Методическая статья

Сублингвальной иммунотерапии как альтернатива Вызвать защиты от острыми респираторными инфекциями

18.7K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/52036

⸱

30 августа 2014 г.

 ,  ,  , 
1Departamento de Desarrollo Biotecnológico, Universidad de la República, 2Present Affiliation: Trinity Biomedical Science Institute, Trinity College Dublin

В этой статье

Краткое содержание

Настоящая работа иллюстрирует удобство использования сублингвальной иммунотерапии для усиления врожденного иммунного ответа в легких и обеспечения защиты от острой пневмококковой пневмонии у мышей.

Аннотация

Сублингвальный путь широко используется для доставки небольших молекул в кровоток и модуляции иммунного ответа в различных местах. Было показано, что он эффективно индуцирует гуморальные и клеточные реакции в системных и слизистых участках, а именно в легких и мочеполовом тракте. Сублингвальная вакцинация может способствовать защите от инфекций нижних и верхних дыхательных путей; Он также может способствовать толерантности к аллергенам и облегчать симптомы астмы. Модуляция иммунного ответа легких с помощью сублингвальной иммунотерапии (СЛИТ) безопаснее, чем прямое введение препаратов интраназальным путем, поскольку она не требует доставки потенциально вредных молекул непосредственно в дыхательные пути. В отличие от интраназального введения, побочные эффекты, связанные с токсичностью мозга или параличом лицевого нерва, не стимулируются СЛИТ. Иммунные механизмы, лежащие в основе СЛИТ, остаются неясными, и ее использование для лечения острых инфекций легких еще не изучено. Таким образом, необходима разработка соответствующих животных моделей СЛИТ для дальнейшего изучения ее потенциальных преимуществ.

Эта работа показывает, как выполнять сублингвальное введение терапевтических агентов мышам для оценки их способности защищать от острой пневмококковой пневмонии. Проиллюстрированы технические аспекты работы с мышами во время сублингвальной инокуляции, точной идентификации подъязычной слизистой оболочки, дренирования лимфатических узлов и изоляции тканей, бронхоальвеолярного лаважа и легких. Подробно описаны протоколы приготовления суспензии одиночных клеток для анализа FACS. Обсуждаются другие последующие приложения для анализа иммунного ответа. Также разъясняются технические аспекты получения инокулята Streptococcus pneumoniae и интраназальной провокационной нагрузки мышей.

SLIT — это простой метод, который позволяет проводить скрининг молекул-кандидатов для модуляции иммунного ответа легких. Параметры, влияющие на успех СЛИТ, связаны с размером молекул, восприимчивостью к деградации и стабильностью высококонцентрированных составов.

Введение

Общая цель этой работы - проиллюстрировать преимущества сублингвальной иммунотерапии для лечения острых респираторных инфекций (ОРИ) и представить преимущества этого пути доставки по сравнению с другими путями введения, а именно интраназально.

ОРИ вызывают миллионы смертей каждый год, особенно среди детей младше пяти лет. Streptococcus pneumoniae остается одним из основных этиологических агентов бактериальной пневмонии у младенцев и пожилых людей1,2. В настоящее время основное доступное лечение основано на использовании антибиотиков, но постоянно возникают резистентные штаммы3,4.

ЩЕЛЬ вызывает широкие реакции на системном уровне, а также на уровне слизистой оболочки, особенно на дыхательных путях5. Доказана его эффективность против гриппозной инфекции, способствуя долгосрочной защите с выработкой гуморальных и клеточных реакций6,7. Кроме того, показано, что профилактическое лечение бактериальными лизатами, доставляемыми сублингвальным путем, снижает частоты обострений хронического обструктивного бронхита у лиц пожилого возраста8 и предотвращает рецидивы респираторных инфекций у детей9. СЛИТ широко используется для лечения аллергии и астмы. Клинические исследования продемонстрировали не только его эффективность в модуляции иммунного ответа в дыхательных путях, но и его безопасность. Несмотря на растущий интерес фармацевтических компаний и исследователей к СЛИТ, механизмы, участвующие в индукции иммунных реакций слизистых оболочек после сублингвальной доставки соединений, остаются неясными. В последнее время внимание сосредоточено на механизмах формирования толерантности, связанной с десенсибилизацией аллергенов. Было высказано предположение, что резидентные и рекрутированные клетки на подъязычной слизистой оболочке, такие как дендритные клетки и макрофаги, могут способствовать толерантности после СЛИТ11-13. Дендритные клетки слизистой оболочки полости рта могут продвигать ИФН-гамма и IL-10, продуцирующие Т-хелперы11, а также рециркулировать в дистальные отделы слизистой оболочки половых органов и продвигать CD8+ Т-клетки14. Тем не менее, мало что известно о влиянии СЛИТ на врожденные клетки или ее способности улучшать клиренс патогенов во время острых респираторных инфекций.

Естественный контроль пневмококковой инфекции в легких в значительной степени зависит от эффективной и быстрой активации местных врожденных защитных механизмов. Ранее мы показали, что повышение врожденного иммунитета легких с помощью однократной интраназальной дозы флагеллина (FliC), агониста TLR5 и NLRC4, защищает 75-100% мышей, получавших летальную дозу клинического изолята Streptococcus pneumoniae серотипа 1. Было показано, что эта защита зависит от местного рекрутирования клеток GR1+ (вероятно, полиморфноядерных нейтрофилов, PMNs) и не зависит от антител, В или Т-клеток15.

Flagellin является структурным компонентом бактериального жгутика. В своей мономерной форме он распознается двумя рецепторами распознавания патогенов (PRR), TLR5, который чувствует внеклеточный FliC16, и инфламмасомой NLRC4/NAIP5, которая обнаруживает внутриклеточный флагеллин17,18. Когда FliC ощущается PRR, запускается важная воспалительная реакция. Мы и другие продемонстрировали, что закапывание очищенного FliC из Salmonella enterica serovar Typhimurium в легкие стимулирует быструю выработку хемокинов и цитокинов, особенно когда они распознаются эпителием легких, которые, в свою очередь, организуют набор иммунных клеток в дыхательные пути, в основном PMN15,19-21. Несмотря на преходящий характер, значительная инфильтрация нейтрофилов, которая происходит в дыхательных путях после назальной доставки FliC, может вызывать беспокойство при переходе к клинической терапии для использования человеком. Чрезмерное воспаление может нанести вред функции легких. Кроме того, было показано, что интраназальное введение иммуностимулирующих молекул может вызвать паралич лицевого нерва и/или токсичность для мозга22-24.

