Методическая статья

Эффективное плюрипотентных клеток поколения от крови Использование эписом и HDAC ингибиторов

DOI:

10.3791/52009

⸱

28 октября 2014 г.

 ,  ,  ,  ,  , 
1Clinical Research Division, Fred Hutchinson Cancer Research Center, 2Division of Hematology, The Children's Hospital of Philadelphia, 3Department of Pathology, The Children's Hospital of Philadelphia

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Здесь мы опишем протокол для создания человека индуцированных плюрипотентных стволовых клеток из периферической крови с использованием стратегии перепрограммирования эписомы основе и ингибиторы гистондеацетилазы.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта рукопись иллюстрирует протокол для эффективного создания интеграционных свободной человека индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (ИПСК) из периферической крови с помощью эписомные плазмиды и гистондеацетилазы ингибиторы (HDAC). Преимущества этого подхода включают: (1) использование минимального количества периферической крови в качестве исходного материала; (2) nonintegrating перепрограммирования векторы; (3) экономически эффективным способом для создания векторных бесплатно ИПСК; (4) единый трансфекции; и (5) использование малых молекул, чтобы облегчить эпигенетическую перепрограммирование. Вкратце, мононуклеарные клетки периферической крови (РВМС) изолированы от рутинных проб флеботомии и затем культивировали в определенных факторов роста с получением высокой пролиферативной население эритроцитов клеток-предшественников, которые заметно поддаются перепрограммированию. Nonintegrating, nontransmissible эписомные плазмиды, выражающие OCT4, SOX2, Klf4, MYCL, LIN28A, и p53 короткие шпильки (SH) РНК являются ВведеCED в производные эритробластов с помощью одного nucleofection. Котрансфекции эписомы что выражает повышенной зеленый белок флуоресцентный (EGFP) позволяет легко идентифицировать трансфицированных клеток. Отдельный-дефицитных репликации плазмиды, экспрессирующей Эпштейна-Барр ядерный антиген (1 EBNA1) также добавляют к реакционной смеси в течение повышенной экспрессией белков эписомальные. Трансфицированные клетки затем высевали на слой облученного мышиных эмбриональных фибробластов (iMEFs) для дальнейшего перепрограммирования. Как только IPSC-как колонии появляются примерно в двенадцать дней после nucleofection, ингибиторы ГДАЦ добавляются в среду, чтобы облегчить эпигенетическую ремоделирования. Мы обнаружили, что включение ингибиторов HDAC обычно увеличивает поколение полностью перепрограммировать колоний ИПСК по 2 раза. После IPSC колонии демонстрируют типичную человеческих эмбриональных стволовых клеток (чЭСК) морфологию, они аккуратно перечисляемых на индивидуальные КПКО покрытием тканевых культур пластин для дальнейшего роста и расширения.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

иПСК получены из соматических тканей с помощью эктопической экспрессии минимальным набором генов плюрипотентности. Этот метод был первоначально продемонстрировано ретровирусной трансдукции фибробластов человека с OCT4, Sox2, Klf4 и CMYC, которые с высоким уровнем экспрессии в плюрипотентное состояние 1. Эти временно выраженные "перепрограммирования факторы" изменить эпигенетические пейзаж и ген профиль экспрессии целевого ячейки аналогично человеческих эмбриональных стволовых клеток 2. После создания иПСК потенциально могут быть дифференцированы в любой тип ткани для дальнейшего расследования. Таким образом, они перспективны для использования в регенеративной медицине, моделирования заболевания, и генной терапии. Однако, нарушая геном с интегрирующих вирусов имеет потенциал, чтобы изменить эндогенной экспрессии генов, клеточного фенотипа влияние, и в конечном итоге предвзятость научные результаты. Кроме того, случайные вирусные интеграция может привести к вредным сотовой еffects, включая возможность злокачественной трансформации 3 или повторного выражения онкогенных трансгенов 4. Будущие клинические приложения потребует неинтегрирующих IPSC поколения.

