Методическая статья

Отложенный роста Анализ ингибирования для количественной оценки влияния бактерий, полученных Противомикробные по конкуренции

14.9K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/54437

⸱

3 сентября 2016 г.

 ,  ,  , 
1Institute of Integrative Biology, University of Liverpool

В этой статье

Краткое содержание

Анализ замедленного ингибирования роста может быть использован для оценки влияния конкуренции одного бактериального изолята на другой. Ингибирование количественно оценивается путем измерения зоны очищения вокруг изолята, продуцирующего ингибитор, или качественно оценивается путем определения видимой степени ингибирования.

Аннотация

Конкурентное исключение может произойти в микробных сообществах, когда, например, штамм, производящий ингибиторы, превосходит своего конкурента по важному питательному веществу или производит антимикробные соединения, к которым его конкурент не устойчив. Здесь мы опишем анализ замедленного подавления роста, метод оценки способности одной бактерии подавлять рост другой за счет производства антимикробных соединений или конкуренции за питательные вещества. Этот метод был использован для исследования корреляции носовых изолятов с исключением определенных видов из сообщества. Этот метод также может быть использован для скрининга продуцентов антибиотиков или потенциально новых противомикробных препаратов. Анализ проводится путем первого культивирования штамма, продуцирующего ингибитор теста, в течение ночи на агаровой пластине, затем распыления на испытуемый конкурирующий штамм и повторной инкубации. После инкубации степень ингибирования может быть измерена количественно, через размер зоны очищения вокруг штамма, продуцирующего ингибитор, и качественно, путем оценки прозрачности зоны ингибирования. В данной работе мы представляем протокол анализа отсроченного торможения, описываем способы минимизации различий между экспериментами и определяем шкалу ясности, которая может быть использована для качественной оценки степени ингибирования.

Введение

Бактерии, живущие в сообществах, конкурируют на межвидовом и внутривидовом уровне за пространство и питательные вещества 6. Конкуренция между микробами часто может приводить к исключению определенных видов или штаммов в сообществе. Исключение может быть вызвано конкуренцией за определенный рецептор или питательное вещество или производством антимикробного соединения членом сообщества 6.

Исследования, изучающие конкурентное исключение, часто изучают наличие и отсутствие видов с использованием секвенирования 16S рРНК 3,4,13. Тем не менее, внутривидовые вариации, например, наличие или отсутствие продукции антимикробных пептидов, могут оказывать огромное влияние на способность одного вида ингибировать другой. Поскольку секвенирование 16S рРНК не позволяет различить штаммы одного и того же вида, внутривидовая изменчивость признаков не может быть оценена. Описанная здесь методика может быть использована для оценки потенциала отдельных штаммов по исключению других бактерий. Этот метод ранее использовался, чтобы показать положительную корреляцию между присутствием ингибирующих бактерий Staphylococcus aureus и отсутствием S. aureus в носовом сообществе 7.

Анализ замедленного ингибирования роста (конкуренции) может определить выработку антимикробных соединений или конкуренцию питательных веществ штаммом-ингибитором. Он также может обнаруживать положительные взаимодействия, в результате чего присутствие штамма-ингибитора фактически улучшает рост конкурирующего штамма. Этот анализ может быть использован для получения количественных данных (размер зоны очистки) и качественных данных (степень ингибирования), которые могут быть наложены на данные о присутствии или отсутствии вида в сообществе для поиска корреляции между фенотипом (признаком) и конкурентным исключением.

Протокол

Следующий способ адаптирован к 7,8 тестируемых штаммов конкурента штаммов ингибитора производства.

Примечание: Этот протокол включает в себя аэрозольную поколение с бактериальными культурами. Это может быть осуществлено только в замкнутых системах пространстве с реализацией на местном уровне утвержденных соображений безопасности. Опрыскивание культуры на чашках с агаром внутри шкафа безопасности 2 минимизирует загрязнение агара и окружающую среду. Это также позволит защитить исследователя от аэрозольной ингаляции распыленных бактерий, это является серьезной проблемой, если исследователь использует уровня удерживания 2 организмов. Соответствующие средства индивидуальной защиты должны носить. В районе, прилегающем Петри лучше всего покрыта одноразовой впитывающей ткани. Пост-спрей обеззараживание с помощью УФ-излучения рекомендуется.

