-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Добыча Venom и Venom железы Microdissections от пауков для протеомные и транскриптомных анализов

Research Article

Добыча Venom и Venom железы Microdissections от пауков для протеомные и транскриптомных анализов

DOI: 10.3791/51618

November 3, 2014

Jessica E. Garb1

1Department of Biological Sciences,University of Massachusetts Lowell

Cite Watch Download PDF Download Material list
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

In This Article

Summary Abstract Introduction Protocol Representative Results Discussion Disclosures Acknowledgements Materials References Reprints and Permissions

Erratum Notice

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Retraction Notice

The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice

Summary

Эта статья предусматривает протокол для извлечения яда из пауков с помощью электрической стимуляции в целях: 1) проводить протеомный характеристику, 2) стимулировать экспрессию гена железы яд, и 3) выполнение функциональные исследования ядов. За этим следует описание яд железы microdissections для исследований экспрессии генов.

Abstract

Ядов химически сложные выделения, как правило, включающие многочисленные белки и пептиды с различными физиологическими деятельности. Функциональная характеристика ядовитых белков имеет важные биомедицинские приложения, в том числе идентификации приводит наркотиков или зондов для клеточных рецепторов. Пауки являются большинство видов богатой клады ядовитые организмы, но яды лишь несколько видов хорошо понимал, в части из-за трудностей, связанных со сбором мельчайшие количества яда от мелких животных. Эта статья представляет собой протокол для сбора яда из пауков с помощью электрической стимуляции, демонстрируя процедуру на Западной черной вдовы (Latrodectus Геспер). Собранный яд полезен для различных последующих анализов в том числе прямой идентификации белков через масс-спектрометрии, функциональных анализов, и стимуляции экспрессии генов яд для транскриптомных исследований. Эта техника имеет преимущество над протоколами, которые изопоздно яд из целых железы гомогенатах, которые не отделяют подлинные компоненты яда из клеточных белков, которые не секретируемых как часть яда. Типичные результаты демонстрируют обнаружение известных пептидов из яда собранного образца с использованием масс-спектрометрии. Процедура сбора яда следуют протокола для рассечения яда паука желез, с результаты демонстрируют, что это приводит к характеристике яда-экспрессированных белков и пептидов на уровне последовательности.

Introduction

Яды выделениями животных преимущественно вводят в другое животное для целей хищничества или обороны, а также имеют важные биологические приложения с биомедицинской актуальности 1-3. Только некоторые животные синтезировать яд, но его производство таксономически широко распространены беспозвоночных (например, книдарий, моллюсков-конусов, скорпионов, пауков и) и позвоночных (например, змей, некоторых рыб и млекопитающих), потому что он самостоятельно развивалась несколько раз в 1,4 , Биохимические характеристики ядов, как правило, показывают, что они состоят из широкого спектра белков и пептидов, которые в основном действуют на кровеносную и нервной систем, инъецированных животных, чтобы быстро доставить составные токсины 1. Небольшая часть ядовитых животных может представлять угрозу для человека, особенно видов с синантропных распределений 5. Изучение состава яда и функциональной деятельности играет важную роль вфункциональные характеристики позвоночных клеточных компонентов (в частности, нейронные ионные каналы) 6 и в выяснении фундаментальные клеточные процессы (например нейросекрета) 7. Кроме того, выберите яда пептиды обладают полезными свойствами в биомедицинских контекстах, в том числе их использование в качестве средства лечения рака и боли 8,9, и добываются на кандидатов приводит наркотиков и развития против змеиного яда. Ядов также играют заметную роль в экологическом и эволюционном исследований 1,4,10,11, таким образом, коллекция этих опасных выделений имеет множество утилит.

