Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Экспериментальные Стратегии перекрытия больших Tissue Пробелы в спинном мозге после поврежденном спинном острого и хронического поражения

8.4K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/53331

⸱

5 апреля 2016 г.

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

Тяжелые травмы спинного мозга часто приводят к дефектам тканей. Описаны две возможности успешного заполнения таких пробелов для содействия адаптации тканей, регенеративным реакциям и функциональному улучшению у крыс путем имплантации системы механических микроконнекторов после острой травмы и через пять недель после полной пересечения спинного мозга.

Аннотация

После травмы спинного мозга (SCI) шрамом форм в ядре поражения, которое препятствует регенерации аксонов. Преодолевая месте повреждения после инсульта спинного мозга, опухоли резекций или дефектов тканей в результате травматических несчастных случаев могут помочь в облегчении общего восстановления тканей, а также восстановительный рост нервных волокон в и за пределы пораженного участка. представлены две экспериментальные стратегии лечения: (1) имплантация романа microconnector устройства в остро и полностью перерезана спинного мозга грудного отдела крысы к реадаптироваться разорвала спинного пни шнур ткани, и (2) заполнение полиэтиленгликоль сайта SCI хронически повреждениями крыс после рубец резекция. Хроническое повреждение спинного мозга в этой модели является полная перерезка спинного мозга, который был нанесен за 5 недель до начала лечения. Оба метода в последнее время достигнуты весьма обнадеживающие результаты и способствовало аксонов отрастание, благоприятное клеточного вторжения и функциональные улучшенияв моделях грызунов травмы спинного мозга.

Механическая система microconnector (ММС) является система многоканальной состоит из полиметилметакрилата (ПММА) с системой труб на выходе применить отрицательное давление к Mms Просвет, таким образом, потянув спинного мозга пни в сотовый структурированное отверстия. После того, как его имплантации в зазор ткани 1 мм ткань всасывается в устройство. Кроме того, внутренние стенки ммс являются микроструктурированная для лучшей адгезии тканей.

В случае хронического травмы спинного мозга подход, травмы спинного мозга ткани - в том числе площадь поражения рубцовой заполненные - иссекают на площади 4 мм в длину. После микрохирургической резекции рубцовой полученную полость заполнена полиэтиленгликолем (ПЭГ 600) , который был найден , чтобы обеспечить отличный субстрат для клеточного вторжения, реваскуляризации, регенерации аксонов и даже компактный ремиелинизации в естественных условиях.

Введение

Травматический повреждение спинного мозга приводит не только к потере аксонов , но это приводит к дальнейшему тканевых дефектов , которые мешают любые регенеративные ответы (для обзора см 1,2). Ткани спинного мозга часто теряется через вторичный дегенерации, приводящей к образованию кист или отверстий внутри и вокруг области поражения. Большинство экспериментальных терапевтических вмешательств сосредоточиться на неполных спинальных повреждений спинного мозга, как частичные рассечение, раздавить или контузии травмы с оставшимся ободе здоровой ткани. Для получения полных травм как полных transections в результате травматических несчастных случаев или хирургических вмешательств, таких как опухоли резекций, только очень ограниченные варианты лечения доступны сегодня 3,4. После полного рассечения, механиком натяжение приводит ткани в спинном культи ретракции, оставляя небольшой зазор в спинном мозге. Большинство стратегий сосредоточены на восполнить этот пробел с ткани, клетки или матрицы 5,6.

Здесь другая стратегияпредставлен, а именно реадаптации отделенных пней с использованием нового microconnector устройства 7. Для того , чтобы реадаптироваться два пни, механическая сила должна быть применена в качестве небольшого отрицательного давления для выполнения этой (Рисунок 1). Механическая система microconnector (ММС) представляет собой систему многоканальной полиметилметакрилата (ПММА) с сотовыми-образные отверстия (рис 1А) и снабжен системой выпускной трубки. Оно имплантируется в зазор тканей в результате полного рассечения спинного мозга у крыс (рис 1C). Одна трубка может быть соединена с вакуумным насосом , чтобы применить отрицательное давление к Mms (рис 1D). Давление тянет отключенных спинного мозга пни в виде пчелиных сот расселинам ммс, которые имеют микроструктурированных стенки для удержания ткани на месте , когда давление сбрасывается (Фигура 1В). Трубка может быть оставлена ​​без изменений после операции и прикреплен к осмотическому минипомпы для того,вливать вещества в активную зону поражения (рис 1E-F).