1. Подготовка пластин агаре

  1. Приготовьте сердца мозга настоя (BHI) агара в соответствии с МануИнструкции по дитель.
  2. Автоклава агар BHI при 121 ° С, 15 фунтов на квадратный дюйм в течение 20 мин, или в соответствии с рекомендациями производителя автоклавные, стерилизовать.
  3. Налейте 15 мл аликвоты стерилизованной BHI агар в стерильные чашки Петри и позволить ему установить.
    Примечание: Убедитесь, что каждый агаре пластина для использования в процессе этого анализа происходит из того же запаса агара и что существует такое же количество агара в каждой пластине. Это ограничивает изменчивость доступных питательных веществ и диффузии ингибитора между пластинами, позволяющими сопоставимость.

2. Подготовка Стерильный Бульон

  1. Приготовьте бульон BHI в соответствии с инструкциями изготовителя.
  2. Добавляют 10 мл аликвоты BHI до 28 мл стеклянных флаконах универсальные.
  3. Автоклава бульон BHI при 121 ° С, 15 фунтов на квадратный дюйм в течение 20 мин, или в соответствии с рекомендациями производителя автоклавные, стерилизовать.
    Примечание: Убедитесь, что все бульоном, используемый в анализе происходит из той же самой партии бульона Autoclaved в то же время, чтобы ограничить изменение в питательных веществ, которые могут вызвать изменение в результатах.

3. Подготовка Стерильный Vaporizer бутылки (ы)

  1. Разберите бутылку vapourizer.
  2. Спрей 5% поверхности агента активного чистящего через vapourizer устранить внутренние загрязнители, смочите vapourizer бутылки, крышки и vapourizer в поверхностно-активного моющего средства 5% в течение ночи.
    Примечание: Перчатки и соответствующие средства индивидуальной защиты следует использовать при обращении с поверхностно-активное моющее средство.
  3. Сушат испаритель, крышку и бутылки под капотом стерильной потока воздуха.
  4. Заполните бутылку с 70% -ным этанолом, vapourizer и снова прикрепить спрей некоторые из этанола через vapourizer.
  5. Положите крышку на испаритель и хранить с этанолом внутри до использования.
  6. Непосредственно перед применением, асептически промыть бутылку стерильной BHI бульона и распылить бульон через vapourizer.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Это предотвращает AFF этанолпрививочный выполнения над каждым добавляемые к бутылке в разделе 6.3.

4. Подготовка ночной культуры Бактериальный (ы)

  1. Подряд конкурент и ингибитор штаммов на стерильную BHI агаром и инкубировали при 37 ° С в аэробных условиях в течение приблизительно 18 ч (в течение ночи).
    Примечание: Эта пластина создает запас бактерий, которые могут быть использованы для нескольких повторах в пределах одной недели при хранении при 4 ° С.
  2. Инокулируйте 10 мл стерильной BHI бульона с одной колонии требуется конкурента бактериального штамма в пределах 28 мл универсального бутылки.
  3. Выдержите универсальную бутылку при 37 ° C в течение ночи аэробно при встряхивании со скоростью 250 оборотов в минуту в орбитальном шейкере.

5. Пятно культура Ингибитор-производства изолята

  1. Подготовка ночной культуры (ы), как описано в разделе 4.
  2. Убедитесь , что агаром полностью высохнут, без конденсации на крышке, перед посевом (например , путем инкубирования плат.е в течение 60 мин при 37 ° С); это предотвращает прививочный материал от распространения через пластину с сайта инокуляции.
  3. Пипетка 25 мкл ночной культуры на центр чашки с агаром. Избегайте полностью удручает пипетки поршень предотвращает образование воздушных пузырей, которые распыляют культуры через агар.
  4. Дайте культуру высохнуть при комнатной температуре, чтобы ограничить распространение этой культуры. Инкубируйте агаром при 37 ° С в аэробных условиях в течение ночи.

6. Подготовка спрей инокулята испытания Конкурент Strain (s)

  1. Подготовка ночной культуры , как описано в разделе 4. Развести ночной культуры в 10 раз в BHI бульона с получением примерно 4 × 10 6 КОЕ мл -1, и суспензию OD 600 0,3 ± 0,05.
    ПРИМЕЧАНИЕ: 10 - кратное разведение не даст 4 × 10 6 КОЕ мл -1 для всех видов бактерий, рассчитать необходимый коэффициент разбавления путем распространения металлизированный серийных разведений от 1 х 10 -1 -1 · 10 -6.
  2. Вылейте разбавленную культуру в стерильный пластиковый флакон духов испарителем.
    Примечание: Общий объем должен быть больше, чем необходимо для количества чашек с агаром распыляется. Примерно 250 мкл на чашку подходит для 9 см диаметр чашки Петри.