Есть> 40000 описанных видов пауков (порядка Пауки), и все, кроме одного из пауков семей более чем 100 обладают парных ядовитых желез, которые оканчиваются в клыков 12. Видовое разнообразие высокой пауков предполагает, что они представляют собой крупнейший клад ядовитых организмов. Однако биохимические характеристики ядов пауков есть лargely сосредоточено на небольшом количестве видов наиболее часто связанных с человеческой укуса. Последние протеомные и транскриптомных исследования ядов пауков указывают, что они, как правило, содержат много уникальных белков и пептидов 2,13,14. Достижения в области высокой пропускной кДНК последовательности и масс-спектрометрии пептидов дактилоскопии значительно облегчило открытие этих ядовитых белков 15. Тем не менее, такая работа начинается со сбора достаточного яда и / или ядовитых желез из пауков и подробной документации для таких методов мало 16.

Эта статья представляет собой протокол для сбора яда и ядовитых желез из черная вдова пауков, которые могут быть применены к подобного размера пауков. Сбор яда отдельно от желез позволяет идентифицировать белки, которые секретируются в яд, в отличие от белков, выполняющих другие клеточные функции. Черные вдовы и другие Lвиды atrodectus широко признаны одними из самых опасных пауков в связи с их высокой нейротоксической яда, который вызывает сильную боль у человека, который иногда сопровождается обильным потоотделением, мышечных сокращений, гипертонии, затрудненное дыхание и пятнистый паралича 5. Протокол коллекция яд, представленные здесь использует электростимуляции доставить электрический ток для анестезии пауков, чтобы вызвать мышечные сокращения и высвобождения яда. Капли яда быстро собрали с микро-капилляров и разливают в пробирки для хранения морозильной. Поскольку протокол включает опасные процедуры, она должна быть выполнена только с помощью хорошо обученных людей, и осторожность призвал на ключевых шагов. Собранный яд имеет множество применений, таких как характеристики и изоляции учредительных молекул 2, для физиологических экспериментов или функциональных анализов 18, и, чтобы стимулировать экспрессию гена яда 11. Протокол завершается DESCRiption из яда железы диссекции и сохранение полезной для клонирования яда-специфических генов, экспрессия которых было показано, что происходит в 2-3 дней после яда истощение в различных пауков 10,11.

Protocol

1. Подготовка Электро-стимулятор аппарата

  1. Подключите электро-стимулятор шнур питания к розетке и подключите внешний педаль для внешнего входного сигнала.
    Примечание: Электрические провода должны быть надежно изолированы и подвергаются металл доставки ток не должны быть затронуты. Носите латексные или нитриловые перчатки для защиты. Выключатель питания Электро-стимулятор должен быть в положении ВЫКЛ при подключении шнура питания и крепления проводов.
  2. Подключение положительный электрод к выходному разъему красного на электро-стимулятора (когда переключатель полярности находится в нормальном режиме) и подсоединить отрицательный электрод с выходным выводом черного. Примечание: Каждый электрод провод должен прекратить в крокодил.
  3. Установите стимулятор для следующих рекомендуемых начальных установок: напряжение = 7 V, частота = 1 импульсов в секунду, задержка = 0 мс, продолжительность = 200 миллисекунд, две импульсы переключения = обычная, и переключатель режима = выключен.
  4. Контрольный выход из электродов путем присоединения зажимами для voltmeтер положительные и отрицательные щупы. Включите выключатель питания стимулятора и доставить ток с педалью.