Сублингвальная иммунотерапия предлагает более безопасную альтернативу для модуляции иммунного ответа в дыхательных путях по сравнению с интраназальным путем. Он неинвазивный, безболезненный, простой и имеет хорошую податливость пациента25. Кроме того, как упоминалось ранее, он может вызывать защитные реакции в слизистой оболочке дыхательных путей без рисков, связанных с прямой интраназальной или внутрилегочной доставкой лекарственных форм. В качестве альтернативы можно использовать сублингвальный путь для доставки молекул, которые оказывают большое влияние на иммунную систему легких, но которые, как было доказано, токсичны или вызывают сильное воспаление при интраназальном введении. Помимо этих преимуществ, препараты для сублингвальной иммунотерапии имеют более низкую стоимость производства, поскольку нестерильные продукты могут быть доставлены этим путем, а эндотоксический шок не является проблемой для СЛИТ. С другой стороны, стоит отметить, что для индуцирования иммунного ответа в легких необходимы более высокие дозы иммуностимулирующих соединений по сравнению с теми, которые используются интраназальным или парентеральным путем; также высококонцентрированные растворы необходимы при использовании мышиной модели СЛИТ, так как анатомический участок, на который депонируются составы, невелик.

Основываясь на наших предыдущих опубликованных данных, мы разработали модель защиты с использованием сублингвальной иммунотерапии с флагеллином в качестве модельного иммуностимулятора. Мы продемонстрировали, что однократная доза флагеллина индуцировала 60% выживаемость против инвазивной пневмококковой пневмонии, вызванной штаммом серотипа 1, в то время как все мыши в контрольной группе умерли от инфекции в течение 5 дней. Анализ проточной цитометрии показал, что большее количество PMN рекрутируется в дыхательные пути защищенных животных после сублингвального лечения флагеллином, что позволяет предположить, что эти клетки могут быть вовлечены в механизм защиты, индуцированный сублингвальной иммунотерапией.

Это видео подробно показывает, как проводить сублингвальную иммунотерапию, а также как восстановить соответствующие ткани из подъязычной слизистой оболочки, дренируя лимфатические узлы, а также легкие и дыхательные пути для проведения дальнейшего анализа. Кроме того, в нем проиллюстрирована общая техника подготовки клеток для анализа FACS и кратко показано, как готовить суспензии Streptococcus pneumoniae и как проводить интраназальные инфекции у мышей для создания модели острой инфекции.

Протокол

Процедуры с участием животных были проведены в соответствии с протоколами N ° 071140-000821-12 и 08052010, утвержденной Почетного комиссии экспериментов на животных и директивы Совета Школы медицины, Универсидад де ла Република - Уругвай.

1 сублингвального введения терапевтического агента

  1. Приготовьте раствор, содержащий терапевтический агент для тестирования. Отрегулируйте концентрацию администрировать максимальный объем 10 мкл на мышь.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Для очищенной флагеллина от Salmonella enterica серовар Typhimurium оптимальную дозу, чтобы вызвать защиту в мыши, инфицированной первой смертельной дозы S. пневмонии серотип 1 E1586, в результате чего 100% смертность составляет 10 мкг / мышь. Флагеллин раствор должен быть нагрет при 65 ° С в течение 5 мин, чтобы обеспечить высвобождение мономеров. Для получения дополнительной информации о очистки флагеллина увидеть ссылку 26.
    1. Varу эффективная концентрация различных иммуномодулирующих агентов в соответствии с его размером молекул, чистоты, восприимчивость к протеолизу и использование мукоадгезивных веществ. Регулировка оптимальной концентрации для каждого соединения для тестирования, чтобы максимизировать его последствий. Если предыдущие исследования по интраназально были проведены для конкретного соединения, использовать начальную дозу 5 до 10 раз выше, чтобы проверить его эффективность на Сублингвальный.
  2. Анестезировать мышей путем введения коктейль, содержащий 110 мг / кг кетамина с 5,5 мг / кг Xylacine и пусть животные отдохнуть от 7 до 10 мин.
  3. Подтвердите правильное обезболивание, слегка нажав подушечку лапы одного из задних ног; если правильно наркозом животное не будет двигаться в ответ на стимул.
  4. Нанесите тонкий слой ветеринарной мази на глаза каждой мыши, чтобы предотвратить сухость в то время как под наркозом.
    Примечание: анестетики, такие как ингаляционных изофлуораном может быть также использован вместо Кетамин / Xylacine если система оснаститьдоваться индукционных камерных и головных частей доступен. Используйте индукционный камеру обезболить животных и администрировать иммуностимулирующее по Сублингвальный. Сразу подключения животное к носовой обтекатель, по крайней мере 15 минут, чтобы держать его под наркозом, чтобы избежать глотания и позволяют поглощение терапевтического соединения.
  5. Внесите раствор, содержащий иммуностимулирующим или управления транспортным средством решения; используя большой палец и указательный палец не доминантной рукой взять мышь и держать его в вертикальном положении.
  6. Использование главенствующих мест руку пару закрытых щипцов под язык и удерживать его на месте с помощью средним и безымянным пальцами, открыть щипцы слегка поднять язык.
  7. Возьмите пипетку и администрирования раствора на дне полости рта и спинной стороне языка.
  8. Удалите пинцетом и пусть остальное мыши для 3 до 5 мин, прежде чем положить его обратно в клетку. Чтобы гарантировать, что нормотермии поддерживается в анестезированной микрофоне, соединить клетки к системе клетка нагревателя. Если такая система отсутствует, место мышей, принадлежащих к той же группе лечения обратно в соответствующей клетке одного рядом друг с другом на постельные принадлежности и частично покрыть их с чистыми ткани бумажные листы, чтобы помочь им поддерживать температуру тела.
  9. Сбор образцов тканей в любой момент времени после закапывания в иммуномодулирующего средства для анализа изменений в клеточных популяций, вызванных лечения.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В данном конкретном администрации протокола флагеллина проводили 2 ч до заражения. Определить оптимальное время между лечением и вызов для каждого конкретного терапевтического агента и возбудителя для тестирования.

2 Получение бактериальной суспензии и Интраназальное Вызов с Пневмококк

ПРИМЕЧАНИЕ: С. пневмонии является естественным патоген человека, что может причинить опасные заболевания, как инвазивные пневмонии, сепсисаи менингит. Передача может происходить при вдыхании или в контакте с слизистой оболочки. Таким образом, все образцы, которые, возможно, были в контакте с S. пневмонии необходимо обращаться в соответствующий биозащиты Уровень II объекта с использованием кабинет биобезопасности класса II. Проверьте стандартными оперативными процедурами вашего учреждения по обращению с Тип патогенов II для защитной одежды, утилизации отходов и дополнительных мер безопасности, которые могут применяться. Зараженные животные должны храниться в отдельности вентилируемые клетки в изоляторах, оснащенных HEPA фильтры. Анти-пневмококковой вакцины и антибиотикотерапия доступны. Для получения дополнительной информации см ссылки 27 и 1.