7. Отложенный роста Анализ ингибирования

  1. Распылить культуру через каждый из испарителей бутылок, чтобы гарантировать, что культура загружается в механизм распыления перед распылением на агар.
  2. С расстояния примерно 15 см над агара, распылить приблизительно 250 мкл разведенной культуры (3 спреи типичного 50 мл испарителем) во всей поверхности агара. Инкубируйте агаром при 37 ° С в аэробных условиях в течение ночи. Повторите эти действия для других пластин с тем же числом спреев.

8. Интерпретация результатов будущих периодов роста Анализ ингибирования

  1. Измерьте торможение роста зоны распыленного конкурентор деформации (рис 1А - С, "Х" к "Х") в миллиметрах, вычитая диаметр центрального пятна ингибитора-производителя (Рисунок 1A - C, "Y" к "Y").
    Примечание: На рисунке 1E показано , как можно было бы представить эти данные
  2. Запишите счет ясности для зон ингибирования.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Это указывает на степень ингибирования наблюдаемой. Примеры приведены на рисунке 1А - D, штаммы , которые могут быть использованы для стандартизации предложены в разделе результатов репрезентативной. Следующая шкала может быть использована для ясности скоринг: ясность оценка 0, чтобы описать зону полного ингибирования роста Конкурент штамма. Оценка 1 для описания зоны практически полного ингибирования роста, лишь отдельных колоний, находящихся в зоне очистки. 2 балла для описания видимой зоны пониженной роста, рост в пределах этой зоны консвободно или вблизи конфлюэнтного, но уменьшается плотность на> 50%. Счет 3 описать лишь минимальное снижение роста, рост сливная и снижаются менее чем на 50%, зона по-прежнему видна и измеримыми. 4 балла не описать никакого видимого ингибирования роста. Балл 5, чтобы описать, что рост штамма конкурента был увеличен в непосредственной близости от испытуемого ингибитора-продуцирующего штамма. На рисунке 1 примеры. Эти оценки носят субъективный характер к экспериментатору.

9. Реплицирует

  1. Повторные анализы по крайней мере в трех экземплярах биологической для определения воспроизводимости полученных результатов.
    Примечание: Если дублированные выполняются в разные дни, проводить измерения и оценка пластины немедленно после извлечения из инкубации, а затем хранить или пластины при 4 ° С или принимать высококачественные фотографии пластин, прежде чем выбросить их. Хранение или фотографии пластин позволяет легко сравнивать результаты между различными дней, тего особенно важно для подтверждения воспроизводимый скоринг через дней / экспериментов. Имейте в виду, что хранение плит имеет потенциал, чтобы изменить результаты.
    Примечание: Для получения четких фотографий тарелок в вертикальном положении без их крышки на матовом черном фоне в области рассеянного света, используют камеру высокого разрешения (≥8 MP), способный фокусироваться на объектах близко к объективу (режим макро). В качестве альтернативы, некоторые гель томографы с транс-осветителя, установленные на белый свет может выпускать продукцию высокого качества, с высокой воспроизводимостью изображения.

Результаты

Результаты анализа должны наблюдаться как разница в штамме накладным конкурента рядом с центрально пятнистой ингибитора штамм-продуцент (рисунок 1). Эти различия можно интерпретировать как полное ингибирование (рис 1А), частичное ингибирование (рис 1B и 1C), без торможения (рис 1D) или положительной ассоциации. Широко доступны лаборатории штаммы S. эпидермидис Tü3298 и S. эпидермидис Rp62A и S. эпидермидис Rp62A и S. стафилококк Ньюмана были использованы в фиг.1В и 1D соответственно. Мы полагаем, что эти штаммы могут быть использованы для тестирования этого протокола.

В зависимости от видов тестирования, полное торможение и частичное ингибирование, скорее всего, является результатом антимикробных пептидов, антибиотиков или других диффундирующего inhibito ростаRS производимые ингибитором штамм-продуцент. Частичное ингибирование также было связано с сокращением доступности питательных веществ для штамма конкурента благодаря поглощению или секвестра питательных веществ штамма ингибитора 6.