Помимо острого рассечения спинного мозга и другой тип полных результатов поражения от хирургического удаления опухоли спинного или твердого хроническое поражение шрама, приводящей к большими промежутками ткани в несколько миллиметров, которые не могут быть преодолены с помощью Mms до сих пор. Большинство пациентов с травмой спинного мозга страдают от хронических ран. У этих больных, полностью развитый рубец занимает ядро ​​поражения. Хирургическое удаление поражения рубца является концепция лечения , которая в настоящее время исследуемого после экспериментального ТСМ 8,9. В то время как сама процедура резекция может быть выполнена, не вызывая значительного дополнительного урона, разрыв в результате чего ткань необходимо преодолеть с подходящей матрицей, которая позволяет и способствует регенерации тканей и, в конкретном случае, повреждений спинного мозга, регенерации нервных волокон для поддержания и развития функций опорно-двигательного аппарата. это былообнаружили, что низкомолекулярный полиэтиленовый гликоль (ПЭГ 600), является очень подходящим материалом для этой цели. Его отсутствие иммуногенности и очень низкой вязкости позволяют плавную интеграцию в окружающую ткань. Вставка биополимера в одиночку способствует нашествию полезных клеток, в том числе эндотелиальные клетки, клетки периферической шванновских и астроциты, и - что очень важно - регенерацию и удлинение аксонов нисходящих и восходящих трактов волокна, а также их ensheathment с помощью компактного миелина 8. Установлено, что эти регенеративные ответы должны сопровождаться долговечными функциональных усовершенствований. Сочетание резекции рубцовой ткани и последующей имплантации ПЭГ 600 представляет собой безопасный и простой, но очень эффективное средство преодоления существенных дефектов спинного мозга ткани.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Институциональные рекомендации по безопасности и комфорта животных соблюдались, и все хирургические вмешательства и до и после хирургического вмешательства по уходу за животными были предоставлены в соответствии с законом Германии о защите животных (Государственное ведомство, окружающей среды и защиты потребителей от Северный Рейн-Вестфалия, LANUV NRW ).

1. Полное Перерезка грудного отдела спинного мозга Женский крыс Wistar (220 - 250 г)