2. Подготовка щипцы иммобилизации и другие материалы

  1. Опустите одну зубец полулегком пинцетом в жидком пластиковым покрытием и ждать четыре часа, чтобы позволить покрытия в сухом месте. Плотно оберните 15 мм кончика противоположной зубца с одним слоем ниток хлопчатобумажных швейных и закрепите нить, связывая конец в узел.
    Примечание: нить используется для поглощения прикладной физиологический раствор, что способствует электрической проводимости, в то время как пластиковое покрытие обеспечивает изоляцию для замедления тока.
  2. Вырезать кончик тупой иглы для подкожных инъекций с острыми ножницами и сгладить открытие с наждачной бумагой. Приложите иглу к вакуумной отходов ловушку (например, вакуум-фильтра колбы) через трубки.
    Примечание: игла всасывания от воды и пересказывают, и будет служить для замыкания цепи, созданной стимулятор электродов. Открытие игла муул быть достаточно малы, чтобы не нанести вред паука, но достаточно большой, чтобы вакуумного решения без засорения (например, 25 G х 1 ½ в колеи, см список материалов).
  3. Позиция в полулегком щипцы горизонтально в плотно закрытом положении с помощью виниловым покрытием двусторонний зажим, прикрепленный к магнитным основанием или постоянной аппарата стенда под полем вскрытии микроскоп зрения, с пластиковым покрытием зубец щипцов сверху и нить покрыта зубец на нижней.
    Примечание: двусторонний зажим поддерживается в стационарном положении на магнитном основании с помощью держателя зажима (см список материалов). Резинкой может быть плотно закреплены вокруг зубцами полулегком щипцов, рядом с держателем зажима, чтобы добавить дополнительное давление, чтобы держать в полулегком щипцов в закрытом положении вокруг паука раз ввел.
  4. Прикрепите положительный зажим электрода аллигатора в нижней зубец щипцов »перед резьбой и приложить отрицательное крокодил, чтобы притупить металла вакуумный иглу. Замыкания с вольтметра путем размещения положительный вывод на щипцов зубец между нитью и крокодил и размещения отрицательный провод от тупой вакуумной иглой Тест. Нажмите педаль, чтобы обеспечить достаточный ток обнаруживается и удалить ведет, если достаточный ток обнаруживается.
  5. Подготовьте несколько микрокапиллярной трубы для сбора яда. Удерживая одну микрокапиллярной трубу на одном конце с рукой в ​​перчатке и на другом конце с стерильных металлических щипцов, поместив конец щипцов-горизонтально над пламенем горелки Бунзена. Потяните на микрокапилляр с металлическими щипцами от пламени, чтобы создать удлиненную наконечник, удерживая другой конец в стационарном положении.
    Примечание: носить защитные очки, как микрокапилляры можете легко перелом.
  6. Отдых подготовленные микрокапиллярах на монтажной замазки полосы в чашке Петри. Изучите микрокапиллярных заканчивается под микроскопом рассекает и создать небольшой, скошенный отверстие в вытащил конце со стерильными металлическими щипцами.
  7. Лябел переменное число стерильных 0,5 мл пробирки. Добавить стерильной деионизированной воды, чтобы стерильные пробирки (например, 5 мкл деионизированной воды автоклавного). Закрыть трубы и место трубки на льду.
  8. Приготовьте солевой раствор в химический стакан и заполнить втором стакане с водой в автоклаве.

3. Иммобилизация Паук в щипцы

  1. Включите CO 2 танка и перенести паука из закрытой пластиковой сбора флакона (см список материалов) в СО 2 камеры с помощью длинных металлических щипцов.
    Примечание: черные пауки вдовы имеют опасную яд; всегда носите перчатки во время этого протокола.
  2. Держите паука в камере в течение 5-10 мин или до наркозом и больше не двигаться, когда мягко ткнул с длинными щипцами. Используйте пипетки передачи мочить нить на щипцы с физиологическим раствором.
    Примечание: Рекомендации по CO 2 параметров анестезии для черных вдов, относятся к Испании и Мур 19.
  3. Получить наркозом паука из CO 2камера, выбирая его по его передних ног с использованием тупых рассекает щипцов и руки в перчатках. Перемещение наркозом паука полулегком щипцы аппарат. Отдельные зубцы закрытых полулегком пинцетом и поместить головогрудь паука между зубцами и позволяют зубцы, чтобы закрыть запорный обеспечить паука проводится крепко на месте, но не быть раздавленным. Убедитесь, что паук находится панцирь тыльной стороной вниз (см Foelix 20 для руководства к паука анатомии), опираясь на нити покрыты зубцами, и брюшная сторона панциря в перед пластиковое покрытие, в то время как положительный электрод остается прикрепленной к нижней вилке. Работают быстро при обращении паука.
  4. Отрегулируйте не рассекает микроскопа увеличение, фокус, и источник света, пока хелицер паука и клыки четко видны.

