Способ генерации легких нейтрофилия Использование аэрозольного липосахарид

Краткое содержание

Мы опишем метод индукции нейтрофилов воспаление легких на вызов аэрозольного липополисахарида распылением, для моделирования острого повреждения легких. Кроме того, основные хирургические методы для выделения легких, интубации трахеи и бронхоальвеолярного лаважа, также описаны.

Аннотация

Острое повреждение легких (ALI) является серьезным заболеванием, которое характеризуется альвеолярной нейтрофилез с ограниченными возможностями лечения и высокой смертностью. Экспериментальные модели ALI являются ключевыми в повышении нашего понимания патогенеза заболевания. Липополисахарид (LPS), полученный из грамположительных бактерий вызывает нейтрофильный воспаление в дыхательных путях и легких паренхимы мышей. Эффективное легочной доставки соединений, таких как ЛПС, однако, трудно достичь. В подходе, описанном здесь, легочная доставка на мышах достигается вызов аэрозольных синегнойной палочки ЛПС. Растворенный ЛПС аэрозоля с помощью распылителя, подключенного к сжатому воздуху. Мыши подвергались воздействию непрерывного потока аэрозоля LPS в коробке из оргстекла в течение 10 мин, а затем 2 мин после кондиционирования аэрозоль был прекращен. Интубация трахеи и последующее бронхоальвеолярного лаважа, а затем формалина перфузии был следующий выполнены, что позволяет характеристике стерильной рulmonary воспаление. Аэрозольный LPS генерирует воспаление легких характеризуется альвеолярной нейтрофилез, обнаруженных в бронхоальвеолярного лаважа и гистологических. Этот метод может быть создана за небольшую плату с нескольких приборов, и требует минимальной подготовки и опыта. Система экспозиции таким образом, может быть выполнена на регулярной основе на любой лаборатории, с потенциалом для повышения нашего понимания легких патологии.

Введение

Липополисахарид (ЛПС) является клеточной стенки компонент грамотрицательных бактерий ^1. Вызов ЛПС хорошо документированы модель острого повреждения легких, синдром характеризуется острым нейтрофилов воспаления и отека ^2. Кроме того, легочная нейтрофилия также отличительной чертой хронической обструктивной болезни легких (ХОБЛ) ^3, и ЛПС у человека был использован для моделирования ХОБЛ обострений ^4. Таким образом, экспериментальные модели воздействия ЛПС клинически значимых и ценных инструментов, чтобы понять патологии человека.

Целью легочной доставки аэрозольных ЛПС, описанных здесь, чтобы генерировать нейтрофильный воспалительную реакцию в проводящей и дыхательных путей, без системного вовлечения. Несколько методик ЛПС были описаны ранее. Внутривенной инъекции LPS является наиболее широко используется способ введения. Хотя этот метод является легко доступным, тОн первичной повреждение к эндотелию, со средним разрушения легочный эпителий следующей миграции нейтрофилов в легкие. Внутривенного введения также вызывает системное воспаление ^2, который может осложнить клинической картины на животных моделях. Системное воспаление в отличие не наблюдается с администрацией внутри трахеи. Этот метод, однако, является трудоемким и требует анестетиков, а также значительное подготовку ^{5, 6.} Кроме того, легочной осаждения этого способа введения зависит от дыхания ^7. Таким образом, осаждение легких зависит от глубины анестезии, необходимых для можно наблюдать внутри трахеи и введение переменной осаждения в дыхательных путях. В отличие от этого, в легкие с аэрозольными LPS требуется минимальное обучение, и может быть легко достигнуто на большом количестве животных с небольшим или без изменения между индивидами ^{5, 8.}Недавнее исследование подтверждает, что аэрозоль доставка превосходит внутри трахеи маршрута с учетом осаждения, и что более актуальной дозы ЛПС вызвать нейтрофильный воспаление с этой моделью ^8.

Предыдущие исследования показали, что вызов в виде аэрозоля Psuedomonas палочки LPS генерирует заметное воспалительной реакции в просвете дыхательных путей и паренхимы легких, в том числе альвеолярных пространств ^{9, 10.} Воспаление характеризуется преобладанием нейтрофилов и наличие отека легких, и, таким образом, может быть использована для решения патогенеза острого повреждения легких и получить дополнительные знания о механизмах, способствующих патологии болезни.

Протокол

Исследования на животных были одобрены этики защиты животных комитета северной части Стокгольма. Экспериментальные процедуры были выполнены в соответствии со шведским законодательством.