Сравнение размера зоны ингибирования между различными ингибиторами продуцирующих изолятов против того же конкурента штамм указывает на разницу в любой из следующих: количество противомикробного средства, полученного ингибитором штамм-продуцент; способность ингибитора диффундировать через средства массовой информации; тип ингибитора производства и уровень сопротивления штамма конкурентом ингибиторов вырабатываться. Сравнение размера зоны ингибирования между различными конкурирующими штаммов по сравнению с аналогичным ингибитором штамм-продуцент является показателем уровней сопротивления конкурента штаммов к ингибитору вырабатываться.

Результаты будут варьироваться в зависимости от тормозного используемого штамма и штамма конкурента, используемого. Повторы, используя тот же тормозящее и конкурент штамм в идеале должен иметь тот же счет ясности (описанный в разделе 8.2), это указывает на хороший метод был использован во всем.

Если непоследовательное применение бактерий произошло пластины не должны использоваться. Например, если тест конкурент культура является слишком разведенным зона ингибирования будет казаться больше , и с менее четко определенной краю , чем обычно наблюдается (рис 2А); это может привести к снижению надежности любых сравнительных измерений зон. Если ингибитор продуцирующих пятна штамм не был полностью высушен перед инкубации в течение ночи, штамм ингибитора, вероятно, распространится и не образуют четко определенную точку (рис 2б), как правило , влияет на измерения зоны , но также может повлиять на ясность скоринг. Если штамм конкурентне распыляется равномерно это может привести к неравномерному распространению бактерий (фиг.2с). Если штамм конкурент слишком сконцентрирована, возможно , что штамм конкурент может расти на вершине штамма ингибитора (фиг.2С), в крайнем случае это может привести к некоторой инверсии конкурента / ингибитор ролей деформации.

figure-results-1
Рисунок 1:. Диапазон качественных и количественных результатов , которые могут быть получены из отложенного анализа ингибирования роста Результаты для ингибирования роста может колебаться от (А) полного торможения (оценка 0), (B) частичное ингибирование (оценка 1) , (C) , частичное ингибирование (2 балла) до (D) никакого ингибирования (4 балла). Этикетки указывают края роста штаммов ингибитора (Y) и самый верхний край торможениязоны (Х). Размер зоны ингибирования диапазоне от 0 мм до более чем 10 мм, как показано в формуле (Е), который показывает результаты измерений для пластин , сфотографированных в A, B, C и D. Результаты показаны на последних стафилококковых изолятов (A , C) или обычной лаборатории стафилококковых изолятов S. эпидермидис Tü3298 (ингибитор) и S. эпидермидис Rp62A (конкурент) (B) и С. эпидермидис Rp62A (ингибитор) и S. стафилококк Ньюман (конкурент) (D). Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

figure-results-2
Рисунок 2: Примеры противоречивых результатов из - за плохой техники Результаты могут отличаться , чем ожидалось , если (A. ) конкурентом штамм был слишком разведенным, (В) штамм ингибитор не был полностью высохнуть перед инкубации / плиты не были сухими или (С) , если штамм конкурент не распылять равномерно и был слишком сосредоточен. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы увидеть увеличенную версию этой фигуры.

Обсуждение

Важным шагом этого бактериального протокола видов конкуренции , что отличает его от других, является инкубация в течение ночи ингибитора изолирует перед добавлением конкурента изолята. Штамм ингибитор требует этот период роста производить ингибирующие соединения. По мере того как штамм конкурент накладывается на той же среде, этот метод позволяет исследователю наблюдать весь потенциал штамма ингибитора препятствовать росту штамма конкурента. В результате, этот анализ отражает то, что происходит с природой; один изолят полностью установлена ​​в нише, а другой должен быть в состоянии противодействовать любым ингибирующие переменные, чтобы иметь возможность успешно вторгаются в нишу.

Есть две части к этому протоколу, которые, скорее всего, привести к ошибочным результатам, если выполняется неправильно. Во-первых, неполная стерилизация испарителем бутылки могут ввести загрязняют бактерии в анализе. INCUbation бульона, используемого для ополаскивания бутылки распылительного на этапе 3.6 в стерильный сосуд можно использовать для подтверждения бутылки были полностью стерилизовать. Дополнительные смывки в дезинфицирующих растворов, таких как Virkon, могут быть использованы до промывки в поверхностно-активным чистящее средство, которое, описанного в пункте 3.2, если требуется дополнительной стерилизации.