  1. Подготовка спинного мозга
    1. С помощью изофлуран ингаляционной анестезии (2 - 3% от изофлуран в O 2 / NO 2 в соотношении 1: 2) и болюсной инъекции Carprofen (подкожно [SC] 5 мг / кг). Сочетание карпрофена и опиоидной бупренорфин (0,02 мг / кг подкожно) рекомендуется. Начните операцию, когда веко рефлекс на легкое прикосновение с ватным тампоном и подушечки абстинентного рефлекса на ущемление стимул с щипцами больше не наблюдается.
    2. Место животное на нагревательном одеяле при 37 ° C для поддержания temperatu телаповторно во время операции и положить глазной мази на глаза, чтобы избежать сухости под наркозом.
    3. Бритье спине животного и подготовить кожу с дезинфицирующим кожи.
    4. Разрежьте кожу на средней линии вдоль грудных позвонков на 4 см с хирургическим скальпелем и открыть его. От этого шага дальше, использовать стерильный хирургические инструменты для всех процедур (автоклавируют или погружной стерилизованные).
    5. Втяните мышцы выше грудных позвонков с помощью небольшой мышцы зажим.
    6. Удалите остистые процессы на грудном уровне 8 (Th8) и Th9 с костным костными кусачками путем осторожно отсечение небольшие кусочки кости до позвоночной кости не являются плоскими.
    7. С помощью анатомических щипцов поднять позвоночный столб на остистых TH7 и использовать костными кусачками, чтобы обрезать небольшие кусочки позвоночной кости от хвостового до ростральной до тех пор, пока ламинэктомии выполняется на Th8 и Th9. Expose твердую мозговую оболочку, не повреждая его, осторожно удаляя лишь несколько и очень небольшие кусочки позвоночной кости в то время.
    8. Зажмите цепи за счет 2 стабилизационных зажимов на отростков TH7 и Th10, поднимите животное расцепить дыхательные движения из позвонков.
  2. Полное рассечение спинного мозга на грудном уровне 8/9
    1. Поднимите твердую мозговую оболочку с тонким пинцетом, вырезать твердую мозговую оболочку с тонкой глаз ножницами в поперечном направлении.
    2. Удерживайте боковую обрезанный конец твердой мозговой оболочки с тонким пинцетом и вставить спинной крючок в subarachnoidic пространство между твердой мозговой оболочкой и arachnoidea. Во избежание повреждения мозговых оболочек, не покалывания в мягкой или твердой мозговой оболочки либо с пинцетом или спинного мозга крючок.
    3. Медленно поверните крюк, чтобы поместить все это вдоль ткани спинного мозга, следя за тем, чтобы не колоть в ТМО (Pia по-прежнему нетронутыми).
    4. Поднимите спинной мозг в течение приблизительно 1 - 2 мм вверх, пока разрыв не виден на брюшной стороне между ткани спинного мозга и твердой мозговой оболочки.
    5. Вставьте мелкие глазные ножницы в пространство betweeп Dura и Пиа и перерезали спинной мозг, а спинной крючок остается на месте.
    6. Поднимите два пни спинного мозга с двумя щипцами и визуально обеспечить полное рассечение.
    7. Для контрольно-пораженном животных и животных с хронической травмы, закройте твердую мозговую оболочку по узловыми швами с мононити без адсорбирующихся 9.0 нитей.
    8. При хронических поражениях следуют часть 1.6.
  3. Mms Имплантация
    1. Поместите Mms выше места повреждения с обеих труб, лежащих на каждой боковой стороне позвонка и опустить его в полость поражения.
    2. Шовные трубы к мышцам на стороне позвонка с не рассасывающиеся нити 4-0, чтобы обеспечить стабилизацию Mms. Обеспечить фиксацию ммс с помощью щипцов во время этого шага.
    3. Снимите соединительный палец ммс путем разрезания с парой тонких ножниц.
    4. Закройте твердую мозговую оболочку над ммс и сшить его с 9,0 нитями.
    5. Приложить одну трубку к вакуумному насосу, и уплотнениедругой зажимая.
    6. Слегка отрицательное давление к Mms с помощью вакуумного насоса через открытую трубку, всасывая спинного мозга пни в просвет Mms. Применение отрицательного давления в течение нескольких минут (при максимуме в течение 10 мин) и контролировать с помощью датчиков (250 - 350 мбар).
    7. Обрежьте трубы, близкие к ммс и снимите трубки. Продолжить с шагом 1.6.
  4. Резекция спинного мозга ткани , включающий хроническое поражение шрамом на 5 неделе после первоначальной травмы
    1. Выполните шаги 1.1.1 - 1.1.5.
    2. Определение рубцовой ткани по коричнево-желтый внешний вид и жесткой ткани на верхней части спинного мозга. Аккуратно удалить поверхностные слои рубцовой ткани путем проведения с тонким пинцетом и резки с тонкими ножницами. С помощью этого метода, повторно открыть сайт ламинэктомии подвергать ткани, содержащей спинного мозга зону травмы. Остановить подготовку, когда Dura шов визуально идентифицирован.