4. Яд Коллекция

  1. Включите вакуум и спрей паука хелицеры с водным раствором, используя второй тупой наконечником шприца пeedle. Всасывания в сторону воды с вакуумной иглой для удаления примесей.
  2. Сенсорный вакуумный иглу с прикрепленной отрицательного электрода к паука трибуны и доставить импульс с педаль один или более раз. Вакуумная от пересказывают при необходимости.
    Примечание: паук трибуна находится внутри рта кзади, чтобы Хелицеры на спинной поверхности между хелицер и endites (см Foelix 20 для детального паука анатомии). Примечание: При каждом импульсе, ноги контракт паука, и яд будет виден в виде прозрачных капель, выходящих из клыков.
  3. Соберите яд капли с кончика микрокапиллярной и передачи капиллярного кончика в 0,5 мл пробирку с водой или буферным раствором (раствор будет втягиваться в капилляр).
    Примечание: во избежание проколов паука с капилляра, которые могут привести к загрязнению гемолимфы и смерти. Также во избежание загрязнения капилляра с шелком и клеем из фильеры.
  4. Прикрепите передачи шприц с адаптером трубка для микрокапилляр (на конце, противоположном кончике сбора) и гispense яд решение вернуться в трубке. Поместите трубку на льду.
    Примечание: Утилизировать капилляров отходов в соседнем контейнер для острых предметов.
  5. Разместить пластиковую сбора флакон, вместе с его крышкой, рядом с пауком. Аккуратно возьмите паука ноги с тупыми Препаровальный щипцы в одной руке и осторожно откройте полулегком щипцы штыри с другой стороны, раздвижные паука в сборе флакон с тупыми щипцами и быстро тесном крышкой. Продолжить с рядом пауков и магазинов яда содержащих труб в -80 ° C морозильнике, когда закончите.
    Примечание: по-прежнему проявлять осторожность при перемещении паука от щипцов обратно в пузырек. Убедитесь, что сбор флакон и крышка находится неподалеку от паука для ее быстрой передачи и в перчатках.

5. ядовитой железы Вскрытия

  1. Два-в-три дня после сбора яда, обезболить паука в СО 2 камеры (см шаг 3,1). Заполните жидкий носитель азота и место рядом с рассекает микроскоп.
    Примечание: белыйан работе с жидким азотом, защита использование глаз и криогенных перчатки.
  2. Чистый район рассечение и рассечения щипцы с раствором, что исключает РНКазы и ДНК загрязнения. Заполните небольшую чашку Петри, размещенный под микроскопом рассекает с рассечения буфер (например, цитрат 1x солевой раствор-натрия (SSC) буфере).
  3. Передача паук из CO 2 камеры на чашке Петри и использовать пинцет, чтобы быстро отделить головогрудь с живота.
  4. Держите головогрудь под микроскопом рассекает с пинцетом и поместить хелицеры в поле зрения. Используйте острые концы второй парой щипцов, чтобы вырезать кутикулу присоединения к панцирь к боковым аспектов хелицер. Сбоку понять хелицеры, используя вторую пару щипцов и аккуратно потяните вперед и назад, пока яд железы не вытащил.
  5. Отдельные железы от хелицер (или оставить прикрепленные к Хелицеры при желании) и перевод на cyrosafe трубки 0,5 мл. Место Клосаред трубки в жидкий азот.
    Примечание: каждый рассечение следует принимать не более 15 мин.
  6. Повторите рассечение с дополнительными пауков пока не закончено. Передача трубки из жидкого азота в -80 ° C морозильнике.

Representative Results

Коллекция яда и яд железы вскрытий часто выполняются охарактеризовать яда белки и пептиды на уровне 10,11,15 последовательности. Собранные яд также могут быть использованы в физиологических анализов, чтобы определить их функциональную активность 18. Сбор яда будет стимулировать экспрессию гена железы яда, тем самым облегчая клонирование конкретных токсина транскриптов с помощью ОТ-ПЦР 10,11. Идентификация яда белков также может быть выполнена в высокой пропускной образом за счет интеграции стандартных методов масс-спектрометрии с базами данных последовательностей, полученных из яда железы кДНК библиотек 15,21. Примером такой работы, начиная от яда и желез, собранных с использованием протокола указано выше, демонстрируя свою эффективность, показано на рисунке 1.