Второй шаг, который может привести к ошибочным результатам является разбавление штамма конкурента (этап 6.1). Если разбавление не является оптимальным, четкие измерения ингибирования может не быть легко определена. Этот анализ был оптимизирован с помощью различных назальных изолятов в качестве ингибитора штаммы , продуцирующие в широком диапазоне грамположительных и грамотрицательных видов по сравнению с S. стафилококк SH1000 как конкурент штамма 7,8. Впоследствии она была протестирована с использованием различных коагулазонегативные и коагулазную-положительных стафилококков в качестве конкурента и ингибитора штаммов, продуцирующих. При тестировании, кроме описанных выше, в качестве конкурента родовШтамм, некоторые оптимизации разбавления для посевного материала может быть необходимым.

Если ясность оценки существенно различаются между повторами, это может быть необходимо, чтобы стандартизировать конкурент штамма инокулята, установив его к определенной оптической плотности. Тем не менее, это приведет к увеличению времени анализ требуется, чтобы установить, и, вероятно, сократить число штаммов, можно обрабатывать на эксперимент. Визуально регулируя культуру к соответствующему OD с использованием стандарта McFarland может обеспечить быструю альтернативу.

Одним из недостатков этого метода является то, что оно может быть применено только к культивируемых бактерий. Именно поэтому многие исследования используют 16S рРНК последовательности для прогнозирования конкурентного исключения взаимодействий 3,4,13. Тем не менее, генетические и метагеномной методы могут только различать членов сообщества на уровне видов, и / или не учитывают конкретной внутривидовой изменчивости признака. Можно экран для ассоциации с particulген , который кодирует А.Р. черта с наличием или отсутствием видов бактерий 5, однако это требует предварительного знания гена , вероятно, связано с исключением вида.

Безопасна рассмотрение этого метода состоит в том, что, из-за образования аэрозолей бактерий, он может быть использован только в лабораторных условиях с кабинетом безопасности 2, или с подобными мерами безопасности. Есть альтернативные методы тестирования для конкуренции между изолятов, которые составляют внутривидовой изменчивости признака и не производят аэрозоли бактерий. Одним из таких способов является одновременное анализ антагонизма 2. В этом методе, инокулят одного изолята высевали на чашки с агаром, и второй изолят инокулят пятнистый или кололи на вершине, как только первый высох. Это будет производить среду, в которой штаммы находятся в прямой конкуренции (одновременное антагонизм), как конкурирующие с получением ингибирующих соединений и роются питательные вещества, в первую очередь. advantagе отложенного анализа ингибирования роста по сравнению с одновременным анализом антагонизм является то, что ингибитор изолят всегда должен иметь конкурентное преимущество, чтобы быть полностью установлена ​​до вторжения конкурента изолята. Это больше отражает то , что будет происходить в окружающей среде, так как в большинстве ниш, один изолят будет установлен прежде , чем другой штамм добавляется, а не два изолята добавляется в то же время 8.

Другая альтернатива, чтобы избежать аэрозольную поколение бактерий было бы добавить конкурента изолирование верхнего агара, который можно было вылить, а не распыляют над ингибитором изолята. Тем не менее, объем верхнего агара добавляют необходимо будет приблизительно 3 мл, чтобы обеспечить равномерное покрытие пластины. В пределах этого объема, конкурент изолят не будет расти на тех же средствах массовой информации в качестве ингибитора изолята, так что не будет страдать от снижения питательных веществ. Спортсмен также не находиться в непосредственном контакте с любыми тормозными соединениями ЕНТиль они диффундируют в верхнюю агара. Такой анализ не может быть описана как отсроченный ингибирования или одновременного антагонизма.

Аналогичный метод ранее использовался для оценки уровней сопротивления бацитрацинового среди клинических S. стафилококка изолирует 10. Основное различие между протоколом , описанным здесь и который описан 10, является последним только одного объявления конкурента штаммы как чувствительные (полный inhibition- ясность 0 баллов) или устойчивые (частично , чтобы не inhibition- ясности оценка 1-5). Отложенный анализ ингибирования роста также может поэтому быть использован для скрининга уровней сопротивления производителям отдельных противомикробных, или даже для поиска новых антибактериальных препаратов, активных в отношении резистентных патогенов множественной лекарственной устойчивостью.