    3. Зажмите позвоночник от 2 стабилизационный зажимает на спинуленные процессы TH7 и Th10, а затем поднять животное расцепить дыхательные движения из позвонков.
    4. При небольшом картонного линейкой измерить площадь спинного мозга, который должен быть иссекают (длина: 4 мм) и обозначая края этой соответствующей области ткани с поперечными разрезами, чтобы последующее удаление ткани.
    5. Удалить рубцовой ткани с помощью комбинации резки и аспирации. Достаньте ткань, которая была отделена от спинного мозга с поперечными насечками. Используйте нежное стремление всякий раз, когда это достаточно, чтобы позволить удаление ткани. Кроме того, в тех случаях, когда жесткая текстура рубцовой ткани делает аспирация ткани слишком сложно, использовать тонкие ножницы, чтобы вырезать и удалить эту ткань.
    6. Вставьте кусок (приблизительно 5 мм х 5 мм х 5 мм куб) гемостатической желатиновой губки в зазор ткани до кровоточащих стихает. Желатин губка будет уменьшаться в размерах, как только она пропитана жидкостью.
  5. Implantation ПЭГ 600
    1. Подготовка 1 мл чистого неразбавленного ПЭГ 600 для инъекций при нагревании до 37 ° С.
    2. Удалить желатиновой губки.
    3. Вставьте достаточное количество (примерно 5 - 7 мкл) ПЭГ в зазор с использованием 10 мкл шприца или 10 мкл пипетки.
    4. Тщательно покрывают область с куском (приблизительно 5 мм х 4 мм) замены герметика / твёрдой.
    5. Закрепите герметик окружающих мышечной ткани с несколькими каплями клея ткани. Поместите герметик поверх ПЭГ-заполненной резекция зазором. Для предотвращения проскальзывания герметика, использовать небольшие капли клея ткани, чтобы исправить углы герметиком к окружающей мышечной ткани. Примечание: Во избежание утечки клея ткани на ткани спинного мозга!
  6. Закрытие тканей и послеоперационный уход
    1. Шовный мышцы и слой кожи для слоя с узловыми швами с плетеным адсорбирующихся 4-0 нитей
    2. Вводят 2 × 2,5 мл хлорида натрия (NaCl[0,9%]) при 36 ° C подкожно для регидратации после операции. Однократное введение 5 мл NaCl будет простираться кожу животного и может привести к ненужному вреда животному. Не оставляйте без присмотра животное, пока полное сознание не восстанавливается.
    3. Вводят ежедневный карпрофен (подкожно 5 мг / кг) в течение не менее 2-х дней после операции. Дом для животных в одной клетке в течение первых 2-х дней, после чего в группах 2 - 3.
    4. Применяют лечение антибиотиками (ежедневно пероральное введение энрофлоксацину) для первого послеоперационного недели.
    5. У ручного мочевого пузыря мочеиспускания в два-три раза в день, осторожно поглаживая через живот животного от ростральной к хвосту. Будьте осторожны, чтобы не переместить позвоночник животного и не поднять животное на хвост. Вручную аннулированию мочевой пузырь полностью spinalized животного ежедневно в течение всего времени выживания. Необходимо соблюдать осторожность, чтобы поместить пищевые гранулы и бутылки с водой в высоту, которая может быть достигнута с помощью животных безстоя на hindpaws. Несмотря на то, будучи подрывается в задней функции четверти, животные двигаются и исследовать клетки активно сразу после операции. Рекомендуется держать крыс в общительных группах.
    6. При хронических поражениях оставить время выживания животных за пять недель до шрама резекции. Выполните шаги 1.4.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Ткань Сохранение, аксонов Перерост и функциональная выгода ММС Имплантация после острого Полная перерезка спинного мозга
Показано , что острая имплантацию Mms стабилизировал полностью перерезаны пни спинного мозга и уменьшение усадки ткани (Фигура 2А в сравнении с B). Как визуализировали с помощью окрашивания трехцветный в сагиттальных срезах, зеленый соединительной ткани окрашивание фиброзного рубца в ак...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Здесь два различных хирургических подходов представлены для устранения пробелов ткани в спинном мозге после (1) острый полное рассечение и ММС имплантации и (2) хроническим поражением спинного мозга и фиброзной удаление рубцов плюс матрицы имплантации PEG. Обе стратегии приводят к сохранению и регенерации тканей аксонов, а также к существенным локомоторной улучшению функций у обработанных животных. Для имплантации ммс адекватную фиксацию ммс в пределах спинного мозга фирмы твёрдой швом после операции является важным тех...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Немецкое страхование от несчастных случаев (DGUV), Исследовательская комиссия медицинского факультета Университета имени Генриха Гейне