  1. Оттепель аликвоту рабочей фондовом приостановлении Пневмококк известной бактериальной КОЕ числа, полученного, как описано в 15.
  2. Центрифуга течение 5 мин при 2500 мкг в и РТ.
  3. Удалите супернатант и мыть бактериальных гранул путем приостановления его в 1 мл улerile солевой раствор. Используйте советы фильтра при подготовке бактериальной суспензии, разведения или для животных вызов.
  4. Центрифуга снова, как описано на стадии 2.2.
  5. Жидкость над осадком сливают и вновь суспендируют таблетку в соответствующем объеме стерильного физиологического раствора, чтобы получить суспензию 4х10 5 КОЕ / 50 мкл. Эта доза соответствует минимальному бактериальной дозы S. пневмонии серотип 1 E1586, который вызывает 100% смертность в BALB / с мышей в соответствии с предыдущими исследованиями 15.
    Примечание: При создании модели пневмококковой пневмонии у мышей, минимальная доза, вызывающая бактериальный 100% смертности должен быть определен для каждого конкретного сочетания бактериального штамма серотипа, и штамм мыши.
  6. Гомогенизируют бактериальной суспензии путем встряхивания или пипетки вверх и вниз 5 раз.
  7. Нагрузка 50 мкл бактериальной суспензии, используя стерильный наконечник фильтра и привить общий объем в ноздри с наркозом мыши. Держите UPRI мышиGHT в течение 2 мин и дайте ему отдохнуть в положении лежа на спине в течение еще 2 мин. Применить ветеринар мазь на глазах и вернуть животных в клетку; убедитесь, чтобы сохранить нормотермию под наркозом.
    Примечание: В этом исследовании бактериальной задача была выполнена в объеме 50 мкл, чтобы гарантировать доставку по крайней мере, 90% от общего КОЕ в легкие, как определено выше в 15,28. Чтобы свести к минимуму стресс небольших объемов животного (например, 20 мкл) могут быть использованы. Тем не менее, эффективная доставка бактерий в легкие должны быть проверены; это может быть сделано путем сбора легких 5 мин после того, как вызов и подсчета КОЕ в гомогенатах легких "путем посева разведений на кровеносных-агаром.
  8. Подтверждение числа КОЕ в бактериальной суспензии, используемой для инфекции путем посева последовательных 10-кратных разведений на чашки с кровяным агаром. Выдержите O / N при 37 ° С с 5% CO 2 и подсчитать количество мукоидного колоний представляя зеленым ореолом характеристику альPHA гемолитические бактерии.

3 Tissue Сбор и подготовки образцов для проточной цитометрии (FACS) Анализ

3.1) коллекция тканей

  1. Усыпить животное смещением шейных позвонков или с помощью СО 2 камеры; открыть грудной полости весь путь до шеи и сделать надрез вдоль передних ног, чтобы разоблачить брюшной стороне шеи и подчелюстной области.
  2. С тонким наконечником пинцетов осторожно потяните ее слюнных желез и прилегающей мягкой ткани, чтобы разоблачить спинной стороне дна полости рта. Использование изогнутых тонким кончиком пинцета, принять нижнечелюстного и аксессуаров нижней челюсти лимфатические узлы, потянув аккуратно и поместите их в пробирку, содержащую полную RPMI (cRPMI, для 500 ML-10% фетальной бычьей сывороткой, 5 мл раствора, содержащего 10 000 ЕД / мл пенициллина и 10 мкг / мл стрептомицина раствора и 5 мл L-глютамина 200 мм) или раствор нуклеиновой кислоты консервант в соответствии с процедурой, ниже по течению, которые будутосуществляться позже.
  3. Чтобы открыть грудной полости сделать надрез в диафрагме; Используя пару крыс-зубчатые щипцы зажать xyphoid хряща грудины и аккуратно вырезать ребра на обоих спинных сторон не начиная от ложных ребер вплоть до достижения точки, где истинные ребра встретиться рукояткой грудины.
  4. Удерживая xyphoid хряща грудины с пинцетом, подтянуть аккуратно выставлять органы грудной полости.
  5. Удалить ребра полностью за счет сокращения первые ребра и ключицу. Тимус появится в виде белого структуры двух лопастей, расположенных в антеровентральном части грудной клетки близко к основанию сердца.
  6. Возьмите одну из долей, зажимая его с парой щипцов и использовать ножницы, чтобы удалить связок между его нижней поверхности и перикарда. Продолжать для удаления второго лепесток.
  7. Определить в брюшную полость и открыть его разрезанием вдоль срединной оси мuscular стены, чтобы разоблачить органы. С парой щипцов сократить задней полой вены и грудной аорты; удаления избытка крови с абсорбирующей тканью.
  8. Для анализа резиденты и проникают клеточные популяции из альвеол выполнения бронхоальвеолярной (БАЖ). Вырезать мышцы в вентральной части шеи, чтобы разоблачить трахею и пищевод; , чтобы отделить их делать надрезы в боковых и спинной сторон структур.
  9. Поднимите трахею с пинцетом и сделать небольшой надрез скальпелем ввести пипетки передачи тонких наконечник, наполненный 1 мл PBS без Ca 2 + / Mg 2 + плюс 1 мМ ЭДТА. Привить и аспирации с получением общего объема, по крайней мере три раза; аспирата и передачи клеточной суспензии в стерильную пробирку 1,5 мл и поместить его на льду.
  10. Для анализа клеточных популяций, присутствующих в легочной паренхимы, сначала заливать в легкие путем инъекции 5 мл PBS без Са2 + / Mg 2 + плюс 1 мМ ЭДТА в правый желудочексердца.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Это устранит большинство эритроцитов и иммунных клеток, присутствующих в кровеносные сосуды легких. Если перфузия осуществлялась правильно, легкие цвета сместится от розового до белого.
  11. Изолировать сердце от легких путем зажима его от основания левого желудочка и деликатно сократить кровеносные сосуды с ножницами, чтобы удалить его полностью. Принять перфузией легких и поместить их в cRPMI или нуклеиновой кислоты раствор консерванта в зависимости от нисходящего анализа должны быть выполнены.
  12. Для анализа клеточных популяций в подъязычной слизистой, изолировать голову животного и удаления слюнных желез и прилегающей мягкой ткани, если это не было сделано на шаге 3.2.1.
  13. Сделайте надрез на каждой стороне рта до достижения нижней челюсти совместные и самостоятельные нижнюю челюсть вместе с языком и дна полости рта, используя булавки закрепить ее на рассечение борту. Поднимите язык; с помощью скальпеля сделать надрез, где баSE языка не отвечает дна полости рта до достижения третьи моляры, чтобы разоблачить сублингвально слизистую оболочку.
  14. Снимите язык полностью; взять 0,5 мм биопсии удар и поместить его рядом с нижних резцов. Порезать от десневого вставки подъязычной ткани и аккуратно нажмите до дна полости рта, была вырезана полностью.
  15. Повторите еще раз в настоящее время размещение биопсии удар рядом с третьих моляров до полного удаления подъязычной ткани. Поместите на чистую пробирку, содержащую cRPMI или консервант нуклеиновой кислоты.