Было высказано предположение о том , что хост - микрофлора можно манипулировать , чтобы устранить нежелательные члены бактериального сообщества 9. Применение коринебактерий или Staphylococcus эпидермидис уже было показано , чтобы устранить S. стафилококк колонизация в ноздрями в значительной части населения 11,12. Поэтому исследования в конкретных штаммов, которые могут конкурентно исключающих нежелательных членов принимающей флоры, с помощью таких методов, как описана здесь, может привести к будущим терапии.

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего раскрывать.

Благодарности

JCM финансируется за счет премии BBSRC-МПА с компанией Unilever Plc (BB / L023040 / 1). ППЗ финансируется за счет Аравийского Министерства высшего образования PhD студенчества Саудовской Аравии.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Бульон для инфузии сердцаLab Mlab049насыщенный универсальный медиа
агар-агарMerck Milipore101614
чашки ПетриSarstedt82.1473.001
Пластиковый парфюмерный испарительнеизвестно -высотой 10 см с диаметром 3,5 см прозрачный пластиковый пульверизатор с крышкой, приобретенный в отделе путешествий супермаркета
Универсальные бутылкибольше не производятся, альтернатива SLS BOT5006стеклянная цилиндрическая бутылка 28 мл (диаметр ~280 мм, высота 850 мм), плоскодонная с пластиковой завинчивающейся крышкой
Decon 90Decon Поверхностно-активное чистящее средство 

Ссылки

  1. Bolnick, D. I., et al. Why intraspecific trait variation matters in community ecology. Trends Ecol Evol. 26 (4), 183-192 (2011).
  2. Christensen, G. J. M., et al. Antagonism between Staphylococcus epidermidis and Propionibacterium acnes and its genomic basis. BMC Genomics. 17 (152), (2016).
  3. Faust, K., et al. Microbial co-occurrence relationships in the human microbiome. PloS Comput Biol. 8 (7), (2012).
  4. Frank, D. N., Feazel, L. M., Bessesen, M. T., Price, C. S., Janoff, E. N., Pace, N. R. The Human nasal microbiota and Staphylococcus aureus carriage. PLoS One. 5 (5), e10598(2010).
  5. Fredheim, E. G., Flaegstad, T., Askarian, F., Klingenberg, C. Colonisation and interaction between S. epidermidis and S. aureus in the nose and throat of healthy adolescents. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 34, 123-129 (2015).
  6. Hibbing, M. E., Fuqua, C., Parsek, M. R., Peterson, S. B. Bacterial competition: surviving and thriving in the microbial jungle. Nat Rev Microbiol. 8, 15-25 (2010).
  7. Libberton, B., Coates, R. E., Brockhurst, M. A., Horsburgh, M. J. Evidence that intraspecific trait variation among nasal bacteria shapes the distribution of Staphylococcus aureus. Infect Immun. 82 (9), 3811-3815 (2014).
  8. Libberton, B., Horsburgh, M. J., Brockhurst, M. A. The effects of spatial structure, frequency dependence and resistance evolution on the dynamics of toxin-mediated microbial invasions. Evol appl. 8, 738-750 (2015).
  9. Liu, C. M., et al. Staphylococcus aureus and the ecology of the nasal microbiome. Sci Adv. 1, e1400216(2015).
  10. Nascimento, J. S., Ceotto, H., Nascimento, S. B., Giambiagi-deMarval, M., Santos, K. R., Bastos, M. C. Bacteriocins are alternative agents for control of multiresistant staphylococcal strains. Lett Appl Microbiol. 42, 215-221 (2006).
  11. Park, B., Iwase, T., Liu, G. Y. Intranasal application of S. epidermidis prevents colonization by methicillin-resistant Staphylococcus aureus in mice. PLoS One. 6 (10), e25880(2011).
  12. Uehara, Y., et al. Bacterial interference among nasal inhabitants: eradication of Staphylococcus aureus from nasal cavities by artificial implantation of Corynebacterium sp. J Hosp Infect. 44, 127-133 (2000).
  13. Wos-Oxley, M. L., et al. A poke into the diversity and associations within human anterior nare microbial communities. ISME J. 4, 839-851 (2010).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи