3. Добавить трипсина в клетки в течение 5 мин.
  4. Добавить среду (в два раза от объема добавленного трипсина в пункте 1.3) с добавлением 10% FBS (эмбриональной бычьей сыворотки) в клетки с помощью трипсина и центрифугу (800 мкг в течение 5 мин).
  5. Граф клеток в гемоцитометра.
  6. Регулировка плотности клеток в зависимости от типа клеток, клетки должны быть в тесном контакте друг с другом, чтобы разрешить соединение. Примечание: В нашем случае мы использовали 3 × 10 5 клеток на 35 мм чашку Петри.

2. Подготовка Микропипетки

  1. Потяните микропипетки, как указано из стеклянного капилляра микропипетки (диаметром 1,5 мм) до конечной 0,2 мкм в диаметре, с тем, чтобы достичь конечного сопротивления приблизительно 30 МОме "> 17, 18.
    Примечание: В качестве альтернативы, инъекционные пипетки можно приобрести. Сопротивление зависит от размера ячейки, например более высокое сопротивление микроэлектрода было бы необходимо для ацинарных клетках поджелудочной железы, например (100-150 МОм) 19. Общей проблемой, которая может возникнуть является осаждение Lucifer желтый раствор, который затем может затруднять микропипетки и может потребовать предварительной фильтрации или центрифугирования. Перед инъекцией, микропипетки следует анализировать под микроскопом , чтобы обнаружить , если имеется препятствие или любой тип разрушения 13. Микропипетки может быть проверена путем введения LY с наконечником микропипетки внутри солевого раствора.

3. Тестирование Микропипетки

  1. Готовят раствор желтого цвета Lucifer (5%) в 150 ммоль / л LĪČI и загружают микропипетки с помощью шприца или путем засыпки (положить в нее LY раствор).
  2. Поместите микротрубкиТТЕ над 35-мм чашки Петри с клетками IT76M1 на рабочей станции микроинъекции и погрузить кончик стеклянной микропипетки в клеточную среду. Фокус на микропипетки и выполнить тест на красителе, протекающий путем применения пульс.

4. Одноклеточный Lucifer Yellow Микроинъекция

  1. Фокус микроскопа прямо над слоем клеток с использованием высокой MAGNI фи катион (40X), затем медленно опустите пипетки к клеткам с помощью микроманипулятора.
  2. Прокол клетки-мишени, когда кончик достаточно близко, чтобы коснуться клеточной мембраны, и нанесите небольшое гиперполяризационные импульс, чтобы ввести LY в клетку. Приложенное напряжение будет зависеть от суммарного заряда красителя, который будет введен. В качестве альтернативы, некоторые другие красители, могут быть использованы с этой техникой, как показано в таблице 1.
    Примечание: В принципе любой гидрофильным красителем с MW менее 1KDa можно было бы использовать. Тем не менее, скорость передачи может варьироваться в зависимости от веса и гидрофильности. Кроме того, Unspecific перенос красителя, используемого должны быть оценены.
  3. Захват изображений клеток 3 мин после инъекции красителя или сделать небольшой ролик со временем покадровой микроскопии (30 кадров в секунду).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Аналогичный подход можно увидеть в Хитоми и др (2015) 20. Для того, чтобы избежать общения с помощью межклеточных мостиков (неполным митоза), со-инъекции родамина декстрана (от 2 до 10 кДа), которая не проходит через щелевые контакты , но проходит через межклеточные мосты и некоторые виды нанотрубок рекомендуется , как показано на рисунке 2 ,

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Тимуса эпителиальные клетки линии IT-76MI были использованы для оценки сцепления красителя щелевых контактов , как эти клетки были описаны , чтобы выразить функциональные щелевые соединения , образованные коннексина 43 21. На рисунке 1 показана инъекцию Lucifer Yellow при нанесении в одной ячейке ниже кончика пипетки. Через несколько минут, соединенные клетки становятся флуоресцентный (звездочками) указывает на диффузию флуоресцентного красителя через щелевые конт...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Для того чтобы проверить наличие функциональной межклеточного щелевых контактов, использование изотопных индикаторов, которые мембрана непроницаема, хотя проницаемой межклеточные каналы необходимы 16. Флуоресцеин, первый флуоресцентный краситель для наблюдения от клетки к клетке соединительной 22, проницаема между не соединительных мембран 3 и поэтому был замещен Lucifer желтый краситель 15. В настоящее время, чтобы найти луч...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

У авторов нет конфликта интересов.

Благодарности

Авторы посвящают эту статью в честь профессора Жильберто Оливейра-Кастро, который представил исследование межклеточной коммуникации через щелевые соединения в Бразилии. Эта работа была профинансирована Capes, CNPQ и Faperj.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Люцифер желтыйSigmaL0259
Хлорид литияSigmaL4408
PBS таблеткиSigma P4417
RPMISigmaR4130
Сыворотка плода крупного рогатого скотаCultilab
TrypsinSigmaT4799
стол с виброизоляцией NewportVH3036W-OPTДля защиты экспериментов от вибрации и предотвращения повреждения клеток необходим виброизолированный стол
МикроманипуляторNarishigeMMO-203Это оборудование позволяет точно регулировать микропипетку, которая необходима для микроинъекции клеток.
Генератор тока ДигитимерDS2Для создания потока красителя через микропипетку подавался ток ниже одного наноампера с помощью генератора тока с электродом внутри микропипетки или усилителя, который имеет схему компенсации емкости (старый электрометр) или функции впрыска тока новых усилителей с патч-клемтом, а также провод заземления, погруженный в пластинчатую чашку. В качестве альтернативы краситель может быть введен пневматическим микроинжектором, следуя заводским рекомендациям.    

Ссылки

  1. Bennett, M. V., et al. Gap junctions: new tools, new answers, new questions. Neuron. 6 (3), 305-320 (1991).
  2. Orellana, J. A., Martinez, A. D., Retamal, M. A. Gap junction channels and hemichannels in the CNS: Regulation by signaling molecules. Neuropharmacology. , (2013).
  3. Peracchia, C. Structural correlates of gap junction permeation. Int Rev Cytol. 66, 81-146 (1980).
  4. Loewenstein, W. R. Junctional intercellular communication and the control of growth. Biochim Biophys Acta. 560 (1), 1-65 (1979).
  5. Alves, L. A., et al. Functional gap junctions in thymic epithelial cells are formed by connexin 43. Eur.J Immunol. 25 (2), 431-437 (1995).
  6. Alves, L. A., et al. Are there functional gap junctions or junctional hemichannels in macrophages? Blood. 88 (1), 328-334 (1996).
  7. Fonseca, P. C., et al. Characterization of connexin 30.3 and 43 in thymocytes. Immunology letters. 94 (1-2), 65-75 (2004).
  8. Nihei, O. K., et al. Modulatory effects of cAMP and PKC activation on gap junctional intercellular communication among thymic epithelial cells. BMC Cell Biol. 11, 3(2010).
  9. Czyz, J., Szpak, K., Madeja, Z. The role of connexins in prostate cancer promotion and progression. Nat Rev Urol. 9 (5), 274-282 (2012).
  10. El-Saghir, J. A., El-Habre, E. T., El-Sabban, M. E., Talhouk, R. S. Connexins: a junctional crossroad to breast cancer. Int J Dev Biol. 55 (7-9), 773-780 (2011).
  11. Cea, L. A., et al. Connexin- and pannexin-based channels in normal skeletal muscles and their possible role in muscle atrophy. J Membr Biol. 245 (8), 423-436 (2012).
  12. Cotrina, M. L., Nedergaard, M. Brain connexins in demyelinating diseases: therapeutic potential of glial targets. Brain Res. 1487, 61-68 (2012).
  13. Park, H. an-A., R, S., Khanna, S. avita, Sen, C. handan K. Current Technologies in Single-Cell Microinjection and Application to Study Signal Transduction. Methods in Redox Signaling. , Chapter 10 (2010).
  14. Abbaci, M., Barberi-Heyob, M., Blondel, W., Guillemin, F., Didelon, J. Advantages and limitations of commonly used methods to assay the molecular permeability of gap junctional intercellular communication. Biotechniques. 45 (1), 33-52 (2008).
  15. Stewart, W. W. Functional connections between cells as revealed by dye-coupling with a highly fluorescent naphthalimide tracer. Cell. 14 (3), 741-759 (1978).
  16. Meda, P. Probing the function of connexin channels in primary tissues. Methods. 20 (2), 232-244 (2000).
  17. Klaunig, J. E., Shi, Y. Assessment of gap junctional intercellular communication. Curr Protoc Toxicol. , Chapter 2 Unit2 17 (2009).
  18. Hanani, M. Lucifer yellow - an angel rather than the devil. J Cell Mol Med. 16 (1), 22-31 (2012).
  19. Orci, L., Biochemistry, C. Blockage of Cell-to-Cell Communication within Pancreatic Acini Is Associated with Increased Basal Release of Amylase Materials and Methods Preparation of Acini. Cell. 103 (August), 475-483 (1986).
  20. Hitomi, M., et al. Differential connexin function enhances self-renewal in glioblastoma. Cell Rep. 11 (7), 1031-1042 (2015).
  21. Nihei, O. K., Campos de Carvalho,, C, A., Spray, D. C., Savino, W., Alves, L. A. A novel form of cellular communication among thymic epithelial cells: intercellular calcium wave propagation. Am J Physiol Cell Physiol. 285 (5), C1304-C1313 (2003).
  22. Kanno, Y., Loewenstein, W. R. Intercellular Diffusion. Science. 143 (3609), 959-960 (1964).
  23. Alves, L. A., Nihei, O. K., Fonseca, P. C., Carvalho, A. C., Savino, W. Gap junction modulation by extracellular signaling molecules: the thymus model. Braz J Med Biol Res. 33 (4), 457-465 (2000).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Анализ щелевых контактовкраситель Lucifer Yellowфлуоресцентная микроскопияметод микроманипуляцииисследование межклеточной коммуникацииэпителиальная клеточная линияфункция щелевых контактованализ диффузии красителяэпителиальные клетки тимуса