3.2) Подготовка проб для анализа FACS.

  1. Передача ткани легких ", выделенный из каждой мыши в 24-луночный планшет и фарш их чистой ножницами до получения мелких кусочков ткани примерно 2 мм. Добавить 1 мл на лунку пищеварения среде, содержащей 30 мг коллагеназы типа II, 50 мкг ДНКазы I в 1 мл RPMI без FBS. Внесите вверх и вниз в пять раз и инкубировать при37 ° С и 5% СО 2 в течение 40 мин.
    1. Для анализа клеточных популяций в подъязычной ткани, заменить пищеварение среду в 3.2.1 с одним, содержащей 2 ед диспаза, 30 Тип мг II коллагеназы, 50 мкг ДНКазы-I в 1 мл RPMI. Инкубируйте ткани, собранные от одной мыши в 500 мкл среды пищеварения течение 20 мин при 37 ° С в орбитальном шейкере при 50 оборотах в минуту.
  2. После инкубации пипетки вверх и вниз в 10 раз или 30 сек, пока большая часть ткани не была нарушена. Фильтр клеточной суспензии при том, что сетчатый фильтр стерильные клетки 40 мкм и промывали 5 мл PBS с добавлением 5 мМ ЭДТА.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Полное переваривание внеклеточного матрикса и фиброзной ткани не будут достигнуты. Тем не менее, более длительные времена инкубации в присутствии коллагеназы и / или диспазы или агрессивного растиранием не рекомендуется, так как это приведет к увеличению гибели клеток и разрушение внеклеточных белков, влияющих на общий результат FACS анализ.
  3. Центрифуга при 400 х г, 5 мин, 4 ° C.
    1. Для анализа клеточных популяций в БАЛ, центрифуги клетки при 400 мкг, 5 мин, при 4 ° С и перейдите к шагу 3.2.4.
    2. Для анализа клеточных популяций в лимфатических узлах, разместить 70 мкм ячейки фильтра на стерильную чашку Петри и поставить лимфатических узлов вместе с 1 мл cRPMI в сито. Выньте шаг из 2 мл стерильный шприц и использовать его в качестве пестиком, чтобы сокрушить лимфатические узлы против сетки сетчатый фильтр в. Промыть фильтр клеток с 1 мл свежей cRPMI и передавать клетки из чашек Петри в стерильную пробирку.
  4. Принять репрезентативной аликвоту каждой пробы и окрашивают его с трипановым синим, чтобы определить количество жизнеспособных клеток.
  5. Ресуспендируют клеток в FACS-EDTA: PBS-5 мМ ЭДТА-1% бычьего сывороточного Albumin-, чтобы компенсировать суспензии 2х10 7 клеток / мл и добавляют 50 мкл в цитометре трубки.
  6. Приготовьте смесь 2X антитела, содержащий проверopriate комбинации антител против поверхностных маркеров и флуорохромами По имеющейся FACS инструмента. Добавить 50 мкл 2X смеси антител в каждую пробирку, содержащую суспензию клеток.
    Примечание: титрование каждый Флуорохром-меченого антитела для определения оптимального количества, которые будут использоваться, для детального протокола смотри ссылку 29.
  7. Выдержите 30 минут на льду в темноте.
  8. Промыть один раз с 3 мл FACS-EDTA и спин вниз клетки центрифугированием при 400 х г в течение 5 мин при 4 ° С, ресуспендирования клеток в 200 мкл того же самого буфера и анализа в цитометр потока.
    Примечание: Если обработка большое количество образцов, протокол для окрашивания FACS анализа, описанного выше, могут быть выполнены в U-донными 96-луночных планшетах, а не цитометра труб. Тем не менее, при использовании 96-а шаги пластины стиральные должны выполняться путем добавления до 200 мкл FACS-EDTA и повторяя его 4 раза летел вниз клетки на 400 мкг в течение 5 мин при 4 ° С между каждой васинг шаг.
  9. В этот момент фиксации образцов для анализа в проточном цитометре позже (до 72 ч после фиксации).
    1. Чтобы зафиксировать клетки, после маркировки с FACS-антител промыть клетки в PBS нет Ca 2 + / Mg 2 +, 1 мМ ЭДТА без FBS. не суспендирования клеток в 50 мкл того же самого буфера и добавить 50 мкл свежеприготовленного 4% раствором параформальдегида в гипертонической (2x) PBS не Ca 2 + / Mg 2 +.
    2. Инкубировать в течение 20 мин при комнатной температуре и промыть 3 раза в FACS-EDTA.
    3. Ресуспендируют клеток в 200 мкл FACS-EDTA и хранить при температуре 4 ° С и защищенном от света до 72 часов.
      ПРИМЕЧАНИЕ: FSC-SSC могут быть затронуты фиксации. Если фиксации образцы проверить совместимость флуоресцентно меченых антител с производителем, так как тандемные красители могут ухудшиться в присутствии фиксирующие агентов. Если образцы возник из зараженных животных фиксация настоятельно рекомендуется убедиться, что никаких жизнеспособных патогенов не будет присутствовать при Analyпеть образцы в машине FACS с microaerosols можно сформировать в процессе приобретения образца.

4 Всего Экстракция РНК, кДНК Синтез и ПЦР в реальном времени.

4.1) Выделение РНК и синтез кДНК.