Venom собраны из L. Геспер взрослые самки переваривали трипсином и подвергают в раствореАнализ MuDPIT, которая связывает ВЭЖХ (высокоэффективной жидкостной хроматографии) с тандемной масс-спектрометрии (MS / MS). Вот анализ MuDPIT была выполнена в Университете Аризоны протеомики консорциума. Массы обнаруженных пептидов и их фрагментов (диссоциированных ионов дочерние, выведены из спектров), сравнивали с пептидных последовательностей теоретически предсказанные переводов из последовательностей кДНК, полученных из библиотеки экспрессии генов, построенного из L. Геспер ядовитых желез (железы, приобретенные в соответствии с протоколом вскрытия описано выше) 21. В этом эксперименте, 36 были обнаружены белки от всех собранных спектров, на 99,9% -ного порога вероятности, и содержали по крайней мере один пептид обнаружено. Один из обнаруженных белков поддерживается 43 общего спектров (образец спектров показано на фиг.1А), соответствующие трем эксклюзивных пептидов, охватывающих 35% белковой последовательности (Фиг.1В). Обнаруженный протеин (в переводе с collecte d кДНК) имеет максимальную BLASTP хит для latrodectin от L. tredecimguttatus (GenBank, P49125.1), с электронной счетом 2E-46, и разделяет 80% идентичностью на уровне аминокислотной последовательности белка с обнаруженной в этом эксперименте. Latrodectin, который также известен как альфа-latrotoxin низкой белка молекулярной массы, является признанным яд составляющая черной вдовы пауки 22, 23, проверки эффективности представленной протокола. Некоторые белки, определенные из яда соответствуют последовательностям, для которых нет BLAST хитом не найдены. Неясно, является ли такой результат из-за ограниченных геномных ресурсов, доступных для пауков, а также ограниченного функционала информации для своих белков, или из-за неизвестного белка представляет собой яд примеси. Тем не менее, ген или экспрессии белка анализирует изучения обилие такого нового белка в ядовитых желез по сравнению с другими тканями должны выявить, является ли он подлинным компонент яда.

ЛОР "л: держите-together.within-страницу =" всегда "> Рисунок 1
Рисунок 1: Latrodectin пептид, идентифицированный с черной вдовы яда с помощью масс-спектрометрии () представитель спектры (один из 43) обнаружен с помощью MS / MS части MuDPIT анализа L.. Геспер яд, который был назначен в предсказанной переводе собранной последовательности кДНК, показанной в части В. спектров показывает массы к заряду (m / z) обнаруженных дочерних ионов на горизонтальной оси, полученного путем фрагментации исходного пептида (CGEEDFGEEIVK), с буквами на верхней указывающий на пептидную последовательность на основе дочерних ионов масс. (В) последовательности белка, к которой спектры в части А был назначен, показывающий в красный, жирный и подчеркнутый текст собой соответствующую последовательность из спектров, приведенных в части А, дополнительный красный текст (не жирный) представляет собой еще один пептид в этом белке обнаружен с другой собранной зрectra. Последовательность белка в переводе с последовательностью кДНК, полученной из расчлененных ядовитых желез.

Discussion

Автор не имеет никакого отношения к раскрытию и никаких конкурирующих финансовых интересов.

Disclosures

Эта статья предусматривает протокол для извлечения яда из пауков с помощью электрической стимуляции в целях: 1) проводить протеомный характеристику, 2) стимулировать экспрессию гена железы яд, и 3) выполнение функциональные исследования ядов. За этим следует описание яд железы microdissections для исследований экспрессии генов.

Acknowledgements

Я благодарность следующим людям за их помощь в развитии этого протокола: Чак Кристенсен, Грета Бинфорд, Алекс К. Ланкастер, Конрад Zinsmaier и Mays Имада. Масс-спектрометрия и протеомика данные были приобретены Аризона протеомики консорциума при поддержке NIEHS гранта ES06694 к SWEHSC, NIH / NCI грант CA023074 к AZCC и по BIO5 института Университета Аризоны. Финансирование этой работы была предоставлена ​​из Национального института здоровья (National Institute общей медицины) от грантов 1F32GM83661-01 и 1R15GM097714-01 до Джессика Е. наряд.

Materials

Нервно-мышечный стимулятор (электростимулятор) Grass TechnologiesSD9http://www.grasstechnologies.com/products/stimulators/stimsd9.html
ВольтметрRadioShack22-223любой общий вольтметр/мультиметр может быть заменен
Остроконечные легкие щипцыBioquip4748
Plasti DipPerformixдоступны в ace Hardware
25 G x 1½ в прецизионном скольжении игла для подкожных инъекцийBD Medical305127
Вакуумный фильтр колба 1 лNalgeneDS4101-1000меньших размеров колбы также может работать
воронка Buchner Two Piece, 90 ммNalgene4280-0900
5 μ l Капиллярные отверстия (микрокапилляры)VWR53508-375
Монтажная шпатлевка Loctiteдоступен в Ace Hardware
Универсальный сверхдлинный щипцы общего назначения Длина щипцов: 11-13/16 дюймов.Буфер Fisher10-316C
SSC, 20x (pH 7,0), молекулярный классPromegaV4261может быть изготовлен из стандартных химических веществ (150 мМ NaCl, 15 мМ цитрат натрия)
Пробирки Eppendorf safe-lock 0,5 мл (криогенные безопасные)Eppendorf22363611
Nalgene Dewar, 1 л, HDPE, настольная колба с жидким азотомThermo Scientific4150-1000
Rnase AwayVWR53225-514
Ультратонкий пинцет (рассекающие щипцы)EMS78310-0аналогичные высококачественные тонкоточечные щипцы могут быть заменены
Ножной переключатель/педальLinemaster Switch Corp.491-S
Двухконтактный удлинительный зажим, с виниловыми обтянутыми втулками, 8,5 дюймовVWR21570-007аналогичные модели могут быть заменены
Держатель зажимаVWR89084-746аналогичные модели могут быть заменены, должны учитывать диаметр удлинительного стержня зажима
Магнитное основание (удерживает удлинительный зажим через зажимной держатель)VWR300042-270аналогичное устройство, способное надежно удерживать удлинительный зажим в фиксированном положении, может быть заменено
пластиковыми сборными флаконами (большими/40 др)Bioquip8940
Хлопчатобумажная швейная нитьJoann ткань и магазин для рукоделия7245855аналогичный продукт может быть заменен

References

  1. Fry, B. G., et al. The toxicogenomic multiverse: convergent recruitment of proteins into animal venoms. Annu. Rev. Genom. Hum. G. 10, 483-511 (2009).
  2. Escoubas, P., Quinton, L., Nicholson, G. M. Venomics: unravelling the complexity of animal venoms with mass spectrometry. J. Mass. Spectrom. 43 (3), 279-295 (2008).
  3. Twede, V. D., Miljanich, G., Olivera, B. M., Bulaj, G. Neuroprotective and cardioprotective conopeptides: An emerging class of drug leads. Curr. Opin. Drug Disc. 12 (2), 231-239 (2009).
  4. Casewell, N. R., Wüster, W., Vonk, F. J., Harrison, R. A., Fry, B. G. Complex cocktails: the evolutionary novelty of venoms. Trends Ecol. Evol. 28 (4), 219-229 (2013).
  5. Vetter, R. S., Isbister, G. K. Medical aspects of spider bites. Annu. Rev. Entomol. 53, 409-429 (2008).
  6. Adams, M. E., Myers, R. A., Imperial, J. S., Olivera, B. M. Toxityping rat brain calcium channels with omega-toxins from spider and cone snail venoms. Biochemistry. 32 (47), 12566-12570 (1993).
  7. Silva, J. -. P., et al. Latrophilin 1 and its endogenous ligand Lasso/Teneurin-2 form a high-affinity transsynaptic receptor pair with signaling capabilities. PNAS. 108 (29), 12113-12118 (2011).
  8. Williams, J. A., Day, M., Heavner, J. E. Ziconotide: an update and review. Expert Opin. Pharmacother. 9 (9), 1575-1583 (2008).
  9. Veiseh, M., et al. Tumor paint: a chlorotoxin:Cy5.5 bioconjugate for intraoperative visualization of cancer foci. Cancer Res. 67 (14), 6882-6888 (2007).
  10. Binford, G. J., et al. Molecular evolution, functional variation, and proposed nomenclature of the gene family that includes sphingomyelinase D in sicariid spider venoms. Mol. Biol. Evol. 26 (3), 547-566 (2009).
  11. Garb, J. E., Hayashi, C. Y. Molecular evolution of α-latrotoxin, the exceptionally potent vertebrate neurotoxin in black widow spider venom. Mol. Biol. Evol. 30 (5), 999-1014 (2013).
  12. Platnick, N. I. . The World Spider Catalog., Version 14.0., DOI: 10.5531/db.iz.0001. , (2013).
  13. Sollod, B. L., Wilson, D., Zhaxybayeva, O., Gogarten, J. P., Drinkwater, R., King, G. F. Were arachnids the first to use combinatorial peptide libraries. Peptides. 26 (1), 131-139 (2005).
  14. King, G. F., Hardy, M. C. Spider-venom peptides: Structure, pharmacology, and potential for control of insect pests. Annu. Rev. Entomol. 58 (1), 475-496 (2013).
  15. Escoubas, P., Sollod, B., King, G. F. Venom landscapes: Mining the complexity of spider venoms via a combined cDNA and mass spectrometric approach. Toxicon. 47 (6), 650-663 (2006).
  16. Kristensen, C. Comments on the natural expression and artificial extraction of venom gland components from spiders. Toxin Rev. 24 (3-4), 257-270 (2005).
  17. Ushkaryov, Y. A., Volynski, K. E., Ashton, A. C. The multiple actions of black widow spider toxins and their selective use in neurosecretion studies. Toxicon. 43 (5), 527-542 (2004).
  18. Graudins, A., et al. Cloning and activity of a novel α-latrotoxin from red-back spider venom. Biochem. Pharmacol. 83 (1), 170-183 (2012).
  19. Spagna, J. C., Moore, A. M. F. Safe immobilization by CO2 of Latrodectus hesperus (Arachnida: Theridiidae). Pan-Pac. Entomo. l. 74 (4), 210-213 (1998).
  20. Foelix, R. . Biology of Spiders. , (2010).
  21. Haney, R. A., Ayoub, N. A., Clarke, T. H., Hayashi, C. Y., Garb, J. E. Dramatic expansion of the black widow toxin arsenal uncovered by multi-tissue transcriptomics and venom proteomics. BMC Genomics. 15, 366 (2014).
  22. Pescatori, M., Bradbury, A., Bouet, F., Gargano, N., Mastrogiacomo, A., Grasso, A. The cloning of a cDNA encoding a protein (latrodectin) which co-purifies with the α-latrotoxin from the black widow spider Latrodectus tredecimguttatus (Theridiidae). Eur. J. Biochem. 230 (1), 322-328 (1995).
  23. Grasso, A., Pescatori, M. Structural and functional studies of latrodectin from the venom of black widow spider (Latrodectus tredecimguttatus). Adv. Exp. Med. Biol. 391, 237-243 (1996).
  24. Szeto, T. H., et al. Isolation of a funnel-web spider polypeptide with homology to mamba intestinal toxin 1 and the embryonic head inducer Dickkopf-1. Toxicon. 38, 429-442 (2000).
  25. Binford, G. J. An analysis of geographic and intersexual chemical variation in venoms of the spider Tegenaria agrestis (Agelenidae). Toxicon. 39, 955-968 (2001).
  26. Alape-Girón, A., et al. Snake venomics of the lancehead pitviper Bothrops asper: geographic, individual, and ontogenetic variations. J. Proteome. Res. 7 (8), 3556-3571 (2008).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request Permission

Play Video

Добыча Venom и Venom железы Microdissections от пауков для протеомные и транскриптомных анализов
JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code