Эписом, которые лишних хромосом круговой молекулы ДНК, предложить стратегию для создания экономически эффективных, интеграции, свободной ИПСК 5. Сочетание эписомные векторы, показанные в таблице 1, выражают перепрограммирование факторы OCT4, Sox2, Klf4, MYCL и LIN28A. PCXLE_hOCT3 / 4-shp53-F плазмиды также содержит р53 shRNA для временного подавления TP53 повышения клеточного перепрограммирования 6. Репликации вектор с дефицитом pCXWB-EBNA1 способствует усиление факторов перепрограммирования и повышенную эффективность перепрограммирования путем предоставления кратковременное повышение экспрессии EBNA1 7. PCXLE_EGFP плазмида может быть добавлено к смеси nucleofection с целью DETErmining эффективность трансфекции или для приложений сортировки клеток. За исключением р-CXWB EBNA1, что эписомные плазмиды, используемые в этом протоколе содержать вирус происхождение Эпштейна-Барр вирусной репликации и ген EBNA1, которые опосредуют репликацию и разбиение эписома во время деления клетки-хозяина 8. В эписомы спонтанно потерял с расширением последовательных IPSC 7. Субклонирование и характеристика ИПСК с потерей вектора эписомального, которые могут быть выведены из потере экспрессии EGFP, может привести к совершенно интеграции свободных ИПСК для будущих клинических применений.

Присущее процессе генерации IPSC является подавление родословной специфических генов и реактивация плюрипотентности генов, ассоциированных с. Регуляция экспрессии генов происходит на нескольких уровнях внутри ядра, в том числе изменений в ДНК и хроматина в позволяют транскрипционные факторы, регуляторных элементов ДНК и РНК доступа полимеразы для ориентациигены. Ремоделирование эпигенетической пейзажа через глобальные изменения хроматина является ключевым компонентом для повторного выражения генетической программы плюрипотентности. Конкретный хроматина модификации, что играет важную роль в регуляции экспрессии генов является ацетилирование гистонов в конкретных остатков лизина, которые предоставляет доступ ко генов-мишеней за счет сокращения натяжения катушки гистона-ДНК. Ингибиторы ГДАЦ небольшие молекулы, которые были показаны, чтобы добавлять IPSC перепрограммирование и чЭСК самообновление 9,10, скорее всего, из-за поддержки ацетилированный состояние 11. Протокол, описанный ниже, взяты из предварительного публикации с использованием интегрирующих лентивирусы 12, обеспечивает шаг за шагом метод для оптимизации поколения IPSC из периферической крови с использованием эписом и ингибиторов HDAC. Концентрации ингибиторов HDAC, используемые здесь, половина из тех, описывается Ware, и др. 9, и обычно приводит к увеличению в 2 раза в полностью перепрограммировать колоний ИПСК более стандартуПротоколы перепрограммирования эписомные без ингибиторов HDAC. Этот уровень перепрограммирования находится на одном уровне с эффективностью мы наблюдаем лентивирусными методов. Используя этот протокол, мы эффективно генерируется IPSC от физических лиц в качестве старых как 87 лет.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Письменное информированное согласие, которые были одобрены этическими советами онкологического научного центра Фреда Хатчинсона и детей "S больницы Филадельфии, была получена из пациентов перед сбором периферической крови. Наблюдались Все организационные принципы. Все эксперименты на животных, включая MEF поколения и формирование тератомы были утверждены Комитетом по уходу и использованию Институциональная животных по.