  1. Гомогенизируют ткани в нуклеиновой консервант кислота решения выбора механическим разрушением (например, с помощью роторно-статорной гомогенизатора, высокая скорость встряхивания тканевой ruptor и бусы, и т.д.). Центрифуга при 12600 х г в течение 15 мин и 4 ° С, чтобы удалить твердые частицы ткани. Передача супернатант в чистую пробирку.
  2. Извлечение РНК с методом выбора следующей инструкции производителя.
    ПРИМЕЧАНИЕ: РНК степени подвержены деградации, если она не будет использоваться сразу после выделения, сделать аликвоты и хранить их в РНКазы труб при -80 ° С. Повторное замораживание и оттаивание. Трубы должны быть в перчатках во все времена. После оттаивания образцовсегда держите их на льду.
  3. Измеряют поглощение нуклеиновых кислот при 260 нм и расчета концентрации в мкг / мкл.
  4. Подготовка ДНКазы-я смешать с добавлением (для образца 1): 7,6 мкл ультрачистой воды, 1 мкл 10Х ДНКазы I-буфера, 0,4 мкл ДНКазы I-амплификации (класс) складе 1 ед / мкл, а также добавить 8,4 мкл ДНКазы-я смешать с каждым образцом, содержащим 1 мкг общей РНК.
    1. С помощью РНК при концентрации 1 мкг / мкл, и выполнить retrotranscription реакции (RT-PCR) с добавлением 1 мкл общей РНК в качестве матрицы. Если образцы слишком разбавленный и концентрация ниже, чем ожидалось, добавить большие объемы тотальной РНК вместо воды. Не более 20% от конечного объема реакции при добавлении РНК особенно, если протокол экстракции РНК выбора участвовать фенол-хлороформ, так как фенольные следов может повлиять на выход RT-PCR.
  5. Инкубировать 15 мин при комнатной температуре с последующим 10 мин при 4 ° С или ясе. (Не превышайте время инкубации !!)
  6. Добавить 1 мкл 25 мМ EDTA (молекулярная биология класса) в каждую пробирку и инкубируют при 65 ° С в течение 10 мин для инактивации ДНКазы I.
  7. Подготовка retrotranscription (RT) смесь следующим образом (в течение 1 реакции): 1 мкл случайных праймеров гексамера фондовых 0,2 мг / мл, 1 мкл дНТФ складе 10 мм, 4 мкл 5Х М-MLV-RT буфера, 2 мкл 0,1 М ДТТ, 1 мкл РНКазы OUT складе 40 ед / мкл, и 1 мкл M-MLV retrotranscriptase складе 200 ед / мкл.
  8. Добавить 10 мкл ОТ-ПЦР смешать с 10 мкл ДНКазы-I реакционную трубку.
  9. Проведение ПЦР-реакции в амплификатор в соответствии со следующей программой:
    1X цикл: 10 мин, 25 ° C; 50 мин, 37 ° С; 15 мин, 70 ° С
  10. Развести кДНК 1: 5 добавлением 80 мкл ультрачистой воды. Хранить при -20 ° C.

4.2) ПЦР в реальном времени (КПЦР).

  1. Подготовьте КПЦР реакционной смеси следующим образом (за 1 реакции): 5 мкл основной смеси, содержащей Taq ДНК Polymerase, SYBR Green краситель, буфер для ПЦР, дНТФ смесь и MgCl 2 (4.2.2 ниже); 0,9 мкл 10 мкМ исходного раствора прямого праймера, 0,9 мкл 10 мкМ исходного раствора обратного праймера, 1,2 мкл ультрачистой воды, и 2 мкл матрицы кДНК, предварительно разбавленной как показано на этапе 4.1.10.
    Примечание: Реагент концентрации и велосипедных протоколы, используемые в этом разделе, были оптимизированы, чтобы быть осуществлена ​​в частности, с реагентами и инструментов, описанных в "Таблице материалы и реагенты", других марок могут быть использованы, но реакционные объемы, концентрации реагентов и протоколов на велосипеде может изменяться. Проверьте свои инструкции производителя перед выполнением RT-КПЦР.
  2. Установите инструмент КПЦР следующим образом:
    1X цикл: 15 мин, 95 ° C
    40X циклов: 15 сек, 95 ° C, затем 1 мин, 60 ° C (в этой точке флуоресценции приобретают).
    Примечание: Для относительного количественного определения мРНК в соответствии с методом CT 30 Ссылки на сайтыэ ген должен быть выбран для нормализации значений Ct. Ссылка ген выбора должны быть проверены при определенных условиях анализа, как его экспрессия может изменяться; ACTB, GAPDH или 18S некоторые из генов, как правило, выбирается в качестве ссылок.
  3. Настройка порогового значения и анализировать данные.

Результаты

Сублингвальная иммунотерапия может быть успешно использован для модуляции иммунного ответа легких. Мы показали, что одна доза флагеллина, агониста TLR5 и NLRC4, может вызвать значительное повышение экспрессии мРНК, кодирующей CXCL1 хемокинов, CCL20 и цитокин IL-6 по сравнению с получавшими физиологический раствор управления. Сложите индукция уровней мРНК достиг 8 ч после SLIT и вернуться в базальных уровней после 20 часов (Рисунок 1). Однако, когда SLIT проводили 2 ч до инфицирования интраназально с S. Пневмонии, уровни CXCL1 и IL6 мРНК оставались значительно усиливает свою активность даже через 24 часа после SLIT сравнению с необработанными животными (рисунок 2).

Анализ клеточных популяций в БАЛ и легочной ткани по FACS показали, что у животных, обработанных Флик по Сублингвальный увеличилось количество нейтрофилов в дыхательных путях, но не в ткани легких »(рисунок 3).

рисунке 4, SLIT с флагеллина способствует защите и увеличению выживаемости против острого пневмококковой пневмонии.

figure-results-1
Рис.1 Кинетика транскрипции профиль легких "после сублингвального иммунотерапии с флагеллина. Восьми до 10 недель BALB / с мышей (п = 4) обрабатывали 10 мкг флагеллина или физиологического раствора по Сублингвальный под наркозом. Легкие собирали в различные моменты времени и помещают в консерванта нуклеиновой кислоты. Всего Выделение РНК проводили и кДНК синтезировали. Уровни мРНК оценивали путем ПЦР в реальном времени с использованием специфических праймеров, перечисленных в табле 1 Относительная количественная была выполнена в соответствии метод & Delta; CТ используя уровни ACTB мРНК для нормализации. Результаты представлены в виде кратное увеличение по сравнению с группой, обработанной физиологическим раствором в качестве медианы ± SEM. Звездочки указывают статистически значимые различия (р <0,05), рассчитанные в соответствии с критерия Манна-Уитни. Результаты представляют из 2 независимых экспериментах.