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
PEG 600 Ph Eur Merck/VWR 8,170,041,000
Gelastypt желатиновая губка   sanofi AventisPZN-8789582
Герметик Nescofilm Roth2569.1
BaytrilBayer
Rimadyl (Carpofen)Pfizer
Forene (Isoflurane)Abbvie
Kodan (дезинфицирующее средство для кожи)
Histoacryl (клей для тканей)
Friedman-Pearson Rongeur, чашка 1 мм, прямая Fine Science Tools16020-14
Микрошпатель "два в одном" - 12 смFine Science Tools10091-12
Щипцы Dumont #7 - Inox Medical Fine Science Tools11273-20
Щипцы Dumont #5/45 - Inox Medical Fine Science Tools11253-25
Крючок для спинного мозга Инструменты для тонкой науки10162-12
Ножницы Инструменты для тонкой науки14078-10
Зажим AesculapEA016R
Ethicon Vicryl 4-0
Bepanthen Augen- und NasensalbeBayer
Анатомические щипцы Fine Science Tools11000-13
Самоудерживающийся ретрактор Инструменты для тонкой науки17008-07
Зажим для кожи Инструменты для изобразительной науки13008-12
Aluspray Селектавет

Ссылки

  1. Ramer, L. M., Ramer, M. S., Bradbury, E. J. Restoring function after spinal cord injury: towards clinical translation of experimental strategies. The Lancet. Neurology. 13 (12), 1241-1256 (2014).
  2. McDonald, J. W., Howard, M. J. Repairing the damaged spinal cord: a summary of our early success with embryonic stem cell transplantation and remyelination. Prog. Brain Res. 137, 299-309 (2002).
  3. Yoon, S. H., et al. Complete spinal cord injury treatment using autologous bone marrow cell transplantation and bone marrow stimulation with granulocyte macrophage-colony stimulating factor: Phase I/II clinical trial. Stem Cells. 25 (8), 2066-2073 (2007).
  4. Brotchi, J. Intrinsic spinal cord tumor resection. Neurosurgery. 50 (5), 1059-1063 (2002).
  5. Estrada, V., Tekinay, A., Muller, H. W. Neural ECM mimetics. Prog. Brain Res. 214, Chapter 16 391-413 (2014).
  6. Tetzlaff, W., et al. A Systematic Review of Cellular Transplantation Therapies for Spinal Cord Injury. J.Neurotrauma. 28 (8), 1611-1682 (2010).
  7. Brazda, N., et al. A mechanical microconnector system for restoration of tissue continuity and long-term drug application into the injured spinal cord. Biomaterials. 34 (38), 10056-10064 (2013).
  8. Estrada, V., et al. Long-lasting significant functional improvement in chronic severe spinal cord injury following scar resection and polyethylene glycol implantation. Neurobiol. Dis. 67, 165-179 (2014).
  9. Rasouli, A., et al. Resection of glial scar following spinal cord injury. J.Orthop.Res. 27 (7), 931-936 (2009).
  10. Schira, J., et al. Significant clinical, neuropathological and behavioural recovery from acute spinal cord trauma by transplantation of a well-defined somatic stem cell from human umbilical cord blood. Brain. 135, Pt 2 431-446 (2011).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Метод ADORсинтез цеолитовразборка цеолитовсборка цеолитовцеолит IPC-4цеолит IPC-2порошковая рентгеновская дифракцияадсорбция азотаразмер пор цеолитаструктура цеолита