Лигнин вниз-регулирование Zea Mays Через dsRNAi и Класона лигнина анализа

Производство биотоплива из биомассы лигноцеллюлозы весьма желательно в связи с его нынешней изобилии в США ^1, а в случае устойчивого урожая сельскохозяйственных и лесохозяйственных остатков, способность не конкурируют непосредственно для пахотных земель, используемых для пищевой и животного производства кормов. Однако, в отличие зерна кукурузы, которая является основным источником биотоплива в настоящее время, генерируемой в США, лигноцеллюлозные материалы являются значительно более сложными и трудно сломать. В дополнение к длинной цепью углеводов, целлюлозы и гемицеллюлозы, которые являются основными источниками сахара в процессе ферментации лигноцеллюлозных материалов, многих типов клеточных стенок растений также содержат лигнин, в фенилпропаноидного полимера, который обеспечивает прочность, защиту от атаки патогена, и гидрофобность на мобильные стены. В то время как необходимо для роста растений и выживания, лигнин также представляет существенный барьер для успешного ферментативного превращения целлюлозы и hemicelluпроиграть растворимых сахаров. Материалы с высоким содержанием лигнина, как правило, менее желательные материалы как для биотоплива (через пути биологической конверсии) и целлюлозно-бумажной промышленности в связи с негативным воздействием на технологические свойства и качество продукции. Таким образом, генетические манипуляции растительных материалов для сокращения лигнина на уровне, который не вмешивается в растениеводстве структурной прочности и ракетных комплексов может быть важным для снижения издержек производства как для лигноцеллюлозной биотоплива и целлюлозно-бумажной промышленности.

У кукурузы (Zea Mays), лигнин ковалентно сшиты с гемицеллюлозы в первичной клеточной стенки через ферулата и diferulate мостов ^2. Лигнин-гемицеллюлоза комплекс связывается с микрофибрилл целлюлозы с помощью водородных связей, образуя сложную матрицу, которая придает целостность и прочность на вторичный клеточной стенки. Механическая прочность клеточных стенок растений во многом определяется типом Lignin субъединиц ^3-5. В предыдущих исследованиях, изменяя пропорции лигнина субъединиц не проявляет четкую тенденцию по ферментативной усвояемости ^6-11. Тем не менее, снижение содержания лигнина в целом свидетельствуют об улучшении преобразований ^12,13 и может быть ключом к повышению усвояемости растительного материала гидролитических ферментов, включая endocellulases, целлобиогидролаз и β-глюкозидаз ^14.

Генной инженерии, чтобы регулировать уровень экспрессии транскриптов широко практикуют для улучшения культур черты. Передовые технологии, в том числе анти-смысле ¹⁵ и косупрессии ¹⁶ технологий, позволяют эффективно понижающей регуляции генов-мишеней. Полный ген нокаут был также достигнут с помощью генных конструкций, кодирующих интронов-сращены РНК со структурой шпильки ^17. Кроме того, двухцепочечной РНК-интерференция (dsRNAi) метод, т.е. это мощный и эффективный экспрессии генов СМИтор, который работает либо ориентации деградации транскриптов или перевод репрессии, обеспечивает сильнодействующим средством, чтобы вызвать широкий спектр эффектов подавления на мРНК-мишени ^18. Методы молчание генов показать несколько ограничений. Эти методы не точно регулировать уровень транскрипции, и это может привести к неожиданным эффекты глушителей на других гомологичных генов.

В этом методе мы использовали бомбардировку частицами нести dsRNAi конструкции в геном кукурузы. На сегодняшний день, огромный массив видов растений были успешно трансформированы с использованием бомбардировки частицами, Agrobacterium опосредованной трансформации, электропорации и методы микроинъекции. В генетической трансформации кукурузы, метод бомбардировка частицами имеет преимущество перед всеми другими методами, поскольку он является наиболее эффективным. Бомбардировки частицами не зависит от бактерий, поэтому метод свободен от биологических ограничений, таких как размер гена, видов гена илиИгин или завод генотип. Физический трансген система доставки позволяет с высокой молекулярной массы и ДНК множественные гены, которые будут введены в геномов растений и в некоторых случаях в хлоропласты с высокой эффективностью преобразования ^19. Снижение лигнин в сосудистой системе листовой середине ребра могут быть визуализированы с помощью сканирующей электронной микроскопии (СЭМ), который является полезным для изучения топографии и состав образцов.