figure-results-2
Транскрипции профиль Рисунок 2 легких "во пневмококковой пневмонии после сублингвального иммунотерапии с флагеллином восьми до 10 недель линии BALB / C мышей (п = 4 7 для контрольной группы и п = для обработанной группы). Обрабатывали 10 мкг флагеллином или физиологического раствора с помощью Сублингвальный под наркозом. 2 часа спустя мышей заражали интраназально маршрута с минимальным летальной дозой (MLD), вызывающим 100% смертность клинического изолята S. пневмонии серотип 1 E1585, соответствующий 4х10 5 КОЕ / 50 мкл. Легкие собирали через 24 часа после заражения и сохраняются в консерванта нуклеиновой кислоты до тех пор, экстракции РНК и синтез кДНК не проводились. ПЦР в реальном времени проводили (См праймера список в таблице 1) и относительной количественное была выполнена в соответствии метод & Delta; CТ используя уровни ACTB мРНК для нормализации. Результаты представлены в виде кратное увеличение по сравнению с группой, обработанной физиологическим раствором в качестве медианы ± SEM. Звездочки указывают статистически значимые различия (р <0,05), рассчитанные в соответствии с критерия Манна-Уитни.

figure-results-3
Рисунок 3 Анализ полиморфноядерных нейтрофилов (ПМН) вербовка в ткани и дыхательных путей легких "после SLIT. Восемь с10 недель линии BALB / C мышей (п = 4) обрабатывали 10 мкг флагеллином или физиологического раствора с помощью Сублингвальный под анестезией. 2 часа спустя мышей заражали по интраназально с MLD из S. пневмонии серотип 1 E1585. 24 ч после контрольного заражения, БАЛ была выполнена и легкие были обработаны для анализа FACS. ПМН были определены как Ly6G высоких / CD11b высокого / CD11c негативных клеток и на основе профиля FCS-SSC. Результаты выражены в процентах от PMN в отношении от общего количества клеток в BAL или легких. Полосы представляют медианы ± SEM. Звездочки указывают статистически значимые различия (р <0,05), рассчитанные в соответствии с односторонним Манна-Уитни.

figure-results-4
Рисунок 4 SLIT с флагеллина защищает мышей от острой пневмококковой пневмонии. S. пневмонии серотип 1 E1585. Выживание оценивали на ежедневной основе. Кривые Каплана-Мейера по сравнению соответствии лог-рангового (каминные-Cox). Звездочки указывают статистически значимых различий (р <0,05) .Results представляют из 2 независимых экспериментов.

Имя Последовательность 5'-3 ' ПЦР длина изделия (б.п.)
MB-actin_F GCTTCTTTGCAGCTCCTTCGT 68
MB-actin_R CGTCATCCATGGCGAACTG
mCCL20_F TTTTGGGATGGAATTGGACAC 69
mCCL20_R TGCAGGTGAAGCCTTCAACC
mCXCL1_F CTTGGTTCAGAAAATTGTCCAAAA 84
mCXCL1_R ACGGTGCCATCAGAGCAGTCT
MIL-6_F GTTCTCTGGGAAATCGTGGAAA 78
MIL-6_R AAGTGCATCATCGTTGTTCATACA
mTNFalpha_F CATCTTCTCAAAATTCGAGTGACAA 63
mTNFalpha_R CCTCCACTTGGTGGTTTGCT
mCxcl2_F CCCTCAACGGAAGAACCAAA 72
mCxcl2_R CACATCAGGTACGATCCAGGC

Таблица Список 1 Праймер используется для ПЦР в реальном времени анализа. Специфические последовательности праймеров, используемых для анализа КПЦР. Прямого и обратного праймеров для мыши ACTB, Cccl20, CXCL1, IL6, TNFA и CXCL1 представлены в виде последовательностей 5'-3 'и ожидать длина кабеля указывается в пар оснований (АД).

Обсуждение

Сублингвального введения терапевтических агентов было доказано в качестве полезного средства, чтобы модулировать иммунный ответ в дыхательных путях. Основным преимуществом прорезь для лечения респираторных заболеваний является то, что оно не связано с прямой доставки соединений в легкие или нос, чтобы быть более безопасными, чем процедуры, основанные на интраназального введения 31.

Сублингвальная иммунотерапия может быть использован для модуляции иммунного ответа по-разному, либо для индукции регуляторных реакций, которые могут смягчить симптомы аллергического воспаления и астмы 32 или вызвать временный активацию врожденного иммунитета механизмов для лечения острых легочных инфекций, как показано здесь.

Модель мыши представлены в этом видео является удобным методом для скрининга различных соединений в качестве терапевтических агентов для щели.

Эта модель животных предлагает полезные средства для определения влияниящелевой в иммунном ответе легких ", а также в других органах (например,., сливного лимфатических узлов или сайтов дистальных слизистых), которые не могут быть имитировали с помощью моделей в пробирке. Хотя есть несколько работ, которые описывают результаты, полученные с помощью сублингвального иммунотерапии, подробные методы для процедур сублингвального введения еще не были доступны. Кроме того, модель может быть использована для оценки подъязычной вакцин, направленных для придания системного, а также локальной защиты в дыхательных путях.

Как показано на прилагаемом видео, сублингвального введения соединений является простой процедурой, которая может быть легко выполнена без необходимости длительной подготовки. Как правило, человек специалистами в обработке животного потребует 1 час, чтобы выполнить щель в группе из 10 мышей с использованием инъекционных анестетиков, как описано в данном протоколе. Если пневмококковой задача выполняется, а, 90 дополнительный мин потребуется подготовитьбактериальную суспензию и выполнять интраназального заражения животных.

Протоколы FACS, представленные здесь позволяют удобное характеристику влияния щели на местном сайте администрации, осушение лимфатические узлы, а также их воздействия на динамику клеточных легких.

Отдельный анализ бронхоальвеолярного содержимого и легких паренхимы важно различать иммунную жителя и проникновения типы клеток из тех, которые остаются в тканях дыхательных путей. Анализ содержания БАЛ позволяет изучение альвеолярного оборота макрофагов, а также динамику клеток призыва в альвеолярных пространств, на различных методов лечения, например., PMNs, эозинофилов, моноцитов. БАЛ также может быть использован для оценки присутствия секретируемых цитокинов и хемокинов иммуноферментного анализа (ELISA) или обнаружения секретируемых IgA антител, вызываемых после сублингвального вакцинации. Исследование ткани легких "позволит характеристику других типов клеток, классически дендритных клеток, Т-клеток и В-клеток.