1. фиколл Разделение МНПК и расширения эритробластов - день 0

  1. Развести периферической крови 1: 1 с Дульбекко фосфатно-солевом буфере (DPBS). В 15 мл с круглым дном полистирола трубки, тщательно слой 7 мл разведенной крови на 3 мл комнатной температуры Ficoll-Hypaque.
  2. Центрифуга образца при 400 х г в течение 30 мин.
  3. РВМС будет осели на поверхности раздела между плазмой и Ficoll-Hypaque, если смотреть в виде мутного белого слоя. Использование стерильной пипетки, собирать PBМС в один 15 мл коническую трубку. Довести объем до 10 мл, используя DPBS.
  4. Использование гемацитометра, сосчитать МНПК.
  5. Пипеток 2 × 10 6 МНПК в отдельный 15 мл коническую трубку и центрифуги при 300 мкг в течение 5 мин. Спин вниз оставшиеся клетки и заморозить при концентрации 2 × 10 6 / мл РВМС в 90% фетальной бычьей сыворотки (FBS) / 10% диметилсульфоксида (ДМСО).
  6. Подготовьте расширения среда: среда свободна КПРФ-60 в сыворотке (защиты от света) + пенициллин / стрептомицин (1%) + аскорбиновая кислота (50 нг / мл) + стволовых клеток фактор (SCF, 50 нг / мл) + интерлейкина 3 (IL- 3, 10 нг / мл) + эритропоэтин (ЕРО, 2 Ед / мл) + инсулин-подобный фактор роста 1 (IGF-1, 40 нг / мл) + дексаметазон (1 мкМ; защиты от света; оттаивать свежий аликвоту каждый носитель информации изменить).
  7. Ресуспендируйте 2 × 10 6 МНПК в 2 мл свежеприготовленного расширения среднего и поместить в одну лунку 12-луночного планшета для культуры в и инкубировать в 37 ° C увлажненном инкубаторе с атмосферой 5% O 2, 5% СО 2 и 90% N 2.
  8. На 3-й день и 6-й день, заменить средства массовой информации.
    1. Сбор клеток и мыть хорошо с 2 мл КПРФ-60, чтобы собрать все оставшиеся клетки.
    2. Центрифуга клеточной суспензии при 300 х г в течение 5 мин и надосадочную жидкость аспирации.
    3. Ресуспендируют клеток в 2 мл нового расширения среднего и вернуть их в то же 12-луночного планшета.

2. перепрограммировать клетки по Nucleofection - День 9

  1. Пипетки перепрограммирования плазмид в стерильный 1,5 мл пробирку Эппендорфа (Таблица 1).
  2. Смешайте nucleofection решение с дополнения (поставляемого производителем) и пипеткой в ​​стерильную 1,5 мл пробирку Эппендорф.
  3. Пипетка 2 мл расширения среды в одну лунку луночного планшета и место 12 в увлажненной 37 ° C инкубаторе (5% O 2, 5% СО 2 и 90% N 2) для уравновешивания перед добавлением клеток.
  4. Сборкультивируемые клетки и мыть хорошо с 2 мл КПРФ-60 для сбора оставшихся клеток.
  5. Центрифуга клетки при 300 мкг в течение 5 мин и надосадочную жидкость аспирации.
  6. Промывают клетки путем ресуспендирования в 5 мл DPBS и центрифугированием при 300 х г в течение 5 мин.
  7. Аспирируйте супернатант.
  8. Ресуспендируют клеточный осадок в 100 мкл раствора nucleofection + дополнения, заботясь, чтобы избежать образования пузырьков.
  9. Внесите суспензии клеток в пробирку, содержащую перепрограммирования плазмиды, пипетки вверх и вниз один раз, и пипеткой пробу в нижней части nucleofection кювете.
  10. Поместите кювету в nucleofection машины и запустить программы T-019.
  11. Перевести 100 мкл предварительно нагретой расширения среднего (от равновесной пластины в шаге 2.3) в nucleofection кювете.
  12. Сразу собрать весь образец и депозит в колодец подогретого расширения Medium. Избегайте сбора белый, плавающий остатки мертвых клеток.
  13. Место пластины в увлажненной 37 ° C инкубаторе (5% O 2, 5% СО 2 и 90% N 2) для роста.

3. Покрытие питающих клеток - День 10 или 11

  1. На 10 день пластина фидерных клеток.
    1. Пальто один 6 луночного культурального планшета с желатином.
      1. Пипетка 1 м на 0,1% желатина в Хенкса буфером физиологический раствор (HBSS) в каждую лунку планшета.
      2. Место пластины в увлажненной 37 ° C инкубаторе в течение по крайней мере 5 мин.
      3. Непосредственно перед использованием аспирации раствора желатина от пластины.
    2. Оттепель один флакон 2 × 10 6 мышиных эмбриональных фибробластов, облученных при 3000 сГр в 10 мл предварительно нагретой MEF Media (Игла в модификации Дульбекко (DMEM) + FBS (10%) + пенициллин / стрептомицин (1%)).
    3. Центрифуга клетки при 300 мкг в течение 5 мин и надосадочную жидкость аспирации. Ресуспендируют клеток в 12 мл MEF медиа и пипеткой 2 мл INto каждую лунку покрытых желатином 6-луночного планшета. Место пластины в увлажненной 37 ° C инкубаторе (5% O 2, 5% СО 2 и 90% N 2) до дня 12.