В растений кукурузы, два из редуктазы циннамоил-КоА (ZmCCR1: X98083 и ZmCCR2: Y15069) генов были обнаружены в геном кукурузы ^20. Циннамоил-КоА-редуктазы катализирует превращение сложных эфиров hydroxycinnamoyl-КоА в коричные альдегиды. Мы выбрали ген ZmCCR1 вниз-регулировать этот фермент, потому что ген экспрессируется во всех lignifying тканей. В 523 нуклеотиды в конце 3 'гена ZmCCR1 были выбраны для построения, поскольку dsRNAi последовательности, казалось,более разнообразным по сравнению с теми из ZmCCR2. Таким образом, конструкция dsRNAi бы точно связываться только с ZmCCR1, избегая мимо ворот глушителей ^21. ZmCCR1_RNAi конструкт был разработан в цитоплазматической экспрессионной системы ImpactVector1.1 тега (IV 1.1), содержащий зеленой ткани специфический промотор, рибулозо-1, 5-бисфосфаткарбоксилазы оксигеназы (RuBisCO).

Для изучения влияния dsRNAi построить на трансгенных растений, содержание лигнина количественно. Класона (кислота нерастворимых в) измерение лигнин, как известно, более точным по сравнению с кислотными методами количественного моющее средство лигнин, который солюбилизации некоторых из лигнина ^22. Таким образом, лигнин Класона была измерена в трансгенных стеблей кукурузы. Эта процедура состоит из кислотного гидролиза двухступенчатой ​​который преобразует полимерные углеводы в растворимые моносахаридов ^23. Гидролизованный биомасса была затем фракционировали в кислой растворимого и нерастворимого матеALS и кислота нерастворимый лигнин измеряли в соответствии с предыдущих исследований ^23,24. В идеале, анализ лигнин должен включать экстракцию водой и этанолом перед стадией гидролиза, с тем, чтобы удалить растворимые материалы, которые могут повлиять на результаты, а также сгорания после гидролиза лигнина остатка с учетом максимального золы, присутствующих в остатке. Без этих шагов, содержание лигнина образца может быть искусственно завышена. Полный метод представлен здесь, однако для наших экспериментов мы не смогли выполнить оба из этих шагов из-за небольшого объема материала, доступного для тестирования

Два других компоненты клеточной стенки, целлюлоза и гемицеллюлоза были также проанализированы в лигнина вниз регулируется трансгенных линий кукурузы. Было сообщено, что трансгенные растения, которые были вниз регулируется в любом их фенилаланиновой аммиак-лиазы (PAL) ^25, 4-coumarate: СоА-лигазы (4CL) ^26, или коричный вlcohol дегидрогеназы (CAD) ²⁷ показывают рост других структурных компонентов клеточных стенок. В качестве первого шага в наших исследованиях, кристаллическую целлюлозу измеряли с помощью метода Updegraff ^28. Этот метод был первоначально разработан для определения целлюлозы в большом количестве клетчатку бактерий и грибков. Вкратце, молотые запасы кукурузы обрабатывали Updegraff реагента (уксусной кислоты: азотная кислота: вода), чтобы удалить гемицеллюлозы, лигнин и xylosans. Кристаллическая целлюлоза была полностью гидролизуется на глюкозу через Saeman гидролиза, добавив H ₂ SO _4. Кристаллическую целлюлозу затем анализировали с помощью колориметрического метода, антрон ^29. Чтобы проверить, не изменились содержание гемицеллюлозы, моносахаридные экстракты из измельченных стеблей гидролизуют с использованием трифторуксусной кислоты, производные использованием метода алдитол ацетатный, а затем анализировали с помощью газовой хроматографии (ГХ) ^30. Подробные процедуры для кристаллического челанализы lulose контент и матричные полисахариды состав описаны в Фостер и др.. (2010) ^31.

Здесь мы описываем процедуры, используемые для лигнина вниз регулирования в кукурузе через технологии РНК-интерференции, бомбардировки преобразования частиц и анализа лигнина для ускоренного деконструкции кукурузы лигноцеллюлозной биомассы в ферментации сахаров для биотоплива.

1. Подготовка dsRNAi конструкции, используемые для понижающей регуляции ZmCCR1

1. Генные Дизайн специфические праймеры, включая необходимые сайты рестрикции для принятия dsRNAi построить в нокаут гена ZmCCR1. Два набора праймеров были разработаны для усиления два сегмента фрагмент ZmCCR1 кДНК:. 523 п.о. от нуклеотида 748 до 1271, и 285 п.о. от нуклеотида 986 до 1271 ZmCCR1 кДНК была предоставлена ​​из Аризоны института генома (AGI). Более подробно описаны на рисунке 1.
2. Amplify большим фрагментом полимеразной цепной реакции (ПЦР) из шаблона ZmCCR1 кДНК с использованием праймеров ZmCCR1_748F_BglII (5'-AGATCTACATCCTCAAGTACCTGGAC-3 ') и ZmCCR1_1271R_NcoI (5'-CCATGGTTTACACAGCAGGGGAAGGT-3'). Amplify меньший фрагмент (285 п.о.) с использованием праймеров ZmCCR1_986F_BglII (5'-AGATCTGGAAGCAGCCGTACAAGTTC-3 ') и (5R ZmCCR1_1271R_SacI17;-GAGCTCTTTACACAGCAGGGGAAGGT-3 ').
3. Индивидуально перевязывать фрагменты в pGEM-T Easy в соответствии с инструкциями изготовителя.
4. Выполнение мини-препаративную плазмидную ДНК изоляции из отдельных трансформантов, каждый из которых содержит pGEM-T строит с использованием коммерческого мини-преп плазмиды комплект.
5. Дайджест как pGEM-Т :: ZmCCR1 (523 б.п.) и ImpactVector (IV) -1.1 (выражение цитоплазма вектор) и с BglII и NcoI.
6. Лигируют большой переваренной геле ZmCCR1 фрагмент (523 б.п.) в переваренной очищают на геле IV-1.1.
7. Дайджест pGEM-T :: ZmCCR1 (285 б.п.) и IV-1.1 :: ZmCCR1 (523 б.п.) и с BglII и SacI для того, чтобы вставить небольшой фрагмент в IV-1.1 :: ZmCCR1 (523 б.п.).
8. Лигируют небольшой переваренной гель очищают ZmCCR1 фрагмент (285 б.п.) в переваренной очищают на геле IV-1.1 :: ZmCCR1 (523 б.п.).
9. Клонировать как 523 б.п. и 285 б.п. фрагментацииTS в IV-1.1, чтобы сделать ZmCCR1 РНК-интерференции построить, который имеет 285 б.п. перевернутой последовательности повторного с 238 б.п. прокладки в середине перевернутых фрагментов повторных (см. Рисунок 1).
10. Перевести эту конструкцию в кишечной палочки (E.coli), выращивать их и выполнить изоляцию ДНК размер плазмиды миди-преп получить достаточно ДНК плазмиды для кукурузы генетической трансформации.

2. Кукуруза генетической трансформации

1. Подготовка вольфрама частиц
   1. Наведите 60 мг вольфрама бисера (M10) в 1,5 мл трубки и промыть 1 мл 70% этанола путем встряхивания в течение 2 мин. Выдержите в течение 10 мин при 23 ° С, затем центрифуге при 18894 мкг в течение 2 мин и отбросить супернатант.
   2. Промыть 3 раза 1 мл 100% этанола, центрифугируют в течение 2 минут и супернатант отбрасывания. Добавить 1 мл стерильного 50% глицерина, чтобы довести концентрацию микрочастиц до 60 мг / мл.
2. Подготовка ДНК для бомбардировки
   1. Plтуз 50 мкл (3 мг) вольфрама гранулы, полученные в 50% глицерине в 1,5 мл трубки. Добавьте 5 мкл (1 мкг) IV-1.1 :: ZmCCR1 РНК-интерференции плазмидной ДНК, 50 мкл 2,5 М CaCl _{2 и} 20 мкл 0,1 М спермидин. Vortex кратко между каждым добавлением указанных выше реагентов.
   2. Vortex вольфрама шарик-ДНК смесь коротко и центрифуге при 18894 мкг в течение 30 сек. Слейте супернатант и ресуспендируют гранул в 140 мкл 70% этанола. Удалить жидкость и выбросить. Добавить 140 мкл 100% этанола. Удалить жидкость и выбросить.
   3. Добавить 48 мкл 100% этанола. Используйте немедленно или хранить на льду в течение до 4 часов до бомбардировки.
3. Бомбардировка
   1. Поместите 3-5 см в диаметре Привет-II эмбриогенный кукурузы каллусах (при условии, от кукурузы трансформации центра Университета штата Айова) в середине 100 мм чашки Петри, содержащие N6OSM СМИ ³² (как osmotium) по крайней мере 4 часа до бомбардировки.
   2. Подгоэ PSD-1000/He Доставка частиц устройство в соответствии с инструкциями ³³ изготовителя.
   3. Стерилизовать стенки камеры с 70% этанола. Загрузите стерильную 650 фунтов на квадратный дюйм разрыв дисков, в стерильной Кожух. Распространение 5-6 мкл раствора M10-ДНК на поверхности macrocarrier, сухой кратко. Нагрузка macrocarrier и остановки экран на микроносителю запуска сборки.
   4. Наведите микроносителю запуска сборки и кукурузы каллусах в камере на выбранном расстоянии от экрана остановки (L2 = 6 см) и закрыть дверь. Ускорение в вакууме 27 фунтов на квадратный дюйм против экране проволочной сетки.
   5. Нажмите кнопку пожарной пока всплески разрыв диска и давление гелия манометр не падает до нуля. Отпустите кнопку огня.
   6. Выдержите бомбардировке каллусах в чашке Петри, содержащей N6OSM (осмотическое средний) ³² в течение 16 часов в темноте при 27 ° C. Перерыв каллусах в десять штук и трансфер в N6E (каллусогенеза среда) ³² в чашках Петри и выдержать в течение 5 дней ян темноте при 27 ° С.
4. Выбор
   1. Через 5 дней на N6E, передать каллусах на N6S среды (выбор средств массовой информации) ^32. Субкультура все каллусы на селективной среде каждые 30 дней в течение 8-12 недель без нарушения структуры Calli.
   2. Примерно через 8-10 недель, белые быстрорастущие секторы будут расти из Непролиферирующие и частично некротической матери каллусах. Акцизный белые быстрорастущих тканей и субкультура их на свежий селективной среде (N6S) ³² и продолжают инкубировать, как указано выше.
5. Регенерация
   1. Перенести белый и быстро растущий эмбриональных каллусах на среду для регенерации ³² и инкубировать, как указано выше в течение 1 недели. Переключите регенерирующим эмбриогенным каллусах к периоду 16 час дневного света и 8 ч темноте при 25-27 ° С
   2. Трансфер регенерирующий стреляет на укоренения среды ³² в стеклянную пробирку после 3-4 недель, по-прежнему инкубировать, как указано выше. После существенного гпоявляется развитие OOT, тщательно мыть корни под водопроводной воды, то пересаживать ростки до 4 "горшки с почвой. Покройте горшки с пластиковыми пакетами, чтобы держать влажной. После 2 дней делать небольшие отверстия пластиковые пакеты. После 5-6 дней удалить пластиковые пакеты. Продолжали инкубировать, как указано выше в течение еще 5-6 дней.
6. Оранжерея
   1. Трансфер сеянцы в 18 "горшки с почвой и поддерживать в полном летний Солнечный свет или парникового света. Начальные Регенерированные растения называются Т ₀ в то время как первые семена принадлежу к поколению Т _1.