Подготовка образцов BAL и лимфатических узлов для анализа FACS проста. После отбора проб, обычно 60 мин необходимы для завершения протокол окрашивания в течение 10-20 образцов. В отличие от этого, выделение клеток из легких или сублингвального ткани требует больше времени, так как переваривание внеклеточного матрикса не требуется. Поглощение терапевтического агента поставляемого Сублингвальный может быть решена путем отслеживания флуоресцентно или радиоактивно меченых молекул с использованием в системах визуализации естественных.

Сублингвально иммунотерапия является привлекательным способом, чтобы эффективно индуцировать иммунный ответ в дыхательных путях, а также системно, которые могут быть использованы для лечения или предупреждения респираторных заболеваний. Выяснения механизмов, определяющих активацию против толерантности иммунной реакции в дыхательных путях после РАЗРЕЗА IS важно, чтобы рациональной разработки новых терапевтических стратегий, которые могут быть использованы отдельно или в сочетании с известными процедурами в отношении различных респираторных заболеваний.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Выражаем благодарность доктору Жан-Клоду Сирару из Центра инфекций и иммунитета Лилля, Институт Пастера де Лилль-Франция, за любезное предоставление очищенного флагеллина, а также доктору Терезе Каму, директору Национальной референс-лаборатории, Министерство здравоохранения Уругвая, за любезное предоставление пневмококкового штамма.

Авторы хотели бы выразить свою признательность г-ну Диего Акоста и г-ну Игнасио Турелу из BichoFeo Producciones-Uruguay за их преданность и тяжелую работу на протяжении всего производства и издания видео.

Эта работа была поддержана грантами PR_FCE_2009_1_2783 и BE_POS_2010_1_2544 от Национального агентства исследований и инноваций, ANII из Уругвая, Программы развития фундаментальных наук, PEDECIBA из Уругвая и Отраслевой комиссии по научным исследованиям, CSIC-Universidad de la República, Уругвай.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Раствор кетамина (50 мг/мл)Pharma Service, Уругвай
Раствор Силацина (2 %)Portinco S.A., Уругвай
Стерильный шприц 1 млModern, Уругвай
Стерильный игла 27 г Modern, Уругвай
RPMI 1640General Electric Health CareE15885
Фетальная бычья сывороткаATCC302020
Раствор пенициллина/стрептомицинаSIGMAP4333
Стерильный PBS без Ca2+/mg2+PAAH21002
Type-I CollagenaseLife Technologies/Gibco17100017
дезоксирибонуклеаза I (ДНК-I)SIGMAD4513
диспазаLife Technologies/Gibco17105041
PerCP-Cy5.5 конъюгированный крысиный против мыши IgG2b против CD11bBD550993клон M1/70
APC конъюгированный хомяк против мыши IgG1 против CD11cBD550261клон HL3 
APC-Cy7 конъюгированная крыса против мыши IgG2a anti Ly6GBD560600Клон 1A8
Стерильный физиологический растворLaboratorio Farmaco Uruguayo, Уругвай
Tryptic Soy AgarBD Difco, Франция236950
Дефибринированная овечья кровьBiokey, Уругвай
Стерильные чашки ПетриGreiner633180
p10 ПипеткаGilsonF144802
p20 ПипеткаEppendorf3120000097
p200 ПипеткаGilsonF123601
p200 ПипеткаCapp CappC200
ПипеткаEppendorf3120000054
p1000 ПипеткаEppendorf3120000062
Стерильные фильтрующие наконечники p10Greiner
p200Greiner739288
Стерильные фильтрующие наконечники p1000Greiner750288
VortexBIOSANV1-plus
Щипцы с тонким наконечником из нержавеющей стали SIGMAZ168785/Z168777Изогнутые и прямые
Щипцы для перевязочной тканиSIGMAF4392Длина 8 дюймов
Микрорассекающие щипцыSIGMAF4017Прямые 
Микрорассекающие щипцыSIGMAF4142 изогнутый
Ножницы МайонезSIGMAZ265993 
СкальпельSAKIRA MEDICAL
Стерильная биопсия Punch & Oslash; 3mmStiefel Laboratories Ltd.2079Dдиаметром 5 мм также можно использовать
Стерильные 1,5 мл ПробиркиDeltalab200400P
Стерильные 15 мл ПробиркиGreiner188271
Стерильные 50 мл ПробиркиGreiner227261
Стерильные серологические пипетки 5 млGreiner606160
Стерильные серологические пипетки 10 млGreiner607160
Стерильные серологические пипетки 25 млGreiner760180
Шкаф биологической безопасности, класс IIThermo Scientificсерии 1300, тип A2
Micro-Isolator  СтойкаRAIR  IsoSystem 76144WСупер  Мышь  1800 AllerZone 
Охлаждаемая микроцентрифугаEppendorfLegend Micro 21R
МикроцентрифугаHeraeusBiofuge-pico
ЦентрифугаThermo ScientificSorval ST40R
CO2 Инкубатор Thermo ScientificModel  3111
Стерильные пастерные пипетки с тонким наконечникомDeltalabD210022
Стерильные пастеровские пипеткиDeltalab200007
Стерильные 24-луночные планшетыGreiner662160
Trypan Blue Solution АвтоматическийTechnologies T10282
- ГрафиняЛайф ТехнолоджисC10227 
Камера подсчета клеток Countess СлайдыLife TechnologiesC10312
Проточные цитометрические пробиркиBD343675
Проточный цитометр - FACS Canto-IIBD
Инструмент для ПЦР в реальном времени - ротор Ген Q или ABI 7900Qiagen / Прикладные биосистемы
Тризол РеагентLife Technologies15596-026Молекулярный Биология Класс
DNAse-ILife Technologies18068-015Молекулярная биология Класс
DNAse-I Буфер 10XLife Technologies18068015Молекулярная биология Класс
ЭДТА 25 мМLife Technologies18068015Молекулярная биология
Класс Ультрачистая водаLife Technologies10977Молекулярная биология Класс
РНКаза внеLife Technologies100000840Молекулярная биология
Класс Случайный гексамер ПраймерыLife TechnologiesN8080127Молекулярная биология Класс
M-MLV-RT БуферLife Technologies18057-018Молекулярная биология
Класс M-MLV-RT enzimeLife Technologies28025-021Молекулярная биология Класс
QuantiTect Syber Green PCR KitQiagen204143Молекулярная биология Специфичные
для класса учебники Life TechnologiesМолекулярная биология Класс
Стерильные фильтрующие наконечники 771288 счетчик ячеек Life

Ссылки

  1. Pneumococcal vaccines WHO position paper--2012. Weekly Epidemiological Record. 14, 129-144 (2012).
  2. Pneumonia - Facts Sheet N°331. , WHO. Available from: http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs331/en (2013).
  3. Appelbaum, P. C., et al. Carriage of antibiotic-resistant Streptococcus pneumoniae by children in eastern and central Europe-a multicenter study with use of standardized methods. Clin Infect Dis. 23, 712-717 (1996).
  4. Ramirez, J. A., Anzueto, A. R. Changing needs of community-acquired pneumonia. J Antimicrob Chemother. 66, 3-9 (2011).
  5. Cuburu, N., et al. Sublingual immunization induces broad-based systemic and mucosal immune responses in mice. Vaccine. 25, 8598-8610 (2007).
  6. Pedersen, G. K., et al. Evaluation of the sublingual route for administration of influenza H5N1 virosomes in combination with the bacterial second messenger c-di-GMP. PLoS One. 25, 1-12 (2011).
  7. Song, J. H., et al. Sublingual vaccination with influenza virus protects mice against lethal viral infection. Proc Natl Acad Sci USA. 105, 1644-1649 (2008).
  8. Cogo, R., Ramponi, A., Scivoletto, G., Rippoli, R. Prophylaxis for acute exacerbations of chronic bronchitis using an antibacterial sublingual vaccine obtained through mechanical lysis: a clinical and pharmacoeconomic study. Acta Biomed. 74, 76-87 (2003).
  9. Rosaschino, F., Cattaneo, L. Strategies for optimizing compliance of paediatric patients for seasonal antibacterial vaccination with sublingually administered Polyvalent Mechanical Bacterial Lysates (PMBL). Acta Biomed. 75, 171-178 (2004).
  10. Senna, G., Caminati, M., Canonica, G. W. Safety and tolerability of sublingual immunotherapy in clinical trials and real life. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 13, 656-662 (2013).
  11. Mascarell, L., et al. Oral dendritic cells mediate antigen-specific tolerance by stimulating TH1 and regulatory CD4+ T cells. J Allergy Clin Immunol. 122, 603-609 (2008).
  12. Mascarell, L., et al. Mapping of the lingual immune system reveals the presence of both regulatory and effector CD4+ T cells. Clin Exp Allergy. 39, 1910-1919 (2009).
  13. Mascarell, L., et al. Oral macrophage-like cells play a key role in tolerance induction following sublingual immunotherapy of asthmatic mice. Mucosal Immunology. 4, 638-647 (2011).
  14. Hervouet, C., et al. Antigen-bearing dendritic cells from the sublingual mucosa recirculate to distant systemic lymphoid organs to prime mucosal CD8 T cells. Mucosal Immunology. 7, 280-291 (2014).
  15. Munoz, N., et al. Mucosal administration of flagellin protects mice from Streptococcus pneumoniae lung infection. Infect Immun. 78, 4226-4233 (2010).
  16. Hayashi, F., et al. The innate immune response to bacterial flagellin is mediated by Toll-like receptor 5. Nature. 410, 1099-1103 (2001).
  17. Lightfield, K. L., et al. Critical function for Naip5 in inflammasome activation by a conserved carboxy-terminal domain of flagellin. Nature Immunology. 9, 1171-1178 (2008).
  18. Lightfield, K. L., et al. Differential requirements for NAIP5 in activation of the NLRC4 inflammasome. Infect Immun. 79, 1606-1614 (2011).
  19. Honko, A. N., Mizel, S. B. Mucosal administration of flagellin induces innate immunity in the mouse lung. Infect Immun. 72, 6676-6679 (2004).
  20. Janot, L., et al. Radioresistant cells expressing TLR5 control the respiratory epithelium's innate immune responses to flagellin. Eur J Immunol. 39 (6), 1587-1596 (2009).
  21. Van Maele, L., et al. TLR5 signaling stimulates the innate production of IL-17 and IL-22 by CD3(neg)CD127+ immune cells in spleen and mucosa. J Immunol. 185, 1177-1185 (2010).
  22. Lee, S. J., et al. Neurologic adverse events following influenza A (H1N1) vaccinations in children. Pediatrics international: official journal of the Japan Pediatric Society. 54, 325-330 (2012).
  23. Lewis, D. J., et al. Transient facial nerve paralysis (Bell's palsy) following intranasal delivery of a genetically detoxified mutant of Escherichia coli heat labile toxin. PLoS One. 4, e6999(2009).
  24. Mutsch, M., et al. Use of the inactivated intranasal influenza vaccine and the risk of Bell's palsy in Switzerland. N Engl J Med. 350, 896-903 (2004).
  25. Kuo, C. H., Wang, W. L., Chu, Y. T., Lee, M. S., Hung, C. H. Sublingual immunotherapy in children: an updated review. Pediatr Neonatol. 50, 44-49 (2009).
  26. Nempont, C., Cavet, D., Rumbo, M., Bompard, C., Villeret, V., Sirard, J. C. Deletion of flagellin's hypervariable region abrogates antibody-mediated neutralization and systemic activation of TLR5-dependent immunity. J. Immunol. 181, 2036-2043 (2008).
  27. Pathogen Regulation Directorate, Public Health Agency of Canada . Streptococcus pneumoniae: Pathogen Safety Data Sheet - Infectious Substances. , Available from: http://www.phac-aspc.gc.ca/lab-bio/res/psds-ftss/streptococcus-pneumoniae-eng.php (2011).
  28. Marques, J. M., et al. Protection against Streptococcus pneumoniae serotype 1 acute infection shows a signature of Th17- and IFN-gamma-mediated immunity. Immunobiology. 217, 420-429 (2012).
  29. Stewart, C. C., Stewart, S. J., et al. Titering antibodies. Current Protocols in Cytometry. 4, Unit 4.1(2001).
  30. Kubista, M., et al. The real-time polymerase chain reaction. Molecular Aspects of Medicine. 27, 95-125 (2006).
  31. Pedersen, G., Cox, R. The mucosal vaccine quandary: intranasal vs. sublingual immunization against influenza. Human Vaccines & Immunotherapeutics. 8, 689-693 (2012).
  32. Vitaliti, G., et al. Mucosal immunity and sublingual immunotherapy in respiratory disorders. Journal of Biological Regulators and Homeostatic Agents. 26, S85-S93 (2012).

Перепечатки и разрешения

Теги

Streptococcus pneumoniaeTLR
Сублингвальной иммунотерапии как альтернатива Вызвать защиты от острыми респираторными инфекциями
Связаться с нами
Порекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия использования

Политики

© 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.