1. Создание ЛПС аэрозолей

1. Растворите 0,5 г очищенного П. палочки ЛПС в 50 мл стерильного физиологического раствора при легком помешивании и проверить растворения. Развести 1 мл растворенных LPS в 9 мл стерильного физиологического раствора до конечной концентрации 1 мг / мл. Защищать от света с алюминиевой фольгой и хранят при -20 ° С.
2. Оттепель растворенные LPS в темноте при комнатной температуре и сразу же смешать перед использованием.
3. В проветриваемом II уровня биологической капот, вставьте красный вход в распылитель, и подключить распылитель к сжатого воздуха в помещении с помощью трубки, предоставленной (схема рассмотрения изложением экспериментальных устройств на рисунке 1) производитель.
   ВНИМАНИЕ: соответствующие средства индивидуальной защиты, в том числе половина лицевой части многоразовой respiratили сажевых фильтров, защитных очков, перчаток и защитной одежды должна использоваться в ходе экспозиции.

Рисунок 1:. Схематическое представление экспериментальных устройств, используемых для генерирования аэрозоля на входе в распылитель соединен с подачей воздуха. Выход распылителя подключен к первому расходомера через 15,9 мм трубки и воздушного фильтра, и подача воздуха регулируется до 5,0 л / мин при давлении 2 кбар. Розетка следующем подключении к коробке из оргстекла оснащена сменными крышками и 5 мм отверстия, чтобы предотвратить нарастание давления.

4. Подключение выходное отверстие распылителя к массовому расходомеру через воздушный фильтр. Подключите массовый расходомер к электрической сети.
5. Отрегулируйте подачу воздуха 5 л / мин, с оставшимся на 1,0-2,0 бар давления.
6. Снимите массовый расходомер иотсоедините подачу воздуха.
7. Подключите выход распылителя к 15,9 мм трубки, которая раздваивается и подключается к две коробки из плексигласа с размерами: 150 х 163 х 205 мм, оснащенные сменными крышками. Каждая коробка должна иметь 5 мм отверстие в боковой противоположные входное отверстие, чтобы предотвратить нарастание давления.
8. Поместите до 5 мышей в каждой коробке из оргстекла и закрыть крышками.
9. Откройте распылитель и заполнить вкладыш, по крайней мере, 4 мл ЛПС, растворенных в стерильном физиологическом растворе или один носитель (стерильный физиологический раствор; объем не должен превышать 8 мл). Снова подключите вход для подачи воздуха.
10. Разрешить аэрозоль течь в закрытых коробках из плексигласа в течение 10 мин. Монитор животных непрерывно. Убедитесь, что подача воздуха остается жестко прикреплена к входному отверстию распылителя.
11. Отключите подачу воздуха. С крышки закрыты, пусть животные остаются в коробках из оргстекла в течение 2 мин.
12. Откройте крышки и позволяют аэрозоль для разгона, и вернуть животных к Тон клеток. Если животные появляются мокрые, поместите клетки на грелку, установленным в слабом огне, чтобы предотвратить переохлаждение.
13. Монитор животных непрерывно в течение первых 30 мин, а затем каждые 2 ч в течение первых 6 часов. Животные должны проявлять нормальную дыхательную рисунок и деятельность во время и после процедуры распыления.

2. БАЛ (BAL)

1. В экспериментальной конечной точки, глубоко обезболить животных изофлураном к следствию, как это рекомендовано ветеринарных работников вашей организации. Зажмите заднюю лапу, чтобы проверить на вывод рефлекса обеспечения достаточной глубины анестезии для проведения серьезной операции. Спрей вниз мех животных с 70% этанола.
2. Откройте живот с помощью ножниц и разорвать аорту, чтобы обескровить животное. Место кусок ткани на животе, чтобы впитать кровь.
3. Follwing эвтаназию, использовать один передне-задней срез ножницами, чтобыразоблачить грудной клетки. Поднимите грудную клетку от переднего конца грудины и использовать ножницы, чтобы проколоть мембрану в самый брюшной точки, не врезаясь в любой доля легкого. Откройте грудную клетку, делая два надреза в передне-заднем направлении (конференц ниже челюсти).
4. Осторожно потяните за исключением грудной клетки с помощью щипцов, и сократить трахеи ниже гортани.
5. Поднимите трахею с помощью пинцета и удалить легкие, сокращая связки, соединяющие доли в грудной полости, и осторожно потянув на жировой и сердечной ткани.
6. Вставьте полиэтиленовую трубку (внутренний диаметр: 0,58 мм; Внешний диаметр: 0,965 мм) в трахею и закрепите трубку со строкой шелковой нитью.
7. Галстук на многолепестковым (четыре долей правого легкого) с шелковой нитью.
8. Вставка 23 иглы в полиэтиленовую трубку и медленно вводят 250 мкл охлажденного льдом стерильный PBS в одной доли с 1 мл шприца.
9. Осторожно нажмите легкиеВ 30 раз и собирают жидкость через шприц. Повторите процедуру с 200 мкл PBS (приблизительно 300 мкл PBS, должны быть извлечены из одной доли от общего объема впрыскиваемого 450 мкл).
10. Держите БАЛ (БАЛ) на льду, или перечислить Бал клетки немедленно. Количество клеток с heamocytometer, используя раствор Turk для окрашивания клеток ^11. Рассчитать общее количество клеток путем умножения количества клеток с коэффициент разбавления окрашивающего раствора и объема внутри рассчитывали области heamocytometer.
11. Подготовка дифференциальных кровяных клеток из cytocentrifuged клеток, как описано в другом месте ^11.