3. Гистологический Анализ

1. 1. Закрепите кукурузы листьев средне-ребра в 5 мл 10% нейтральном буферном растворе формалина.
   2. Процесс и вакуум проникнуть парафином на процессоре ткани, используя процессор ткани.
   3. Вставить тканей в парафин с использованием вложение станции HistoCentre III.
   4. Удалить излишки парафина от краев, как только блоккс охлаждаются.
   5. Образец Раздел на 4-5 мкм с микротоме использованием микротома.
   6. Наведите разделы по микроскопа и сухой в инкубаторе 56 ° С в течение 2-24 часов. Убедитесь разделы соблюдаться в полной мере слайде.
   7. Deparaffinize разделы в две смены ксилола в течение 5 мин при 23 ° С
   8. Сода скользит по две смены 100% этанола в течение 2 мин и две перемены 95% этанола в течение 2 мин при 23 ° С
   9. Промыть разделы в проточной водопроводной водой в течение 2 мин.
   10. Пятно с 0,05% толуидиновым синим O в течение 1-2 минут и кратко промыть DDH ₂ O.
   11. Поместите покровное на образцах иммерсионного масла и визуализации с световой микроскопии.
2. Сканирующей электронной микроскопии (SEM)
   1. Закрепить разрезали поперек листа кукурузы средне-ребра в 4% глутарового альдегида и 0,1 М натрий-фосфатный буфер (рН 7,4) при 4 ° С в течение 1-2 часов.
   2. Сполоснуть образцы в буфере, обезвоженной их вэтанол ряд (25%, 50%, 75% и 95%) в течение 10-15 мин в каждой градации и 100% этанола в течение 10 мин, 3x.
   3. Высушите обезвоженные разрезали поперек кукурузы листьев средне-ребра в критической точке сушилки с использованием жидкого диоксида углерода в качестве переходного жидкости.
   4. Установите высушенных образцов на алюминиевых заглушек с помощью высоких требований к вакуум углерода вкладки
   5. Покрывают кукуруза лист середине ребра установлены на алюминиевых заглушки с золотом (приблизительно 20 нм толщиной) в установке дл покрыти распылением продувают аргоном.
   6. Изучение образцов покрыли в JEOL JSM-6400V (гексаборид лантана эмиттер электронов) сканирующего электронного микроскопа.
   7. Цифровые изображения были изображены с помощью Pro программное обеспечение для анализа (версия 3.2).