4. Покрытие ячеек на питающих клеток и изменение Medium - 12 день

  1. Соберите nucleofected клетки в один 15 мл коническую трубку и собрать все оставшиеся клетки промыванием хорошо с 2 мл КПРФ-60. Центрифуга образца при 300 х г в течение 5 мин.
  2. Подготовьте Перепрограммирование Среда: Искова модифицированной среде Дульбекко (IMDM) + FBS (10%) + неживотного L-глутамина (1 мМ) + несущественные аминокислоты (NEAA, 1%) + пенициллин / стрептомицин (1%) + β -mercaptoethanol (0,1 мМ) + основной фактор роста фибробластов (bFGF, добавлен свежий при кормлении, 10 нг / мл) + аскорбиновая кислота (добавлен свежий при кормлении, 50 мкг / мл).
  3. Аспирата супернатант и клетки вновь суспендируют в 12 мл среды перепрограммирования. Пипеток 2 мл на лунку клеточной суспензии в6-луночный планшет из питающих клеток (полученного в разделе 3). Центрифуга пластину при 50 мкг в течение 30 мин при комнатной температуре.
  4. Место пластины в увлажненной 37 ° C инкубаторе (5% O 2, 5% СО 2 и 90% N 2) для роста. Изменение перепрограммирования среды через день, пока IPSC колонии не начнут появляться (1-2 недели).
  5. Подготовьте чЭСК среда: DMEM / F12 1: 1 + Нокаут Сыворотка Замена (20%) + пенициллин / стрептомицин (1%) + NEAA (1%) + неживотного L-глутамина (1 мМ) + пируват натрия (1%) + бикарбонат натрия (0,12%) + β-меркаптоэтанол (0,1 мМ) + bFGF (добавлен свежий при кормлении, 10 нг / мл)
  6. Подготовка ингибиторы HDAC: бутират натрия (добавляется свежая при кормлении, 100 мкмоль), suberanilohydroxamic кислота (САХА, добавляют свежую при кормлении, 200 нМ). После того, как появляются IPSC колонии, начинают кормить клетки с ингибиторами чЭСК Средний + ГДАЦ, изменяя среду каждый день.
    ПРИМЕЧАНИЕ: натрия бутират является небольшой молекулы, что адсорбируется на пластиковых трубах, тherefore храните его в боросиликатного стекла трубки при 4 ° С.

5. Изоляция IPSC Клоны

  1. После того, как колонии Ipsc достаточно велики, чтобы быть изолированы (20-25 клеток), забрать их с P20 пипетки.
  2. Подготовка ингибиторы HDAC: бутират натрия (добавлены свежие при кормлении, 100 мкм), САХА (добавлены свежие при кормлении, 200 нМ)
  3. Поместите изолированных колоний на iMEFs в отдельных 35-мм блюд, содержащих ингибиторы чЭСК Средний + HDAC + Клонирование и восстановление дополнения.
  4. На следующий день после получения колоний, изменить среду к ингибиторам чЭСК Средний + ГДАЦ.
  5. Изменение среды каждый день, пока IPSC колонии не готовы к пассажей.
  6. Удалить ингибиторы HDAC из среды однажды колонии стабилизации при прохождении 2-3.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Через три дня после nucleofection и до посева клеток на nucleofected iMEFs, эффективность успешной nucleofection должна быть оценена с помощью флуоресцентной микроскопии для EGFP. На рисунке 1 показана типичная nucleofection эксперимент с примерно 5-10% от общего количества клеток, экспрессирующих EGFP.

Перепрограммировать колонии IPSC начнут появляться примерно через две недели после nucleofection. Колонии имеют круглую форму с четко определенными границами и могут быть иде...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Для успешного поколения IPSC при использовании этого протокола, есть несколько важных оговорок, которые следует учитывать. Во время стадии расширения эритробласт, график изменения массовой информации должны быть строго соблюдены, а отклонения могут привести к неэффективному стимуляции клеточной популяции целевой предшественников и более низкой эффективности генерации IPSC. Важно, чтобы новый расширения среду с пресной дексаметазона с каждым изменением СМИ; и базовая среда и дексаметазон КПРФ-60 должны быть защищены от с...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы заявляют, что они не имеют конкурирующие финансовые интересы.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы признают следующие гранты от NIH для поддержки этого исследования: K08DK082783 (AR), P30DK56465 (BTS), U01HL099993 (BTS), T32HL00715036 (СКС), и K12HL0806406 (SKS); и JP Маккарти Foundation (AR).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Ficoll-Paque PLUSFisher Scientific45-001-750Хранить при температуре 4 °C. Перед использованием нагреть до комнатной температуры.
DPBSLife Technologies14190-250Магазин в 4 °C.
RPMI 1640Life Technologies11875-093Магазин в 4 °C.
фетальная бычья сыворотка (FBS)Life Technologies10437028Хранить при -20 °°С; C до тех пор, пока не понадобится. Разморозить, аликвотировать, хранить при 4°С.
диметилсульфоксид (ДМСО)Сигма-Олдрич154938хранить при комнатной температуре.
QBSF-60 бессывороточный средний FisherScientific50-983-234Хранить при 4 °C.
пенициллин/стрептомицинLife Technologies15140122хранить при 4°C.
Набор нуклеофекторов клеточной линии VLonzaVCA-1003хранить при 4 °C.
2% раствор желатинаSigma-AldrichG1393Хранить при 4°С; С, разжижение в 37 °°; C водяной баней перед использованием.
Сбалансированный солевой раствор Хэнка (HBSS)Life Technologies14175-103Хранить при температуре 4 °C.
Модифицированный Eagle Medium (DMEM) Dulbecco'sLife Technologies11965-092Магазин в 4 °C.
Модифицированный Dulbecco's Medium (IMDM)Life Technologies12440-061Магазин при 4 °C.
L-глютамин, 200 мМLife Technologies25030-081Аликуот, замораживание при -20 °C.
заменимые аминокислоты (NEAA), 100XLife Technologies11140-050Хранить при 4 °deg; C, вдали от света.
DMEM/Ham's F12, 1:1Fisher ScientificSH30023.02Store at 4 °C.
KnockOut Serum ReplacementLife Technologies10828-028Aliquot, заморозьте при -20 °C.
пируват натрия, 100 мМLife Technologies11360-070Хранить при 4°С.
бикарбонат натрия, 7,5%Life Technologies25080094хранить при температуре 4 °C.
основной фактор роста фибробластов (bFGF)Life TechnologiesPHG0263Сделать запас 10 мг/мл в DPBS, аликвоте, заморозить при -20 °C. После размораживания хранить при температуре 4 °C.
бутират натрия Sigma-AldrichB5887-1GMake 2000x stock (400 mM) в DPBS, аликвота, заморозка при -20 °C. После размораживания хранить при температуре 4 °C.
Клонирование клеток hES и Восстановительная добавкаStemgent01-0014-500Хранить при -20 °deg; C до тех пор, пока не понадобится. После размораживания хранить при температуре 4 °C.
Сертифицированный ESC BD matrigelBD Biosciences35-4277Разморозить за ночь на льду при температуре 4 градуса; C, аликвоту в предварительно охлажденные пробирки с помощью предварительно охлажденных наконечников для пипеток. Хранить при -20 °deg; C до тех пор, пока не понадобится. Оттаивание при 4 градусах; C, используйте сразу.
StemSpan SFEM STEMCELL Technologies9650Aliquot, замораживание при -20 °C.
аскорбиновая кислота, порошкообразнаяSigma-AldrichA4403-100MGСделайте 5 мг/мл бульона в DPBS, стерильном фильтре, храните при 4°C.
рекомбинантный фактор стволовых клеток человека (SCF)R & D Systems255-SC-010Марка 100 μ г/м запас в SFEM, аликвота, заморозка при -20 °C. После размораживания хранить при температуре 4 °C.
рекомбинантный человеческий интерлейкин 3 (IL-3)R & D Systems203-IL-010Марка 100 μ г/мл бульона в SFEM, аликвота, замораживать при -20 °C. После размораживания хранить при температуре 4 °C.
эритропоэтин (ЭПО)R & D Systems287-TC-500Сделать 1000 ед/мл бульона в SFEM, аликвоте, заморозить при -20 °C. После размораживания хранить при температуре 4 °C.
рекомбинантный человеческий инсулиноподобный фактор роста 1 (ИФР-1)R & D Systems291-G1-200Make 100 μ г/мл бульона в SFEM, аликвота, замораживать при -20 °C. После размораживания хранить при температуре 4 °C.
β-меркаптоэтанолSigma-AldrichM7522Make 1000x stock (100 mM) в DPBS.
дексаметазонSigma-AldrichD4902-25MGMake 50x stock (50 μ М) в ДПБС, стерильный фильтр, хранить при 4°С.
SAHA (vorinostat)Cayman Chemical149647-78-9Сделать запас в 2,000x (400 mM) в DPBS, аликвоте, заморозить при -20 °C. После размораживания хранить при температуре 4 °C.
12-луночный планшет для культуры тканейFisher Scientific08-772-29
15 мл коническая трубкаSarstedt62553002
1,5 мл Eppendorf tubeFisherScientific 05-408-129
6 лунок планшет для культуры тканейFisher Scientific08-772-1B
35 мм тисуэ планшетыBD Biosciences353001
10 мл одноразовые серологические пипеткиFisher Scientific13-675-20
5 мл одноразовые серологические пипеткиFisher Scientific13-675-22
2 мл одноразовые серологические пипеткиFisher Scientific13-675-17
20 μ l наконечники для пипеток, барьерные наконечникиGenessee24-404
стеклянные пипетки ПастераFisher Scientific13-678-20D
приспособление для пипетокFisher Scientific13-681-15
pCXLE-hOCT3/4-shp53-FAddgene27077
pCXLE-hSKAddgene27078
pCXLE-hULAddgene27080
pCXLE-EGFPAddgene27082
pCXWB-EBNA1Addgene37624

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Takahashi, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131 (5), 861-872 (2007).
  2. Koche, R. P., et al. Reprogramming factor expression initiates widespread targeted chromatin remodeling. Cell Stem Cell. 8 (1), 96-105 (2011).
  3. Baum, C., Kustikova, O., Modlich, U., Li, Z., Fehse, B. Mutagenesis and oncogenesis by chromosomal insertion of gene transfer vectors. Human Gene Therapy. 17 (3), 253-263 (2006).
  4. Okita, K., Ichisaka, T., Yamanaka, S. Generation of germline-competent induced pluripotent stem cells. Nature. 448 (7151), 313-317 (2007).
  5. Yu, J., et al. Human induced pluripotent stem cells free of vector and transgene sequences. Science. 324 (5928), 797-801 (2009).
  6. Hong, H., et al. Suppression of induced pluripotent stem cell generation by the p53-p21 pathway. Nature. 460 (7259), 1132-1135 (2009).
  7. Okita, K., et al. A more efficient method to generate integration-free human iPS cells. Nature Methods. 8 (5), 409-412 (2011).
  8. Yates, J. L., Warren, N., Sugden, B. Stable replication of plasmids derived from Epstein-Barr virus in various mammalian cells. Nature. 313 (6005), 812-815 (1985).
  9. Ware, C. B., et al. Histone deacetylase inhibition elicits an evolutionarily conserved self-renewal program in embryonic stem cells. Cell Stem Cell. 4 (4), 359-369 (2009).
  10. Mali, P., et al. Butyrate greatly enhances derivation of human induced pluripotent stem cells by promoting epigenetic remodeling and the expression of pluripotency-associated genes. Stem Cells. 28 (4), 713-720 (2010).
  11. Azuara, V., et al. Chromatin signatures of pluripotent cell lines. Nature Cell Biology. 8 (5), 532-538 (2006).
  12. Sommer, A. G., et al. Generation of human induced pluripotent stem cells from peripheral blood using the STEMCCA lentiviral vector. J. Vis. Exp. (68), e4327(2012).
  13. Yoshida, Y., Takahashi, K., Okita, K., Ichisaka, T., Yamanaka, S. Hypoxia enhances the generation of induced pluripotent stem cells. Cell Stem Cell. 5, 237-241 (2009).
  14. Abbondanzo, S. J., Gadi, I., Stewart, C. L. Derivation of Embryonic Stem Cell Lines. Methods in Enzymology. 225, 803-823 (1993).
  15. Kim, H. J., Bae, S. C. Histone deacetylase inhibitors: molecular mechanisms of action and clinical trials as anti-cancer drugs. American Journal of Translational Research. 3 (2), 166-179 (2011).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

iPS Cell GenerationEpisomal PlasmidsHDAC InhibitorsPeripheral Blood Mononuclear CellsErythrocyte Progenitor CellsNucleofectionMouse Embryonic FibroblastsIntegration Free iPSCsReprogramming MediumFluorescence Microscopy

Похожие статьи