3. фиксации формалином легочной ткани для гистологического оценки

1. Снимите многолепестковым и оснастки заморозить на сухом льду. Хранить при -80 ° С.
2. Подключению 60 мл шприц с поршнем удалены на металлической опорной стойке. Заполните шприц с 10% формалинвысота 20 см выше лабораторном столе, представляющих 20 см с постоянным давлением.
3. Подключение 23 иглы, прикрепленный к трахее в шприц 60 мл с помощью пластиковой трубкой с клапаном для регулирования потока формалина.
4. Вдувать в доле легкого с формалином в течение 5 мин. Отключите иглу и снимите его вместе с полиэтиленовой трубе от трахеи, потянув на шелковой нити, чтобы закрыть трахеи и сохранить давление в легких.
5. Погрузитесь доли легкого в формалине и исправить течение 24 часов при 4 ° С.
6. Промыть фиксированной ткани в три раза, по крайней мере, 20 мин с 70% -ным этанолом и обезвоживают с помощью ксилола следующей схеме (1 час каждый):
   • 3x 70% этанола
   • 3x 95% этанола
   • 3x 100% этанола
   • 3x ксилол
   • 1x (жидкость) парафина
7. Вставить обезвоженной ткани в парафин, разрезать на 4-5 мкм секций и краситель гематоксилином и эозином, чтобы позволить для гистологического оценки.

Результаты

Вызов аэрозольного P. палочки ЛПС, как правило, дает выраженный воспалительный ответ в просвете дыхательных путей и альвеол пространства, характеризующиеся преобладанием нейтрофилов на обоих ранних и поздних временных точках.

Аэрозольный LPS индуцирует легочную нейтрофилию

C57BL / 6by и BALB / с мышей воздействию аэрозоля P. палочки LPS или в одиночку транспортных средств и нейтрофилы были перечислены в БАЛ. Общее число клеток в БАЛ C57BL / 6by мыш...

Обсуждение

Аэрозольный LPS генерирует воспалительную реакцию в дыхательных путях, характеризуется нейтрофилов в эпителиальных подслизистой, пробелы, окружающие проводящие дыхательные пути, а также альвеолярных пространств. Это, вместе с увеличением общего содержания белка в БАЛ, указателем утечки плазмы, представитель патологии острого повреждения легких. Как ЛПС вызывает стерильный воспаление, реакция не зависит от адаптивного иммунного ответа, и существуют ограничения на отношение к бактериальных инфекций. Методика может, однако...

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье

Имя	Компания	Каталожный номер	Комментарии
Очищенный Pseudomonas aeruginosa LPS	Sigma-Aldrich		Harmful. Рекомендуется очищение. Можно использовать ЛПС, очищенный от других бактрий.
Звездный небулайзер для спринта Pari LC	PARI Respiratory Equipment Inc.	023G1250
Массовый расходомер TSI 4040	TSI	4040	Можно использовать альтернативный продукт от поставщика.
Saint-Gobain 15,9 мм Tygon tube	Sigma-Aldrich	Z685704	Рекомендуется марка.
Коробки из плексигласа со съемными крышками	Изготовленные по индивидуальному заказу	Н/Д	150 x 163 x 205 мм (отверстие 2 мм сбоку).
3M Halfface Многоразовый респиратор	3M	7503	Рекомендуемая марка.
Усовершенствованные сажевые фильтры 3M (P100)	3М	2291	Рекомендуемая марка.
Ножницы	VWR	233-1104	Можно использовать предпочитаемые ножницы.
Можно использовать щипцы	VWR	232-1313	Предпочтительные щипцы.
Intramedic PE50 полиэтиленовая трубка	BD	427411	марки Rerecommended.
Ethicon 2-0 Перма-ручной шелковый протектор	VWR	95056-992	Рекомендуемая марка.
26 ½ измерительная игла			Существуют альтернативные поставщики.
1 мл BD шприц со скользящим наконечником, нестерильный	BD	301205	Существуют альтернативные поставщики.
60 мл шприц BD Luer-Lok, нестерильный, полипрополеновый	BD	301035	Существуют альтернативные поставщики.
Флюка Гематоксилин-Эозин	Сигма-Олдрич	3972	Существуют альтернативные поставщики.
Tü Решение rk	Merck Millipore	109277
Настольная центрифуга			Существуют альтернативные производители.
Можно использовать цитоцентрифугу Cytospin 4	Thermo Scientific	A78300003	Alternative центрифугу
HEMA-3 набор характеристик	Fisher Scientific	23-123-869	Существуют альтернативные наборы для окрашивания.
Раствор формалина, нейтральный буферизованный, 10%	Sigma-Aldrich	HT501128	Существуют альтернативные поставщики.