4. Класона Лигнин Измерение

1. Мельница образцы через сито 2 мм.
2. С помощью анализатора влажности для определения содержания влаги в каждом образце и записать это значение.
3. Взвесить ~ 1,5 г каждого образца и регистрируют массу. EИзвлечь образцы с использованием воды для первой экстракции, с последующим этанола на второй экстракции с использованием либо автоматический съемник растворитель (3 циклов в добыче, ~ 14 мин за один цикл) или аппарате Сокслета (8 час за экстракции). (Примечание: Этот шаг снимает экстрактивные вещества, которые могут конденсироваться при кислотного гидролиза и мешают точного измерения лигнина, увеличивая видимую Класона содержание лигнина.)
4. Сушат извлеченные пробы при 45 ° С в течение ночи, а затем дать им остыть в эксикаторе и взвешивают снова.
5. Установите инкубатор до 30 ° С. Измерение 0,3 г каждого сухой, извлеченной пробы в скрученной труб высокого давления (трех повторах на образец рекомендуется) и записать весов с точностью до 0,1 мг. Добавьте 3 мл 72% H ₂ SO ₄ в каждую пробирку давления.
6. Смешайте примера с использованием стакан или тефлоновыми стержень. Оставьте перемешайте стержень в трубке, пока вода не добавляется после инкубации.
7. Наведите флаконов в инкубаторе себет до 30 ° С и 150 оборотах в минуту в течение 60 мин. Через 1 час добавляют 84 мл деионизированной воды, чтобы разбавить концентрацию кислоты до 4% и смешать с перемешивающим стержнем. Будьте осторожны, чтобы не оставить больших объемов образца по бокам выше ватерлинии флаконе.
8. Плотно закрыть фиксаторы на всех флаконах и поместить их в металлическую стойку или больших стаканах. Автоклаве при 121 ° С с использованием жидкого цикл стерилизации в течение 1 часа. Разрешить им остыть до комнатной температуры перед открытием.
9. Предварительно пепел фильтрующих тиглей в печи при 575 ° С в течение по меньшей мере 4 часов. Разрешить тигли для охлаждения в эксикаторе в течение по крайней мере часа.
10. Вакуумном фильтре раствора из каждой пробирки через отдельный тигле, с помощью резинового переходника, чтобы обеспечить тигель. Используйте деионизированной воды, чтобы ополоснуть все оставшиеся частицы из трубки.
11. Сушат лигнина остатка при 105 ° С в течение как минимум 4 часов. Запись веса сухой тигель и остаток.
12. При использовании 575 ° C, предварительноОгня образцы над горелку, пока нет никакого дыма или пепла, а затем размещать в печи в течение 24 часов, или при использовании программируемый печи, не предварительно пепел и использовать следующую программу:
13. Рампа от комнатной температуры до 105 ° С и удерживать в течение 12 мин.
14. Рампа до 250 ° С при 10 ° С / мин и удерживайте в течение 30 мин.
15. Рампа до 575 ° С при 20 ° С / мин и удерживайте в течение не менее 180 мин.
16. Извлеките тигли из печи и охлаждают в эксикаторе. Взвесьте тигель и пепла.
17. Вычислить кислоты нерастворимый остаток, используя следующее уравнение:

M _PRE = масса предварительно извлеченного биомассы
М _POST = Масса после добытой биомассы
M _VIAL = масса извлеченного биомассы в сосудик добавл
М _{ОСТАТКИ} = Масса тигля и лигнина остаточныхие
М _АШ = Масса тигля и золы
MC = Влажность предварительно извлеченного биомассы, полной массе

5. Анализ Углеводы

1. Выполните клеток углеводов стены анализирует на основе Фостер и др.. (2010) протокола ^31. Короче говоря, Подготовка алкоголя нерастворимого остатка от сублимированного растительного материала. Затем гидролиза материала с трифторуксусной кислоты и соответствовать растворенные производные моносахаридов в соответствующие ацетаты альдита. Анализ эти летучие производные с помощью газовой хроматографии (ГХ), соединенного с четверной масс-спектрометра.

Мы показали снижение содержания лигнина в растений кукурузы через RNAi. Метод преобразования бомбардировка частицами дали около 30% эффективности trnasformation. Ген молчание ZmCCR1 последовательно наблюдается в Т0-Т2 поколений. Лигнина снижается трансгены вырос аналогично дикого типа растений кукурузы для отображения коричневый окраску в лист середине грудной, шелухи и стебель исключением. Гистологический анализ показал, что мутантные линии демонстрируют значительное снижение толщины клеточной стенки из Склеренхима волокон в листе кукурузы середине ребра 18. Несмотря на снижение толщины клеточной стенки, структура других крупных сосудистых систем, включая ксилемы судна, флоэмы и оболочки клеток не выявило каких-либо различий по сравнению с контролем дикого типа (рис. 2А) 18. Это означает, что нет никаких вредных эффектов для любой водного транспорта, передачи питательных веществ, или механическую прочность стеблей Iп мутантные линии ZmCCR1_RNAi.

Содержание лигнина измеряют, используя измерение lingin Класона. Рисунок 3 показывает количество кислотно-нерастворимого Класона лигнина (г / кг кон Стовер) в дикого типа кукурузы и ZmCCR1_RNAi трансгенных линий (T1). Три трансгенные линии (1c-4, -5 и -6) показали статистически значимое снижение лигнина (8,1%, 7,0% и 8,7% соответственно) по сравнению с дикого типа растений кукурузы 18. Чтобы определить, был ли поток углерода смещается от лигнина биосинтеза в клеточной стенке углеводные пути биосинтеза, целлюлоза была проанализирована с помощью метода Updegraff. 3А показывает, что две ZmCCR1_RNAi мутантные линии (1b-6 и 1c-6) содержится значительно возросшим числом кристаллического целлюлоза (1,5 и 1,8 раза соответственно) 18. Содержание гемицеллюлозы также был проанализирован. Фиг.4В показывает количество четырех основных компонентов гемицеллюлозы (arabionose, ксилоза, галактоза, глюкоза и). Ни один из четырех углеводных групп не выявлено никаких изменений в мутантных линий 18.

Рисунок 1 Клонирование стратегию dsRNAi плазмиды конструкций для понижающей регуляции в ZmCCR1 PRbcS1:.. Рибулозо бисфосфаткарбоксилазы промотор из хризантемы morifolium Рамат. Т-RbcS1: рибулозо бисфосфаткарбоксилазы небольшое подразделение терминатор из сложноцветных хризантемы. Эта цифра была изменена от Парк и др. (2012) 18.

Рисунок 2. Фенотипический анализ дикого типа кукурузы (Привет-II) и ZmCCR1_RNAiмутант жилки листа. A) коричневое окрашивание было видно в ZmCCR1 вниз регулируемых листьев кукурузы, стеблей кукурузы и шелуха. Б) разрезали поперек листа кукурузы средние жилки листьев дикого типа HI-II (слева) и ZmCCR1_RNAi мутантной линии (справа) окрашивали 0,05% толуидин синий O за 1 мин для визуализации вторичных ксилемы тканей. Красный наконечник указывает клеточные стенки Склеренхима волокон жилки листа. (C) Сканирующей электронной микроскопии (СЭМ) ZmCCR1 вниз регулируется трансгенной кукурузы жилки листа (справа) по сравнению с дикого типа не-трансгенного растения управления (влево). Красная стрелка указывает склеренхима волокна. Эта цифра была изменена от парка и соавт. (2012) 18.

Измерения лигнина Рисунок 3. Класона (ACIг нерастворимых лигнина содержание) дикого типа HI-II и ZmCCR1_RNAi мутанта. Эти три мутантных линий 1c, 1c-5 и 1c-6 было статистически более низкое содержание лигнина, 8,5%, 7,5% и 9,2% соответственно, как процент сухого вещества по сравнению с контрольными растениями дикого типа. Среднее значение ± стандартное отклонение (p <0,05, n = 3). Эта цифра была изменена от парка и соавт. (2012) 18.

Рисунок 4. Клеточная стенка композиционный анализ. Анализ) кристаллическая целлюлоза из ZmCCR1_RNAi линий (парных сравнений Тьюки, * Р <0,05, п = 3). Б) Гемицеллюлоза анализ состава дикого типа кукурузы и ZmCCR_RNAi трансгенных линий кукурузы (T1) с помощью газовой хроматографии (ГХ). Основные пики из хроматограмм Werэ интегрированы, определены на основе времени удерживания и фрагментов ионных подписей, и выражается в процентах моль (P> 0,05, п = 3) (парные сравнения Тьюки, Р> 0,05; п = 3). Эта цифра была повторно от парка и соавт. (2012) 18.

Рисунок 5 процентами сахара (глюкан и ксилана) преобразования для необработанных (UT) и AFEX ТМ-предобработанной (90 ° C, 5 мин) кукурузы Стовер на различных концентраций аммиака (1,0:. 1,0 г NH 3: г сухой биомассы 1.5: 1.5 г NH 3:. г сухой биомассы) Планки погрешностей представляют стандартное отклонение от среднего и основаны на двух повторах для необработанных образцов и четырех повторах (два предварительной обработки повторяет с двумя гидролиза повторяет каждый) для предварительно обработанных образцов. Предварительно обработанные сахара преобразования(24 ч или 72 ч) помеченные различными буквами, являются статистически различными на основе попарных сравнений Тьюки (P <0,05). Эта цифра была повторно от парка и соавт. (2012) 18.

Таблица 1. Таблица специфических реагентов.

Нет конфликта интересов объявлены.